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수온 및 염분 스트레스에 따 른 참담치, Mytilus coruscus에서 Hsp70 및 GST 유전자 발현에 대한 연구
The Expression of Hsp70 and GST Genes in Mytilus coruscus Exposed to Water Temperature and Salinity 원문보기

환경생물 = Korean journal of environmental biology, v.33 no.4, 2015년, pp.450 - 458  

김철원 (한국농수산대학교) ,  강한승 (엠에스바이오랩)

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

The heat shock proteins (Hsps), one of the most highly conserved groups of proteins, play crucial roles in protecting cells against environmental stressors, such as temperature, salinity, heavy metals and pathogenic bacteria. The glutathione S-transferases (GST) have important role in detoxification...

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문제 정의

  •  본 연구는 참담치를 이용하여 수온 및 염분 등의 환경요인 변화에 따른 스트레스 관련 유전자인 Hsp70 및 GST 유전자발현양상을 통해 생체 내 스트레스의 상태를 알아보고자 함을 연구의 목적으로 두었다.
  • 본 연구에서는 온도 및 염분 등의 환경요인이 참담치에 미치는 영향에 관한 연구의 일환으로 스트레스 관련 유전자인 Hsp70과 GST 단백질의 mRNA 유전자발현을 조사하고자 한다.
  • 염분농도의 설정은 자연해수에서 평균 염분농도보다 높은 고농도가 발생할 가능성이 낮을 것 이라는 판단에서 자연해수의 염분농도에 비교하여 낮은 염분농도를 설정하여 저염분이 참담치에 미치는 영향을 관찰하고자 하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
참담치란? 이매패강(Bivalvia), 홍합목(Mytiloida), 홍합과(Mytildae)에 속하는 이매패류인 참담치 (Mytilus coruscus, Gould)는우리나라, 일본 북태평양 및 중국 황해 연안에만 서식하는고유종으로 산업적 가치가 있는 중요한 패류이며, 생식은 자웅이체로서 체외수정을 한다(Yoo 1988). 형태적 특징은 껍질이 두껍고 칠흑색이며, 모양은 긴 계란형으로서, 접착성이강한 단백질성 섬유 다발인 표류용 족사(drifting thread) 및부착용 족사(attachment thread)를 가지고 있어서, 암초에 군집으로 부착해서 서식하는 특성이 있다 (Lane et al.
참담치의 형태적 특징은? 이매패강(Bivalvia), 홍합목(Mytiloida), 홍합과(Mytildae)에 속하는 이매패류인 참담치 (Mytilus coruscus, Gould)는우리나라, 일본 북태평양 및 중국 황해 연안에만 서식하는고유종으로 산업적 가치가 있는 중요한 패류이며, 생식은 자웅이체로서 체외수정을 한다(Yoo 1988). 형태적 특징은 껍질이 두껍고 칠흑색이며, 모양은 긴 계란형으로서, 접착성이강한 단백질성 섬유 다발인 표류용 족사(drifting thread) 및부착용 족사(attachment thread)를 가지고 있어서, 암초에 군집으로 부착해서 서식하는 특성이 있다 (Lane et al. 1985).
패류의 환경요인이 불안정할 경우 발생하는 현상은? 참담치는 서식의 특성상 환경변화가 많은 조건에 노출되어있다. 참담치 등을 비롯한 패류는 수온 및 염분 등의 외부환경요인에 영향을 받으며 이들 환경요인이 불안정할 경우생화학 및 생리적 변화의 유도에 따른 대사유지를 위한 에너지 불균형에 의해 생산력이 감소된다(Shin and Wi 2004). 이들 환경요인 중 온도는 직접적인 요인으로 대사 및 에너지균형에 영향을 미친다(Newell and Kofoed 1977; Loomiset al.
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참고문헌 (34)

  1. Bailey J, J Parsons and CA Couturier. 1996. Salinity tolerance in the blue mussel, Mytilus edulis. Bull. Aquacult. Assoc. Can. 96:74-76. 

