[논문]토양 염류 농도가 인삼 잎의 엽록소 형광반응 및 생리장해 발생에 미치는 영향

김장욱; 현동윤; 김영창; 이정우; 조익현; 김동휘; 김기홍; 손재근

doi:10.7783/kjmcs.2015.23.6.446

[국내논문] 토양 염류 농도가 인삼 잎의 엽록소 형광반응 및 생리장해 발생에 미치는 영향
Effects of Salt in Soil Condition on Chlorophyll Fluorescence and Physiological Disorder in Panax ginseng C. A. Meyer 원문보기

韓國藥用作物學會誌 = Korean journal of medicinal crop science, v.23 no.6, 2015년, pp.446 - 453

김장욱 (농촌진흥청 국립원예특작과학원 인삼특작부) , 현동윤 (농촌진흥청 국립원예특작과학원 기획조정과) , 김영창 (농촌진흥청 국립원예특작과학원 인삼특작부) , 이정우 (농촌진흥청 국립원예특작과학원 인삼특작부) , 조익현 (농촌진흥청 국립원예특작과학원 인삼특작부) , 김동휘 (농촌진흥청 국립원예특작과학원 인삼특작부) , 김기홍 (농촌진흥청 국립원예특작과학원 인삼특작부) , 손재근 (경북대학교 농업생명과학대학 응용생명과학부)

Abstract ▼ AI-Helper

Background : Excessively high concentration of sodium ion causednutrient deficiency and significantly decrease growth. This study was carried out to determine the limiting concentration range of sodium ion in the soil of ginseng field. Methods and Results : The growth of the ginseng cultivar Chunpoong reduced with increase in salinity, and the rate of growth reduction was higher in shoots than that of roots. Particularly, ginseng plants cultivated at high level of nitrate nitrogen or sodium may suffer delayed development and stunted growth. Chlorophyll damage occurred on the leaves of ginseng planted in relatively high levels (> $0.2cmol^+/kg$) of sodium ion, as determined by the fluorescence reaction. The incidence of physiological disorder in ginseng cultivated at 249 sites was correlated with the concentration of sodium ion in the soils. About 74% of ginseng fields in which physiological disorders occurred had concentrations of sodium ion in soil greater than $0.2cmol^+/kg$. In contrast, the concentration of sodium ions at 51 of 85 sites where no damage occurred was relatively ($0.05cmol^+/kg-0.15cmol^+/kg$). Conclusions : The concentration of sodium ion in soil of ginseng fields can be classified into three levels optimum (${\leq}0.15$), permissible allowance (0.15 - 0.2) and excessive (> 0.2).

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

따라서 본 연구는 새로이 대두되고 있는 염류 스트레스의 원인과 대책을 강구하고자 인삼의 잎과 뿌리에서의 반응을 분석하는 생리적 접근방식을 사용하여, 포트시험을 통해 생육특성 및 엽록소 형광반응 분석을 수행하였고, 이를 인삼 재배지 생리장해 토양의 화학성 조사결과와 비교하여 인삼 재배지 적정 나트륨 이온 농도를 구명하고, 나아가 내염성 인삼 육종의 기초 자료를 제공하고자 수행하였다.

