본 연구에서는 Ardisia arborescens 에탄올 추출물(AAEE)의 항산화능과 항염증 생리활성을 in vitro assay system 및 cell culture model system을 이용하여 분석하였다. 먼저 AAEE의 항산화능을 DPPH radical 소거능으로 분석한 결과 양성 대조군으로 사용한 ascorbic acid와 유사한 정도의 높은 활성을 보여 매우 강한 항산화능을 보유함을 확인하였다. 또한 RAW 264.7 세포주를 이용한 $H_2O_2$ 및 LPS의 유도에 의해 생성된 ROS에 대한 소거능을 분석한 결과에서도 농도의존적인 강한 소거능을 보였다. 뿐만 아니라 대표적인 항산화효소로 천연물에 의한 항산화능 활성에 의해 발현이 유도되는 HO-1, TrxR1 및 그 전사 인자인 Nrf2의 단백질 발현이 AAEE의 처리에 의해 농도의존적으로 증가됨을 보였으며 이러한 HO-1, TrxR1 및 Nrf2의 발현 변화는 상위신호전달계인 MAPKs에 의해 조절될 가능성을 보였다. 한편 AAEE가 LPS에 의해 유도된 NO 생성에 미치는 영향을 분석한 결과 세포독성 없이 농도의존적인 NO 생성 저해능을 보였으며 이는 NO 생성 단백질인 iNOS의 발현 저해에서 기인함을 확인하였다. 이와 같은 AAEE의 NO 생성 억제 효과는 염증 상위신호전달계인 NF-${\kappa}B$ 및 AP-1의 조절을 통해 일어날 가능성을 보였다. 이러한 결과를 통해 AAEE의 높은 항산화능과 항염증 활성을 처음으로 확인하였으며 향후 기능성 소재로서 유용하게 활용될 수 있을 것으로 판단된다.
본 연구에서는 Ardisia arborescens 에탄올 추출물(AAEE)의 항산화능과 항염증 생리활성을 in vitro assay system 및 cell culture model system을 이용하여 분석하였다. 먼저 AAEE의 항산화능을 DPPH radical 소거능으로 분석한 결과 양성 대조군으로 사용한 ascorbic acid와 유사한 정도의 높은 활성을 보여 매우 강한 항산화능을 보유함을 확인하였다. 또한 RAW 264.7 세포주를 이용한 $H_2O_2$ 및 LPS의 유도에 의해 생성된 ROS에 대한 소거능을 분석한 결과에서도 농도의존적인 강한 소거능을 보였다. 뿐만 아니라 대표적인 항산화효소로 천연물에 의한 항산화능 활성에 의해 발현이 유도되는 HO-1, TrxR1 및 그 전사 인자인 Nrf2의 단백질 발현이 AAEE의 처리에 의해 농도의존적으로 증가됨을 보였으며 이러한 HO-1, TrxR1 및 Nrf2의 발현 변화는 상위신호전달계인 MAPKs에 의해 조절될 가능성을 보였다. 한편 AAEE가 LPS에 의해 유도된 NO 생성에 미치는 영향을 분석한 결과 세포독성 없이 농도의존적인 NO 생성 저해능을 보였으며 이는 NO 생성 단백질인 iNOS의 발현 저해에서 기인함을 확인하였다. 이와 같은 AAEE의 NO 생성 억제 효과는 염증 상위신호전달계인 NF-${\kappa}B$ 및 AP-1의 조절을 통해 일어날 가능성을 보였다. 이러한 결과를 통해 AAEE의 높은 항산화능과 항염증 활성을 처음으로 확인하였으며 향후 기능성 소재로서 유용하게 활용될 수 있을 것으로 판단된다.
In this study, the antioxidative and anti-inflammatory activities of Ardisia arborescens ethanol extract (AAEE) were evaluated using in vitro assays and a cell culture model system. AAEE exhibited potent scavenging activity against 1,1-diphenyl-2-picryl hydrazyl (DPPH), similar to ascorbic acid, whi...