  2. Chapple JP, GR Smerdon and AJS Hawkins. 1997. Stress-70 protein induction in Mytilus edulis: Tissue-specific responses to elevated temperature reflect relative vulnerability and physiological function. J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 217:225-235. 

  3. Chapple JP, GR Smerdon, RJ Berry and AJS Hawkins. 1998. Seasonal changes in stress-70 protein levels reflect thermal tolerance in the marine bivalve Mytilus edulis L. J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 229:53-68. 

  4. Colinet H, SF Lee and A Hoffmann. 2010. Temporal expression of heat shock genes during cold stress and recovery from chill coma in adult Drosophila melanogaster. FEBS J. 277:174-185. 

  5. Fangue NA, M Hofmeister and PM Schulte. 2006. Intraspecific variation in thermal tolerance and heat shock protein gene expression in common killifish, Fundulus heteroclitus. J. Exp. Biol. 209:2859-2872. 

  6. Feder ME and GE Hofmann. 1999. Heat-shock proteins, molecular chaperones, and the stress response: evolutionary and ecological physiology. Annu. Rev. Physiol. 61:243-282. 

  7. Ferraris M, S Radice, P Catalani, M Francolini, L Marabini and E Chiesara. 2002. Early oxidative damage in primary cultured trout hepatocytes: a time course study. Aquat. Toxicol. 50:283-296. 

  8. Georgopoulos C and W Welch. 1993. Role of the major heat shock proteins as molecular chaperones. Annu. Rev. Cell Biol. 9:601-634. 

  9. Hamed RR, NM Farid, SE Elowa and AM Abdalla. 2003. Glutathione related enzyme levels of freshwater fish as bioindicators of pollution. Environmentalist 23:313-322. 

  10. Hansson T, D Schiedek, KK Lehtonen, PJ Vuorinen, Liewenborg, E Noaksson, U Tjarnlund, M Hansson and L Balk. 2006. Biochemical biomarkers in adult female perch (Perca fluviatilis) in a chronically polluted gradient in the Stockholm recipient (Sweden). Marine Poll. Bull. 53:451-468. 

  11. Hayes JD and DJ Pulford. 1995. The glutathione S-transferase supergene family: regulation of GST and the contribution of the isoenzymes to cancer chemprotection and drug resistance. Crit. Rev. Biochem. Mol. Biol. 30:445-600. 

  12. Hayes JD, JU Flanagan and IR Jowsey. 2005. Glutathione transferases. Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 45:51-88. 

  13. Hu F, L Pan, M Xiu, Q Jin G Wang and C Wang. 2015. Bioaccumulation and detoxification responses in the scallop Chlamys farreri exposed to tetrabromobisphenol A (TBBPA). Environ. Toxicol. Pharmacol. 39:997-1007. 

  14. Hughes VF, AK Trull, A Gimson, PJ Friend, N Jamieson, A Duncan, DG Wight, AT Prevost and GJ Alexander. 1997. Randomized trial to evaluate the clinical benefits of serum alpha-glutathione S-transferase concentration monitoring after liver transplantation. Transplantation 64:1446-1452. 

  15. Kim TH, KJ Kim, MK Choi and IK Yeo. 2006. Physiological changes of juvenile abalone, Haliotis sieboldii exposed to acute water-temperature stress. J. Aquacult. 77-83. 

  16. Kregel KC. 2002. Heat shock proteins: modifying factors in physiological stress responses and acquired thermotolerance. J. Appl. Physiol. 92:2177-2186. 

  17. Lane DJW, AR Beaumont and JR Hunter. 1985. Byssus drifting and the drifting threads of the young post larval mussel Mytilus edulis. Mar. Biol. 84:301-308. 

  18. Lau PS and HL Wong. 2003. Effect of size, tissue and location on six biochemical markers in the greenlipped mussel, Perna viridis. Mar. Pollut. Bull. 46:1563-1572. 