제안 방법

이후 actinic light (2,000 ㏖/㎡/s)를 조사하여 Fp를 측정하였고, 형광이 계속 감소하여 평형상태에 도달하는 Fs를 측정하였다. 광합성계에서 흡수한 빛 중에서 광계 반응중심 (reaction center)으로 전달되는 빛의 양을 Fp-Fs (Fd)로 계산하였고, PSII의 광화학효율은 전자 전달의 양자수율 (Fd/Fp)로 계산하였다.
먼저 형광반응을 분석하기위해 염류농도별로 재배된 인삼을 1시간 동안 광을 차단하여 암적응 시켰다. 그리고 측정광(measuring light)을 비춰 Fo를 측정한 다음, 암적응된 잎에 포화 플래시 (2,000 ㏖/㎡/s)를 비추어 최대 형광 값인 Fm을 측정하였다. 이후 actinic light (2,000 ㏖/㎡/s)를 조사하여 Fp를 측정하였고, 형광이 계속 감소하여 평형상태에 도달하는 Fs를 측정하였다.
따라서 본 시험에서는 염류 농도별로 생육한 인삼 잎에 포화플래시를 조사하여 얻은 Fo, Fm, Fv 대신, actinic light(2,000 ㏖/㎡/s)를 조사하여 얻은 Fp, Fs, Fd 및 Fd/Fp 값을 사용하였으며, 그 값을 상대적으로 나타낸 것은 Fig. 4에서 보는 바와 같다.
먼저 형광반응을 분석하기위해 염류농도별로 재배된 인삼을 1시간 동안 광을 차단하여 암적응 시켰다. 그리고 측정광(measuring light)을 비춰 Fo를 측정한 다음, 암적응된 잎에 포화 플래시 (2,000 ㏖/㎡/s)를 비추어 최대 형광 값인 Fm을 측정하였다.
본 시험에서는 염류가 집적된 토양에 사양토와 부엽토를 섞어서 염류 농도를 7수준 (0.45 - 4.50 dS/m)으로 조절하고 크기가 40 ㎝ (길이) × 30 ㎝ (너비) × 30 ㎝ (높이)인 포트에 염분 농도별로 3포트씩 만들어, 5반복 시험하였다.
그리고 측정광(measuring light)을 비춰 Fo를 측정한 다음, 암적응된 잎에 포화 플래시 (2,000 ㏖/㎡/s)를 비추어 최대 형광 값인 Fm을 측정하였다. 이후 actinic light (2,000 ㏖/㎡/s)를 조사하여 Fp를 측정하였고, 형광이 계속 감소하여 평형상태에 도달하는 Fs를 측정하였다. 광합성계에서 흡수한 빛 중에서 광계 반응중심 (reaction center)으로 전달되는 빛의 양을 Fp-Fs (Fd)로 계산하였고, PSII의 광화학효율은 전자 전달의 양자수율 (Fd/Fp)로 계산하였다.
인삼을 이식하기 전에 농촌진흥청 인삼특작부의 포장에서 채취한 사양토 [pH 5.2, EC 0.4 dS/m, 질산태질소 (NO₃-N) 20.9 ㎎/㎏, 인산 (P₂O₅) 77.0 ㎎/㎏, K⁺ 0.3 c㏖⁺/㎏, Mg²⁺ 2.3 c㏖⁺/㎏, Na⁺ 0.10 c㏖⁺/㎏, Ca²⁺ 2.3 c㏖⁺/㎏, 유기물 (OM) 7 g/㎏]와 부엽토 [pH 5.0, EC 3.2 dS/m, 질산태질소 (NO₃-N) 478.1 ㎎/㎏, 인산 (P₂O₅) 719.6 ㎎/㎏, K⁺ 1.4 c㏖⁺/㎏, Mg²⁺ 2.9 c㏖⁺/㎏, Na⁺ 0.07 c㏖⁺/㎏, Ca²⁺ 7.6 c㏖⁺/㎏, 유기물 (OM) 35 g/㎏]를 2 ㎏씩 섞어서 염류 농도를 조절하였다.
인삼의 생육특성은 지상부와 지하부로 나누어 처리별 10개체씩 3반복 조사하였다. 지상부 특성으로는 초장, 엽장 및 엽폭을 조사하였고, 지하부는 근장, 근중, 동체 길이와 두께를 조사하였다.
인삼의 생육특성은 지상부와 지하부로 나누어 처리별 10개체씩 3반복 조사하였다. 지상부 특성으로는 초장, 엽장 및 엽폭을 조사하였고, 지하부는 근장, 근중, 동체 길이와 두께를 조사하였다. 생리장해는 토양 나트륨 (Na+ )과 밀접한 관련이 있는 잎의 황증과 뿌리의 적변 정도를 조사하였다 (Hyun et al.

대상 데이터

2010년 10월 인삼특작부 시험포장에 ‘천풍’ 종자를 파종하여 2011년 3월에 채굴한 무게 0.8 - 1.0 g, 길이 13 - 15 ㎝의 1년생 묘삼을 사용하였으며, 5 ㎝ × 5 ㎝ 간격으로 포트당 24주씩, 20 ㎝의 깊이로 이식하였다.
염류집적 토양은 충북 음성군 농촌진흥청 인삼특작부 인근 비닐하우스 재배농가에서 채취하였으며, 평균적으로 점토 16.4%, 모래 67.6%, 유기물 (OM, Organic matter) 0.65 g/㎏ 을 함유하였고, 염류농도 (EC)는 7.05 dS/m를 나타냈다.
인삼 재배지 생리장해 조사는 강원도 15개소, 경기도 57개소, 충청북도 47개소, 충청남도 30개소, 전라북도 21개소, 경상북도 31개소, 총 6개 도 17개 시군 재배농가의 4년근 포지 249개소를 대상으로 실시하였고, 생리장해 조사는 농촌진흥청의 농업과학기술 연구 조사 분석 기준 (NIAST, 2003)에 준하여 토양 나트륨 (Na⁺)과 밀접한 관련이 있는 잎의 황증과 뿌리의 적변을 대상으로 조사하였다 (Hyun et al., 2009).