In this study, the antioxidative and anti-inflammatory activities of Ardisia arborescens ethanol extract (AAEE) were evaluated using in vitro assays and a cell culture model system. AAEE exhibited potent scavenging activity against 1,1-diphenyl-2-picryl hydrazyl (DPPH), similar to ascorbic acid, which was used as a positive control. Moreover, AAEE effectively suppressed lipopolysaccharide (LPS)- and hydrogen peroxide ($H_2O_2$)-induced reactive oxygen species (ROS) in RAW 264.7 cells. Furthermore, AAEE induced the expression of antioxidative enzymes, heme oxygenase 1 (HO-1), and thioredoxin reductase 1 (TrxR1), in addition to their upstream transcription factor, nuclear factor-E2-related factor 2 (Nrf2), in a dose-dependent manner. The upstream signaling pathways of mitogen-activated protein kinases (MAPKs) might regulate the modulation of HO-1, TrxR1, and Nrf2 expression. On the other hand, AAEE inhibited LPS-induced nitric oxide (NO) formation, without cytotoxicity. Suppression of NO formation was the result of AEEE-induced down-regulation of inducible NO synthase (iNOS). The suppression of NO and iNOS by AAEE might be modulated by their upstream transcription factor, nuclear factor (NF)-${\kappa}B$, and activator protein (AP)-1 pathways. Taken together, these results provide important new insights into the antioxidative and anti-inflammatory activities of A. arborescens. AAAEE might represent a promising material in the field of nutraceuticals.
In this study, the antioxidative and anti-inflammatory activities of Ardisia arborescens ethanol extract (AAEE) were evaluated using in vitro assays and a cell culture model system. AAEE exhibited potent scavenging activity against 1,1-diphenyl-2-picryl hydrazyl (DPPH), similar to ascorbic acid, which was used as a positive control. Moreover, AAEE effectively suppressed lipopolysaccharide (LPS)- and hydrogen peroxide ($H_2O_2$)-induced reactive oxygen species (ROS) in RAW 264.7 cells. Furthermore, AAEE induced the expression of antioxidative enzymes, heme oxygenase 1 (HO-1), and thioredoxin reductase 1 (TrxR1), in addition to their upstream transcription factor, nuclear factor-E2-related factor 2 (Nrf2), in a dose-dependent manner. The upstream signaling pathways of mitogen-activated protein kinases (MAPKs) might regulate the modulation of HO-1, TrxR1, and Nrf2 expression. On the other hand, AAEE inhibited LPS-induced nitric oxide (NO) formation, without cytotoxicity. Suppression of NO formation was the result of AEEE-induced down-regulation of inducible NO synthase (iNOS). The suppression of NO and iNOS by AAEE might be modulated by their upstream transcription factor, nuclear factor (NF)-${\kappa}B$, and activator protein (AP)-1 pathways. Taken together, these results provide important new insights into the antioxidative and anti-inflammatory activities of A. arborescens. AAAEE might represent a promising material in the field of nutraceuticals.
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문제 정의
강한 항산화능을 보유한 천연 유래 소재들이 Nrf2에 의한 항산화 효소계의 발현 유도를 통해 활성을 나타낸다는 것이 여러 연구를 통해 밝혀짐에 따라 AAEE가 보유한 항산화능의 작용 기작을 알아보고자 하였다[9, 27]. 이를 위해 대표적인 천연물에 의한 항산화 활성에 의해 주로 발현이 유도되는 대표적인 항산화 효소인 HO-1과 TrxR1의 단백질 발현과 그 상위 전사인자인 Nrf2의 단백질 발현 및 인산화에 AAEE가 미치 는 영향을 분석하였다.
또한 그람 음성 세균의 세포 외벽을 구성하는 주요 인자인 lipopolysaccharide (LPS)는 대표적인 염증 유발 인자로 산화적 스트레스 또한 유발하는 것으로 알려져 있어 항산화능 및 항염증 활성을 규명하기 위한 많은 연구에 사용되고 있다[1, 21]. 본 연구에서는 AAEE가 보유한 항산화능을 H2O2 및 LPS로 유도한 ROS 생성에 시료가 미치는 영향을 통해 분석하였다. 이를 위해 RAW 264.
29 μg/ml와 유사한 정도의 활성을 보여 매우 강한 항산화능을 보유함을 확인하였다. 이에 AAEE가 보유한 항산화능의 정도 및 기전을 세포 수준에서 확인할 필요성이 제기되었다.