  19. Liu D, L Pan, Z Li, Y Cai and J Miao. 2014a. Metabolites analysis, metabolic enzyme activities and bioaccumulation in the clam Ruditapes philippinarum exposed to benzo(a)pyrene. Ecotoxicol. Environ. Saf. 107:251-259. 

  20. Liu H, J He, C Chi and J Shao. 2014b. Differential HSP70 expression in Mytilus coruscus under various stressors. Gene 543:166-173. 

  21. Loguercio C, N Caporaso, C Tuccillo, F Morisco, G Del Vecchio Blanco and C Del Vecchio Blanco. 1998. Alpha-glutathione transferases in HCV-related chronic hepatitis: a new predictive index of response to interferon therapy? J. Hepatol. 28:390-395. 

  22. Loomis SH, AD Ansell, RN Gibson and M Barnes. 1995. Freezing tolerance of marine invertebrates. Oceanogr. Mar. Biol. Annu. Rev. 33:337-350. 

  23. Luca-Abbott SB, BJ Richardson, KE McClellan, GJ Zheng, M Martin and PKS Lam. 2005. Field validation of antioxidant enzyme biomarkers in mussels (Perna viridis) and clams (Ruditapes philippinarum) transplanted in Hong Kong coastal waters. Mar. Pollut. Bull. 51:694-707. 

  24. Myrnes B and IW Nilsen. 2007. Glutathione S-transferase from the Icelandic scallop (Chlamys islandica): isolation and partial characterization. Comp. Biochem. Physiol. C, Toxicol. Pharmacol. 144:403-407. 

  25. Nam BH, EM Park, YO Kim, DG Kim, YJ Jee, SJ Lee and CM An. 2013. Analysis of heat, cold or salinity stress-inducible genes in the Pacific abalone, Haliotis discus hannai, by suppression subtractive hybridization. Korean J. Malacol. 29:181-187. 

  26. Newell RC and LH Kofoed. 1977. Adjustment of the components of energy balance in the gastropod Crepidula fornicate in response to thermal acclimation. Mar. Biol. 44:275-286. 

  27. Parsell D and S Lindquist. 1993. The function of heat-shock proteins in stress tolerance: degradation and reactivation of damaged proteins. Annu. Rev. Genet. 27:437-496. 

  28. Paul AJ and JM Paul. 1998. Respiration rate and thermal tolerances of pinto abalone Haliotis kamtschatkana. J. Shellfish Res. 17:743-745. 

  29. Shin YK and CH Wi. 2004. Effect of temperature and salinity on survival and metabolism of the hard shelled mussel Mytilus coruscus, Bivalve: Mytilidae. J. Aquacult. 17:103-108. 

  30. Werner I. 2004. The influence of salinity on the heat-shock protein response of Potamocorbula amurensis (Bivalvia). Mar. Environ. Res. 58:803-807. 

  31. Wi CH, YJ Chang, SJ Lee, YB Hur and JS Lee. 2003. Sexual maturation and gametogenic cycle of the Hard Shelled Mussel, Mytilus coruscus (Bivalvia: Mytilidae). J. Aquacult. 16:245-251. 

  32. Xu Q and Y Qin. 2012. Molecular cloning of heat shock protein 60 (PtHSP60) from Portunus trituberculatus and its expression response to salinity stress. Cell Stress Chaperone. 17:589-601. 

  33. Yoo SK, KH Kang and DY Lee. 1988. Occurrence and survival rate of the larvae of sea mussel, Mytilus edulis. Korean J. Fish. Aquat. Sci. 21:35-41. 

  34. You L, X Ning, F Liu, J Zhao, Q Wang and H Wu. 2013. The response profiles of HSPA12A and TCTP from Mytilus galloprovincialis to pathogen and cadmium challenge. Fish Shellfish Immunol. 35:343-350. 

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