데이터처리

토양 나트륨 이온 농도가 인삼생리장해에 미치는 영향을 구명하기 위하여 SAS v9.2 (SAS Institute inc., Cary, NC, USA)를 이용하여 분산분석, 상관 및 회귀분석 등을 계산하였다.

이론/모형

1. Measurement of chlorophyll fluorescence from a ginseng leaf by the saturation pulse method using a Image Fluorometer. Fo; Initial fluorescence intensity, Fm; Maximum fluorescence, Fp; Maximum intensity during the rise of the fluorescence at the beginning, Fs; Final steady-state value.
본 시험은 2011년 4월-10월까지 농촌진흥청 인삼특작부 비닐하우스 포장에서 인삼 GAP 표준재배지침서 (RDA, 2009b)에 준하여 수행하였다.
인삼의 광합성 효율은 포트실험 재료로 포화펄스방식 (Quick and Horton, 1984; Dietz et al., 1985; Schreiber et al., 1986)에 의한 엽록소 형광반응 이미지 분석으로 실시하였으며, Nedbal 등 (2000)과 Park 등 (2010)의 방법에 따라 Image Fluorometer (Handy FluorCam, Photo System Instruments, Drasov, Czech)를 이용하여 인삼 잎의 엽록소 형광반응을 측정하였다 (Fig. 1).
토양 pH와 EC는 초자전극법을 이용하여 측정하였고, NO3−-N 분석은 풍건토양 10 g을 100 ㎖ 삼각플라스크에 넣고 2 M KC1 50 ㎖를 가하여 30분간 진탕한 후 NO. 2 여과지로 여과한 후 원소자동분석기 (Autoanalyzer3, Bran + Luebbe, Hamburg, Germany)로 자동비색 정량하였으며, 유기물 분석은 Tyurin법으로, 유효인산함량은 Lancaster법으로 측정하였고 (NIAST, 2000), 치환성 양이온 (K, Ca, Mg, Na)은 토양 5g에 1 NNH4OAc (pH 7.0) 완충용액 50 ㎖를 넣고 30분간 진탕한 후 침출, 여과하여 유도결합플라스마 발광광도계 (ICP, GBC Integra XMP, Braeside, Australia)로 측정하였다.
토양화학성 분석은 농촌진흥청 농업과학기술원 토양 및 식물체 분석법(NIAST, 2000)에 준하여, pH, EC, NO₃-N, 유기물, 유효인산, 치환성양이온 K, Ca, Mg, Na 등을 분석하였다. 토양 pH와 EC는 초자전극법을 이용하여 측정하였고, NO₃⁻-N 분석은 풍건토양 10 g을 100 ㎖ 삼각플라스크에 넣고 2 M KC1 50 ㎖를 가하여 30분간 진탕한 후 NO.