뿌리를 약용으로 사용하며 고열, 감기 및 두통에 사용하는 것으로 알려져 있으나 그 구체적인 효능에 대해서는 알려진 바가 없으며, 특히 항산화 및 항염증 효과에 대해서는 전혀 알려진 바 없다. 이에 본 연구에서는 천연에서 유래한 생리활 성 보유 신소재 개발의 일환으로 A. arborescens 95% 에탄올 추출물(AAEE)이 보유한 항산화 및 항염증 활성을 in vitro assay system 및 cell culture model system을 이용하여 분석함으로써 기능성 소재로서의 활용 가능성을 확인해 보고자 하였다.
제안 방법
arborescens 95% 에탄올 추출물 (AAEE)은 한국생명공학연구원, 해외생물소재허브센터에서 구입(분양번호 FBM123-084)하여 사용하였으며 추출 과정은 다음과 같다. A. arborescens의 줄기 부위를 건조 및 파쇄한 후, 95% 에탄올을 용매로하여 45℃에서 15분간 초음파 추출 후 2시간 정치시키는 과정을 하루 10회씩 반복하여 총 3일간 추 출을 수행하였다. 추출이 완료된 시료를 filter로 여과하여 고형물을 없애고 45℃에서 감압농축(N-1000SW, EYELA, Japan) 한 후 동결 건조(FDU2100, EYELA, Japan)하여 사용 전까지 4℃에 보관하였다.
AAEE가 iNOS의 발현 저해에 따른 NO 생성 억제능을 보유함을 확인함에 따라 항염증 활성의 상위신호전달기전인 NF-κB와 AP-1의 연관성을 알아보기 위해 AAEE가 LPS에 의해 유도된 NF-κB p65와 IκBα, 그리고 AP-1의 subunit 중 하나 인 c-Jun의 인산화에 미치는 영향을 분석하였다.
AAEE가 보유한 NO 생성 억제능의 기전을 밝히기 위해 NO 생성의 핵심 단백질인 iNOS의 단백질 발현을 분석하였다. 또한 AAEE에 의한 NO 생성 및 iNOS의 발현 저해능이 NF-κB 및 AP-1에 의해 조절될 가능성을 알아보기 위해 LPS로 유도된 NF-κB p65와 inhibitory κBα (IκBα), 그리고 AP-1의 subunit인 c-Jun의 인산화에 AAEE가 미치는 영향을 분석하였다.
AAEE가 항산화능 뿐만 아니라 항염증 활성 또한 보유하는 지를 알아보기 위해 먼저 NO 생성에 미치는 효과를 알아보았다. LPS로 자극을 유도한 쥐 대식세포주 RAW 264.
AAEE의 항산화 활성 기전을 알아보기 위해 대표적인 항산화 효소인 HO-1, TrxR1과 그 전사인자인 Nrf2의 시료 처리에 의한 단백질 발현 변화를 Western blot hybridization으로 분석하였다. HO-1과 p-p38, p-JNK, p-ERK, 그리고 p-Akt의 일차항체는 Cell Signaling Technology (MA, USA)로부터 구입 하였고, p-Nrf2의 일차항체는 Calbiochem (CA, USA)로부터 구입하였으며, TrxR1, Nrf2, Actin의 일차항체와 anti-goat, anti-rabbit, 그리고 anti-mouse 등의 이차항체는 Santa Cruz Biotechnology (CA, USA)에서 구입하여 사용하였다.
AAEE의 항산화능 보유 유무 및 그 정도를 알아보기 위해 먼저 항산화능의 주요 지표 중 하나인 DPPH radical scavenging activity를 분석하였다. 그 결과 Table 1에 제시된 바와 같이 AAEE의 농도 증가에 따라 강한 radical 소거능을 보여 0.
AAEE의 항산화능 보유 유무와 정도를 1,1-diphenyl-2picryl hydrazyl (DPPH) radical 소거능 분석을 이용하여 분석 하였다[7]. DPPH는 비교적 안정한 free radical로써, ascorbic acid, tocopherol, polyhydroxy 방향족 화합물, 방향족 아민류에 의해 환원되어 짙은 자색이 탈색되는 원리를 이용하여 항산화 활성을 간단히 측정할 수 있는 동시에 식물체의 항산화 활성과도 연관성이 매우 높기 때문에 많이 이용되고 있는 방법이다[11].