성능/효과

PSⅡ의 광화학효율을 보면 전자전달의 양자수율로 계산한 Fd/Fp는 각각 0.12 c㏖⁺/㎏ 에서 0.58, 0.21 c㏖⁺/㎏에서 0.39, 0.40 c㏖⁺/㎏에서 0.54, 0.70 c㏖⁺/㎏에서 0.16, 0.84 c㏖⁺/㎏ 에서 0.29로서, 광화학효율 역시 나트륨 이온 농도가 0.40 c㏖⁺/㎏까지는 유의하게 감소하다가 그 이상의 농도에서 는 급격하게 감소하는 것으로 나타났다. 높은 염류 농도 조건 하에서 자란 식물의 경우 엽록체 내에 thylakoid 및 grana의 수가 감소한다고 하였으며 (Hajibagheri and Flower, 1985; Keiper et al.
4). 광합성계에서 흡수한 빛 중 광계 반응중심 (reaction center)으로 전달되는 빛의 양을 계산한 Fd의 값은 각각 0.12 c㏖⁺/㎏ 에서 817.9, 0.21 c㏖⁺/㎏에서 446.8, 0.40 c㏖⁺/㎏에서 560.9, 0.70 c㏖⁺/㎏ 에서 107.8, 0.84 c㏖⁺/㎏에서 167.1로 나트륨 이온 농도가 0.40 c㏖⁺/㎏까지는 유의하게 감소하다가 그 이상의 농도에서는 고도로 유의하게 감소하는 것을 알 수 있다.
본 시험에서도 질산태질소 함량이 높은 경우, 생육이 진전되면서 잎의 황증과 뿌리 적변의 발생률이 높아지고, 근장과 근경 등 지하부 생육도 감소하였다. 나트륨의 함량도 높을 경우 뿌리의 생육이 나빠지면서 황증과 적변이 동시에 발생하는 데, 지상부에서는 초장의 감소를 비롯하여 엽장과 엽폭이 줄어 엽면적이 감소하였으며 (Table 2), 지하부 생육에서도 근직경과 근중이 감소되는 경향을 보였다 (Table 3). 또한, 염류농도 (EC)와 질산태질소 (NO₃-N) 및 나트륨 이온 농도 간의 관계를 분석한 상관계수의 값이 질산태질소와는 0.
70 c㏖⁺/㎏부터는 손상이 진행되어 grana의 감소 또는 미발달을 야기해 빛 이용 효율이 현저하게 떨어지는 것으로 생각된다. 따라서 포트 내 적정 나트륨 이온 농도는 0.21 c㏖⁺/㎏ 이내일 것으로 보이며, 이 결과는 인삼 측근 발달에 영향을 미치는 나트륨 이온의 농도(0.20 c㏖⁺/㎏)와 거의 일치하였다.
나트륨의 함량도 높을 경우 뿌리의 생육이 나빠지면서 황증과 적변이 동시에 발생하는 데, 지상부에서는 초장의 감소를 비롯하여 엽장과 엽폭이 줄어 엽면적이 감소하였으며 (Table 2), 지하부 생육에서도 근직경과 근중이 감소되는 경향을 보였다 (Table 3). 또한, 염류농도 (EC)와 질산태질소 (NO₃-N) 및 나트륨 이온 농도 간의 관계를 분석한 상관계수의 값이 질산태질소와는 0.964, 나트륨 이온과는 0.973으로 각각 고도의 유의한 정의 상관이 인정되었고, 나트륨 이온이 질산태질소에 비해 염류농도 증가에 더 깊이 관여하는 것으로 분석되었다 (Fig. 2). 이것은 토양화학 성분 중 잎의 황증에 영향을 미치는 성분은 나트륨, 질산태질소, 염류농도 순이고, 뿌리의 적변 발생률에 영향을 미치는 성분은 염류농도, 질산태질소, 나트륨 순으로 기여한다는 Hyun 등 (2009)의 결과와 일치한다.
, 1998; Chung and Choi, 2003). 본 시험 결과에서 인삼은 나트륨 이온 농도 0.21 c㏖⁺/㎏ 부터 엽록체의 손상이 일어나기 시작하고, 0.70 c㏖⁺/㎏부터는 손상이 진행되어 grana의 감소 또는 미발달을 야기해 빛 이용 효율이 현저하게 떨어지는 것으로 생각된다. 따라서 포트 내 적정 나트륨 이온 농도는 0.
Heimann (1966)은 저염류농도 조건에서 Na⁺와 K⁺의 길항작용이 있어 저염류농도 조건에서는 식물의 생육이 대조구보다 더 촉진되나 고염도에서는 양자간에 길항작용이 있어 생육 저해를 받는 다고 하였다. 본 시험에서 생리장해가 발생하지 않은 포장 85개소 중 52개소 (61.2%)가 해당된 0.15 c㏖⁺/㎏ 이하의 범위는 K⁺와의 길항작용으로 생육이 촉진되는 적정 범위이고, 뿌리에는 다소 영향을 주지만 잎에는 거의 영향을 미치지 않는 0.15 - 0.2 c㏖⁺/㎏ 범위는 허용범위이며, 생리장해가 발생된 포지 164개소의 73.8% (121개소)가 해당된 0.2 c㏖⁺/㎏ 이상의 범위는 생육 저해를 받는 Na⁺ 과잉 범위라 할 수 있다.
본 시험에서도 질산태질소 함량이 높은 경우, 생육이 진전되면서 잎의 황증과 뿌리 적변의 발생률이 높아지고, 근장과 근경 등 지하부 생육도 감소하였다. 나트륨의 함량도 높을 경우 뿌리의 생육이 나빠지면서 황증과 적변이 동시에 발생하는 데, 지상부에서는 초장의 감소를 비롯하여 엽장과 엽폭이 줄어 엽면적이 감소하였으며 (Table 2), 지하부 생육에서도 근직경과 근중이 감소되는 경향을 보였다 (Table 3).
0)로 되어있다 (RDA, 2009a). 본 연구에 이용된 토양의 경우 염류농도가 적정치보다 매우 높은 3.23, 3.98 및 4.50 dS/m 포트에서만 질산태질소와 칼슘의 함량이 허용범위보다 약간 높았을 뿐 다른 처리에서는 대부분이 허용범위에 포함되었다.
생리장해가 발생되지 않은 포지에서 나트륨 이온 농도는 조사된 재배농가(85개소)의 60.0% 가 0.05 - 0.15 c㏖+/㎏ 범위에 해당되며 생리장해가 발생된 포지에서 나트륨 농도는 조사된 재배농가 (164개소)의 73.9%가 0.2 c㏖+/㎏ 이상의 범위에 해당되었으며, 이것은 측근 발생에 영향을 미치는 나트륨 농도 및 광합성 형광반응 실험 결과와 거의 일치한다.
염류 농도별 인삼 잎의 엽록소 형광 반응 결과 Fp (Elapse time : 47.88s)는 각각 0.12 c㏖⁺/㎏ 에서 1,414.4, 0.21 c㏖⁺/㎏ 에서 1,151.7, 0.40 c㏖⁺/㎏ 에서 1,034.6, 0.70 c㏖⁺/㎏ 에서 694.4, 0.84 c㏖⁺/㎏ 에서 584.3으로 나타났으며, Fs값 (Elapse time : 104.68s)은 각각 0.12 c㏖⁺/㎏ 에서 596.5, 0.21 c㏖⁺/㎏ 에서 704.9, 0.40 c㏖⁺/㎏에서 473.7, 0.70 c㏖⁺/㎏에서 586.6, 0.84 c㏖⁺/㎏에서 417.2로 나타났다 (Fig. 4). 광합성계에서 흡수한 빛 중 광계 반응중심 (reaction center)으로 전달되는 빛의 양을 계산한 Fd의 값은 각각 0.
이상의 결과에서 토양 나트륨 이온 함량 기준을 적합, 허용 및 과다로 구분하였을 경우 적합은 0.15 c㏖⁺/㎏ 이하, 허용은 0.15 - 0.2 c㏖⁺/㎏,과다는 0.2 c㏖⁺/㎏이상으로 추천할 수 있다. 설정된 토양 나트륨 이온 함량 기준은 농촌진흥청 인삼 예정지관리 표준지침 및 표준인삼재배법에 적정 나트륨 농도 설정 기준으로 활용될 수 있을 것으로 생각된다.
이식 60일 후에 조사한 토양 염류농도별 2년생 ‘천풍’의 주요 지상부 생육 특성은 염류농도가 높을수록 유의하게 감소하였으며, 4.0 dS/m 이상의 염류농도에서는 모두 고사하였다 (Table 2).