DPPH radical scavenging activity 분석을 통해 AAEE가 보유한 높은 항산화능이 확인됨에 따라 그 작용 기전을 좀 더 자세히 알아보기 위해 먼저 RAW 264.7 cell에 대표적인 산화적 스트레스 유도인자인 H2O2와 LPS를 각각 처리하여 AAEE에 의한 ROS scavenging activity를 분석하였다. AAEE 는 50 μg/ml 처리시까지 세포독성을 전혀 유발하지 않았고, H2O2와 LPS에 의해 각각 유도된 ROS 생성이 AAEE의 처리에 의해 효과적으로 저해되는 것으로 나타나 AAEE가 DPPH radical 뿐만 아니라 세포 실험계에서 H2O2와 LPS에 의해 유도된 산화적 스트레스 또한 효과적으로 감소시킴을 확인하였다(Fig.
시료 처리가 끝난 배양 세포에서 단백질을 추출하여 Bradford assay로 단백질 농도를 결정한 후 50 μg의 단백질을 10% SDS-PAGE로 전기영동하고 nitrocellulose membrane에 blotting한 후 대상 단백질의 항체와 hybridization하였다. Membrane washing 후 HRP 가 tagging된 이차항체로 한 시간 동안 반응시킨 후 chemiluminescence detection system을 이용하여 단백질 발현을 분석하였다. 실험의 결과는 3회 반복 실험을 통해 유의적인 단백질 발현 변화를 확인한 후 대표적인 데이터를 제시하였다.
Membrane washing 후 horse radish peroxidase (HRP)가 부착된 이차항체(1:1,000)로 한 시간 동안 반응시킨 후 chemiluminescence detection system (FluoChem® FC2, AlphaInnotech, USA)을 이용하여 단백질 발현을 분석하였다.
RAW 264.7 cell을 24-well tissue culture plate에 well 당 1.0×10 5 cell을 seeding하여 부착시킨 후 1 μg/ml의 LPS를 처리하여 NO 생성을 유도하고 식물 추출물에 의한 NO 생성 저해능을 Griess reaction을 통해 분석하였으며 측정 값은 3회 반복 실험의 평균값으로 나타내었다.
시료를 첨가하지 않은 음성 대조군과 비교하여 free radical 소거 정도를 백분율로 나타내 고, 50% 저해 농도(inhibitory concentration, IC50)를 계산하였다. 대표적인 항산화제로 DPPH radical 소거 활성 측정 시 양성 대조군으로 주로 사용되는 ascorbic acid를 함께 비교 분석 하였으며 측정값은 3회 반복 실험의 평균값으로 나타내었다.
또한 AAEE에 의한 NO 생성 및 iNOS의 발현 저해능이 NF-κB 및 AP-1에 의해 조절될 가능성을 알아보기 위해 LPS로 유도된 NF-κB p65와 inhibitory κBα (IκBα), 그리고 AP-1의 subunit인 c-Jun의 인산화에 AAEE가 미치는 영향을 분석하였다.
시료 처리가 끝난 배양 세포에서 단백질을 추출하여 Bradford assay 로 단백질 농도를 결정한 후 50 μg의 단백질을 10% sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis (SDSPAGE)로 전기영동하고 nitrocellulose membrane에 blotting 한 후 1:1,000~5,000으로 희석한 대상 단백질의 일차항체와 hybridization하였다.
시료 처리가 끝난 배양 세포에서 단백질을 추출하여 Bradford assay로 단백질 농도를 결정한 후 50 μg의 단백질을 10% SDS-PAGE로 전기영동하고 nitrocellulose membrane에 blotting한 후 대상 단백질의 항체와 hybridization하였다.