후속연구

2 c㏖⁺/㎏이상으로 추천할 수 있다. 설정된 토양 나트륨 이온 함량 기준은 농촌진흥청 인삼 예정지관리 표준지침 및 표준인삼재배법에 적정 나트륨 농도 설정 기준으로 활용될 수 있을 것으로 생각된다.

질의응답

핵심어	질문	논문에서 추출한 답변
	인삼이 타 작물에 비하여 토양 특성에 영향을 더 많이 받는 이유는 무엇인가?	, 2004). 인삼은 다른 식물과 달리 반음지 호냉성 식물로서 생육 최적온도가 18 - 22℃로 고온을 싫어하고, 10℃ 이하에서 100일 이상 지속되어야만 인삼 뇌두의 휴면이 타파되며, 고광 조건을 선호하지 않아 70 - 80% 정도의 그늘을 필요로 할 뿐만 아니라 (RDA, 2009a), 보통 3-5년의 긴 생육기간 동안 동일한 장소에서 자라기 때문에 타 작물에 비하여 특히 토양 특성에 따른 영향을 더 많이 받는다 (Kang et al., 2007; Jin et al.
	국내 2014년 인삼 재배면적은 어떠한가?	우리나라 인삼 재배면적은 1996년 8,940 ha 이후 재배면적이 지속적으로 증가하여, 2000년에는 12,445 ha, 2009년에는 19,702 ha에 이르렀다. 그러나 2009년 이후 신규재배면적이 감소되면서 2014년에는 14,652 ha까지 감소하였다 (MAFRA, 2015). 그 결과 초작지 부족으로 인해 화학비료를 다량 연용한 다비작물 재배지가 예정지로 선정되는가 하면, 청초만 기비로 사용하던 과거 재배방식과 달리 농후사료를 먹인 각종 가축분뇨를 다량 시용함에 따라 토양 염류집적 문제가 심각하게 대두되고 있다 (Yoo et al.
	고려인삼은 어떤 식물인가?	A. Meyer)은 산형목 두릅나무과 (Araliaceae) 인삼속 (Panax)에 속하는 다년생 식물로, 국내에서는 한반도 전역에서 자생하고 있다. 현재 제주도 및 도서지역을 제외한 지역에서 시설재배 되고 있으며, 세계적으로 중국의 동북 3성 및 러시아 연해주 지역 등 북위 34 - 48 o 사이의 동북아시아 지역에서 자생한다 (Woo et al.

참고문헌 (49)

Adams WW, Winter K, Schreiber U and Schramel P. (1990). Photosynthesis and chlorophyll fluorescence characteristics in relationship to changes in pigment and element composition of leaves of Platanus occidentalis L. during autumnal leaf senescence. Plant Physiology. 92:1184-1190.

상세보기
Amitai-Zeigersona H, Scolnik PA and Bar-Zvi D. (1995). Tomato Asrl mRNA and protein are transiently expressed following salt stress, osmotic stress and treatment with abscisic acid. Plant Science. 110:205-213.

상세보기
Baligar VC, Fageria NK and Elrashidi MA. (1998). Toxicity and nutrient constraints on root growth. HortScience. 33:960- 965.
Banzai T, Hershkovits G, Katcoff DJ, Hanagata N, Dubinsky Z and Karube I. (2002). Identification and characterization of mRNA transcripts differentially expressed in response to high salinity by means of differential display in the mangrove, Bruguiera gymnorrhiza. Plant Science. 162:499-505.

상세보기
Boardman NK. (1977). Comparative photosynthesis of sun and shade plants. Annual Review of Plant Physiology. 28:355-377.

상세보기
Chazdon RL and Kaufmann S. (1993). Plasticity of leaf anatomy of two rain forest shrubs in relation to photosynthetic light acclimation. Functional Ecology. 7:385-394.

상세보기
Chung HD and Choi YJ. (2003). Ultrastructural changes in leaves of chinese cabbage(Brassica campestris ssp. pekinensis) and radicle tissues of radish(Raphanus sativus) grown in high soil EC. Horticulture Environment and Biotechnology. 44:582-587.
Chung YR, Ohh SH, Lee IH and Park CS. (1985). Studies on the biological and chemical properties of rusty ginseng root and its causal mechanism. Korean Journal of Ginseng Science. 9:24-35.
Dietz KJ, Schreiber U and Heber U. (1985). The relationship between the redox state of QA and photosynthesis in leaves at various carbon dioxide, oxygen and light regimes. Planta. 166:219-226.

상세보기
Evans JR. (1989). Partitioning of nitrogen between and within leaves grown under different irradiances. Australian Journal of Plant Physiology. 16:533-548.

상세보기
Genty B, Briantais JM and Baker NR. (1989). The relationship between the quantum yield of photosynthetic electron transport and quenching of chlorophyll fluorescence. Biochimica et Biophysica Acta. 990:87-92.

상세보기
Hajibagheri MA and Flower TJ. (1985). Salt tolerance in the halophyte Suaeda maritima(L.) Dum. the influence of the salinity of the culture solution on leaf starch and phosphate content. Plant Cell and Environment. 8:261-267.

상세보기
Hanan JJ. (1997). Greenhouses: Advanced technology for protected horticulture. CRC Press. Boca Raton. FL, USA. p.420-427.
Heimann H. (1966). Plant growth under saline conditions and the balance of the ionic environment. In Boyko H.(ed.). Salinity and aridity. Springer Netherlands. Heidelberg, Germany. p.201- 213.
Hyun DY, Yeon BY, Lee SW, Kang SW, Hyun GS, Kim YC, Lee KW and Kim SM. (2009). Analysis of occurrence type of physiological disorder to soil chemical components in ginseng cultivated field. Korean Journal of Medicinal Crop Science. 17:439-444.
Jang IB, Hyun DY, Lee SW, Kim YC, Kim JU, Park GC, Bang KH and Kim KH. (2013). Analysis of growth characteristics and physiological disorder of Korean ginseng affected by application of manure in paddy converted field. Korean Journal of Medicinal Crop Science. 21:380-387.

원문보기 상세보기
Jang IB, Hyun DY, Lee EH, Park KC, Yu J, Park HW, Lee SW and Kim KH. (2014). Analysis of growth characteristics and physiological disorder of Korean ginseng affected by application of decomposing plant residues in paddy converted field. Korean Journal of Medicinal Crop Science. 22:140-146.

원문보기 상세보기
Jin HO, Kim UJ and Yang DC. (2009). Effect of nutritional environment in ginseng field on the plant growth of ginseng (Panax ginseng C. A. Meyer). Journal of Ginseng Research. 33:234-239.

원문보기 상세보기
Kang SW, Yeon BY, Hyun GS, Bae YS, Lee SW and Seong NS. (2007). Changes of soil chemical properties and root injury ratio by progress years of post-harvest in continuous cropping soils of ginseng. Korean Journal of Medicinal Crop Science. 15:157-161.
Keiper FJ, Chen DM and De Filippis LF. (1998). Respiratory, photosynthetic, and ultrastructural change accompanying salt adaptation in culture of Eucalyptus microcorys. Journal of Plant Physiology. 152:564-573.

상세보기
Kim ST, Bae DW, Lee KH, Hwang JE, Bang KH, Kim YC, Kim OT, Yoo NH, Kang KY, Hyun DY and Lim CO. (2008). Proteomic analysis of Korean ginseng(Panax ginseng C. A. Meyer) following exposure to salt stress. Journal of Plant Biotechnology. 35:185-193.

원문보기 상세보기
Kwon TR, Harris PJC and Bourne WF. (1999). Partitioning of $Na^+$ , $K^+$ , proline, and total soluble sugar in relation to the salinity tolerance of Brassica juncea and Brassica rapa. Journal of the Korean Society for Horticultural Science. 40:425-430.

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Lee IH, Yuk CS and Park H. (1989a). Yield and missing plant rate of Panax ginseng affected by the annual change in physico-chemial properties of ginseng cultivated soil. Korean Journal of Soil Science and Fertilizer. 22:18-24.
Lee IH, Yuk CS, Han KW, Park CS, Park HS and Nam KY. (1980a). Influence of various soil characteristics in ginseng field on the growth and the yield of ginseng(Panax ginseng C. A. Meyer). Korean Journal of Ginseng Science. 4:175-185.
Lee IH, Yuk CS, Han KW, Nam KY and Bae HW. (1980b). Influence of soil chemical properties in ginseng field on the growth and the yield of ginseng. Korean Journal of Soil Science and Fertilizer. 13:99-105.
Lee JC, Lee IH and Hahn WS. (1984). Statistic model by soil physico-chemical properties for prediction of ginseng root yield. Korean Journal of Soil Science and Fertilizer. 17:371-374.
Lee JC, Cheon SK, Kim YT and Jo JS. (1980c). Studies on the effect of shading materials on the temperature, light intensity, photosynthesis and the root growth of the Korean ginseng (Panax ginseng C. A. Meyer). Korean Journal of Crop Science. 25:91-98.
Lee TS, Kim MS and Hong SK. (1989b). Studies on the marginal leaf chlorosis of ginseng plant. I. The effect of excess manganese uptake on the occurrence of marginal leaf chlorosis. Korean Journal of Ginseng Science. 13:105-113.
Lee TS, Mok SK, Cheon SK, Choi KJ and Choi J. (1995). Chemical components of rusty root of ginseng. Journal of Ginseng Research. 19:77-83.
Leidi EO and Saiz JF. (1997). Is salinity tolerance related to Na accumulation in upland cotton(Gossypium hirsutum) seedlings? Plant and Soil. 190:67-75.