5×10-4 M DPPH 40 μl와 각 시료 160 μl를 분주한 혼합액을 실온에서 30분간 반응시킨 후, multi-plate reader (Paradigm, Beckman, CA, USA)를 이용하여 520 nm에서 흡광도를 측정하였다. 시료를 첨가하지 않은 음성 대조군과 비교하여 free radical 소거 정도를 백분율로 나타내 고, 50% 저해 농도(inhibitory concentration, IC50)를 계산하였다. 대표적인 항산화제로 DPPH radical 소거 활성 측정 시 양성 대조군으로 주로 사용되는 ascorbic acid를 함께 비교 분석 하였으며 측정값은 3회 반복 실험의 평균값으로 나타내었다.
Membrane washing 후 horse radish peroxidase (HRP)가 부착된 이차항체(1:1,000)로 한 시간 동안 반응시킨 후 chemiluminescence detection system (FluoChem® FC2, AlphaInnotech, USA)을 이용하여 단백질 발현을 분석하였다. 실험의 결과는 3회 반복 실험을 통해 유의적인 단백질 발현 변화를 확인한 후 대표적인 데이터를 제시하였다.
이를 위해 RAW 264.7 cell에 cell permeable fluorescent dye인 50 μM의 dichlorofluorescin diacetate (DCFH-DA)를 2시간 동안 전 처리한 후 제거하고 500 μM의 H2O2 혹은 1 μg/ml의 LPS를 농도 별 시료와 함께 처리 한 후 시료에 의한 ROS 생성 억제능을 multiplate reader를 이용한 fluorescence 측정을 통해 분석하였다.
강한 항산화능을 보유한 천연 유래 소재들이 Nrf2에 의한 항산화 효소계의 발현 유도를 통해 활성을 나타낸다는 것이 여러 연구를 통해 밝혀짐에 따라 AAEE가 보유한 항산화능의 작용 기작을 알아보고자 하였다[9, 27]. 이를 위해 대표적인 천연물에 의한 항산화 활성에 의해 주로 발현이 유도되는 대표적인 항산화 효소인 HO-1과 TrxR1의 단백질 발현과 그 상위 전사인자인 Nrf2의 단백질 발현 및 인산화에 AAEE가 미치 는 영향을 분석하였다. 그 결과 Fig.
0×10 5 cell을 24-well tissue culture plate에 분주하여 24 시간 동안 부착시키고, AAEE 처리 24시간 후 WST 시약을 10%로 첨가한 배지로 교체하여 한 시간 동안 37℃에서 반응시킨 다음 multi-plate reader를 이용하여 450 nm에서 흡광도를 측정하였다. 측정값은 3회 반복 실험의 평균값으로 나타내었으며 독성을 유발하지 않는 농도 범위에서 이후 실험을 수행하였다.
활성 분석 수행 전 시료가 세포생존율에 미치는 영향을 확인함과 동시에 세포 독성을 유발하지 않는 시료의 처리 농도를 결정하기 위해 AAEE에 의한 세포 독성 유발 유무를 Water Soluble Tetrazolium (WST) assay를 통해 수행하였다. WST는 수용성의 tetrazolium salt로서 살아있는 세포와 반응하여 오렌지색 수용성 formazan을 생성한다.
대상 데이터
AAEE의 항산화 활성 기전을 알아보기 위해 대표적인 항산화 효소인 HO-1, TrxR1과 그 전사인자인 Nrf2의 시료 처리에 의한 단백질 발현 변화를 Western blot hybridization으로 분석하였다. HO-1과 p-p38, p-JNK, p-ERK, 그리고 p-Akt의 일차항체는 Cell Signaling Technology (MA, USA)로부터 구입 하였고, p-Nrf2의 일차항체는 Calbiochem (CA, USA)로부터 구입하였으며, TrxR1, Nrf2, Actin의 일차항체와 anti-goat, anti-rabbit, 그리고 anti-mouse 등의 이차항체는 Santa Cruz Biotechnology (CA, USA)에서 구입하여 사용하였다. 시료 처리가 끝난 배양 세포에서 단백질을 추출하여 Bradford assay 로 단백질 농도를 결정한 후 50 μg의 단백질을 10% sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis (SDSPAGE)로 전기영동하고 nitrocellulose membrane에 blotting 한 후 1:1,000~5,000으로 희석한 대상 단백질의 일차항체와 hybridization하였다.
Western blot hybridization을 위한 iNOS, p-p65, p-IκBα, 그리고 p-c-Jun의 일차항체는 Cell Signaling Technology (MA, USA)로 부터 구입하여 사용하였다.