상세보기
Lim SU and Lee MK. (1986). Comparative study on the leaf pigment compositions of Korean ginseng(Panax ginseng C. A. Meyer) as shade plant. Journal of the Korean Agricultural Chemical Society. 29:219-226.
Ministry of Agriculture, Food and Rural Affairs(MAFRA). (2015). Statistical sourcebook of ginseng 2014. Ministry of Agriculture, Food and Rural Affairs. Sejong, Korea. p.2-3.
Munns R and Tester M. (2008). Mechanisms of salinity tolerance. Annual Review of Plant Biology. 59:651-681.

상세보기
Nedbal L, SoukupovJ, Kaftan D, Whitmarsh J and Trtlek M. (2000). Kinetic imaging of chlorophyll fluorescence using modulated light. Photosynthesis Research. 66:3-12.
National Institute of Agricultural Sciences and Technology (NIAST). (2000). Methods of soil chemical analysis. National Institute of Agricultural Sciences and Technology. Rural Development Administration. Suwon, Korea p.108-149.
National Institute of Agricultural Sciences and Technology (NIAST). (2003). Monitoring project on agri-environment quality in Korea. National Institute of Agricultural Sciences and Technology, Rural Development Administration. Suwon, Korea. p.7-55.
Park H. (1982). Water physiology of Panax ginseng III. Soil moisture, physiological disorder, diseases, insects and quality. Korean Journal of Ginseng Science. 6:168-203.
Park H, Mok SK and Kim KS. (1982). Relationship between soil moisture, organic matter and plant growth in ginseng plantations. Korean Journal of Soil Science and Fertilizer. 15:156-162.
Park SJ, Kim DY, Yoo SY, Kim HH, Ko TS, Shim MY, Park SH, Yang JA, Eom KC, Hong SH and Kim TW. (2010). Response of leaf pigment and chlorophyll fluorescence to light quality in soybean(Glycine max Merr. var. Seoritae). Korean Journal of Soil Science and Fertilizer. 43:400-406.
Quick WP and Horton P. (1984). Studies on the induction of chlorophyll fluorescence in barley protoplasts. II. Resolution of fluorescence quenching by redox state and transthylakoid pH gradient. Proceedings of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences. 220:371-382.

상세보기
Rural Development Administration(RDA). (2009a). Ginseng cultivation standard farming textbook(Revised ed.). Rural Development Administration. Suwon, Korea. p.31-37.
Rural Development Administration(RDA). (2009b). Good agricultural practice of ginseng(Revised ed.). Rural Development Administration. Suwon, Korea. p.70-147.
Schreiber U, Schliwa U and Bilger W. (1986). Continuous recording of photochemical and non-photochemical chlorophyll fluorescence quenching with a new type of modulation fluorometer. Photosynthesis Research. 10:51-62.

상세보기
Terashima I and Hikosaka K. (1995). Comparative ecophysiology of leaf and canopy photosynthesis. Plant Cell and Environment. 18:1111-1128.

상세보기
Volkmar KM, Hu Y and Steppuhn H. (1998). Physiological responses of plant to salinity: A review. Canadian Journal of Plant Science. 78:19-27.

상세보기
Won JY, Lee CY, Oh DJ and Kim SM. (2008). Changes of chlorophyll fluorescence and photosynthesis under different shade materials in Korean ginseng(Panax ginseng C. A. Meyer). Korean Journal of Medicinal Crop Science. 16:416-420.
Woo SY, Lee DS and Kim PG. (2004). Growth and Ecophysiological characteristics of Panax ginseng grown under three different forest type. Journal of Plant Biology. 47:230-235.

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Yoo SH, Choi WJ and Han GH. (1999). An investigation of the sources of nitrate contamination in the Kyonggi province groundwater by isotope ratios analysis of nitrogen. Korean Journal of Soil Science and Fertilizer. 32:47-56.
Zeidan I, Azaizeh H and Newmann PM. (1990). Does salinity reduce growth in maize root epidermal cells by inhibiting their capacity for cell wall acidification? Plant Physiology. 93:7-11.

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표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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