본 연구에서 사용한 A. arborescens 95% 에탄올 추출물 (AAEE)은 한국생명공학연구원, 해외생물소재허브센터에서 구입(분양번호 FBM123-084)하여 사용하였으며 추출 과정은 다음과 같다. A.
항산화 및 항염증 활성의 세포 실험 모델계로 murine macrophage cell line인 RAW 264.7을 American Type Tissue Collection (ATCC® , TIB-71TM, Manassas, VA, USA)로부터 구입하여 10% fetal bovine serum (FBS) 및 penicillin/streptomycin (Pen/Strep)이 포함된 DMEM 배지에서 배양하였다 [23].
데이터처리
실험의 결과는 평균(mean) ±표준편차(standard deviation, SD)로 나타내었고, 각 데이터의 통계 분석은 SPSS 20.0 software를 이용한 unpaired Student’s t-test를 통해 p 값이 0.05 미만(p<0.05)인 경우 유의성이 있는 것으로 판단하였다.
성능/효과
AAEE 는 50 μg/ml 처리시까지 세포독성을 전혀 유발하지 않았고, H2O2와 LPS에 의해 각각 유도된 ROS 생성이 AAEE의 처리에 의해 효과적으로 저해되는 것으로 나타나 AAEE가 DPPH radical 뿐만 아니라 세포 실험계에서 H2O2와 LPS에 의해 유도된 산화적 스트레스 또한 효과적으로 감소시킴을 확인하였다(Fig. 1).
AAEE가 보유한 항산화능의 상위신호전달기전을 알아보기 위해 p38, JNK, 그리고 ERK 등의 MAPKs와 Akt의 인산화에 AAEE가 미치는 영향을 분석한 결과 Fig. 3에 제시된 바와 같이 6시간 동안 10~50 μg/ml의 시료 처리에 의해 Akt를 제외한 3종의 MAPKs의 인산화가 증가되는 것으로 나타났으며 이는 농도의존성뿐만 아니라 시간에 따른 처리에서도 증가됨을 보였다.
LPS로 자극을 유도한 쥐 대식세포주 RAW 264.7 cell에서 농도별 AAEE의 처리에 따른 NO 생성양의 변화를 분석한 결과 Fig. 4에 제시된 바와 같이 10~50 μg/ml의 시료 처리에 의해 세포독성의 유발없이 농도의존적인 NO 생성 저해능을 보였으며 이는 NO 생성 단백질인 iNOS의 발현저해에서 기인 하는 것으로 나타났다.
그 결과 Fig. 2에 제시된 바와 같이 6시간 동안 10~50 μg/ml의 시료 처리에 의해 HO-1과 TrxR1의 발현이 농도의존적인 강한 증가를 보였다.
AAEE가 iNOS의 발현 저해에 따른 NO 생성 억제능을 보유함을 확인함에 따라 항염증 활성의 상위신호전달기전인 NF-κB와 AP-1의 연관성을 알아보기 위해 AAEE가 LPS에 의해 유도된 NF-κB p65와 IκBα, 그리고 AP-1의 subunit 중 하나 인 c-Jun의 인산화에 미치는 영향을 분석하였다. 그 결과 Fig. 5에 제시된 바와 같이 2시간 동안의 LPS 처리에 의해 유도된 세 전사인자의 인산화가 AAEE 농도의 증가에 따라 유의적으로 억제되는 것으로 나타났다. 이러한 결과는 AAEE의 항염증 활성이 항염증 상위신호전달인자들의 일련의 조절 기작을 통해 이루어질 가능성을 시사하였다.
그 결과 Table 1에 제시된 바와 같이 AAEE의 농도 증가에 따라 강한 radical 소거능을 보여 0.4, 0.8, 1.6, 3.2, 6.4, 12.8 μg/ml의 시료 처리에 의해 DPPH radical 소거능이 각각 23.29, 29.17, 38.42, 55.94, 87.58, 93.21%로 나타나 50% 소거 농도를 나타내는 IC50 값이 2.69 μg/ml로 양성 대조군으로 사용한 ascrobic acid, 즉 vitamin C의 IC50 값인 2.29 μg/ml와 유사한 정도의 활성을 보여 매우 강한 항산화능을 보유함을 확인하였다.
4에 제시된 바와 같이 10~50 μg/ml의 시료 처리에 의해 세포독성의 유발없이 농도의존적인 NO 생성 저해능을 보였으며 이는 NO 생성 단백질인 iNOS의 발현저해에서 기인 하는 것으로 나타났다. 이러한 결과를 통해 AAEE가 산화적스트레스 뿐만 아니라 염증성 자극에 대한 방어능 또한 보유함을 확인하였다.
3에 제시된 바와 같이 6시간 동안 10~50 μg/ml의 시료 처리에 의해 Akt를 제외한 3종의 MAPKs의 인산화가 증가되는 것으로 나타났으며 이는 농도의존성뿐만 아니라 시간에 따른 처리에서도 증가됨을 보였다. 이러한 결과를 통해 AAEE의 항산화능이 HO-1, TrxR1과 그 상위전사인자인 Nrf2의 발현 및 인산화 증가를 통해 나타나며 그러한 일련의 과정이 MAPKs와 같은 상위신호전달인자에 의해 나타날 가능성을 확인하였다. MAPKs의 인산 화는 ROS에 의한 세포 손상을 막기 위한 항산화 효소계의 발현 조절에 필수적인 신호전달 기전이며, 강한 항산화능을 보유한 AAEE 또한 p38, JNK, 그리고 ERK의 인산화를 통해 HO-1의 발현을 유도하는 것으로 판단된다.
후속연구
이상의 결과를 통해 AAEE가 높은 항산화능과 항염증 활성을 보유함을 처음으로 확인하였으며, 이러한 결과는 신규 소재에 대한 새로운 기능성 데이터를 구축함과 동시에 향후 생리활성 보유 기능성 소재로서의 활용을 위한 근거자료로 이용 될 수 있을 것으로 판단된다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
항산화능을 보유한 생리활성 소재의 개발이 필요한 원초적인 이유는 무엇인가?
생명 유지의 기본 단계인 호흡과 대사과정에서 끊임없이 발생하는 활성산소종(reactive oxygen species, ROS)은 산화적 스트레스(oxidative stress)를 유발하여 세포조직에 치명적인 손상을 일으키며, 암, 뇌 질환, 동맥경화, 당뇨병, 천식 등의 질병 뿐만 아니라 노화의 직·간접적인 요인으로도 작용하는 것으로 알려지고 있다[3, 7, 12, 24, 25]. 또한 염증은 외부자극에 대한 생체조직의 방어 기전이나, 지속적인 염증 반응은 조직의 손상을 일으켜 암을 비롯한 각종 질병을 유발한다[5, 8]. 이러한 관점에서 기능성 소재가 보유한 항산화능은 다양한 생리활성의 밑바탕이 되며 특히 산화적 스트레스와 염증에 의해 쉽게 발생하는 여러 가지 질환에 대응하기 위해서는 강한 항산화능을 보유한 생리활성 소재의 개발이 매우 중요하다.
Ardisia arborescens은 무엇인가?
Ardisia arborescens는 자금우과(Myrsinacea)에 속하는 소교목이며 동아시아 지역, 특히 중국에 분포한다. 일반적인 높이는 2~5 m이고, 개화시기는 2~4월이며, 9~11월에 열매를 맺는다.
외부 자극에 의해 과량 생산된 염증 매개인자는 무엇을 분비하여 다양한 염증 반응을 유발하는가?
생체 내 염증 반응은 대식세포(macrophage)에서 생산되는 염증 매개인자(inflammatory mediators)로 부터 유래되는데 inducible nitric oxide synthase (iNOS)에 의해 생산되는 nitric oxide (NO)와 cyclooxygenase 2 (COX-2)에 의해 생산되는 prostaglandin E2 (PGE2) 등이 대표적이다. 외부 자극에 의해 과량 생산된 염증 매개인자는 tumor necrosis factor-α, interleukin 1β 등과 같은 사이토카인을 분비하여 다양한 염증 반응을 유발한다[14, 15]. 염증 반응의 대표적인 세포 실험계 중 하나인 RAW 264.
참고문헌 (40)
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