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주남저수지와 동판저수지의 수생식물에서 분리된 내생균류의 비교 분석
Comparative Analysis of Endophytic Fungi Isolated from Dominant Hydrophytes in Junam and Dongpan Wetland 원문보기

한국균학회지 = The Korean journal of mycology, v.43 no.2, 2015년, pp.92 - 98  

유영현 (경북대학교 생명과학부) ,  박종명 (경북대학교 생명과학부) ,  한경숙 (국립원예특작과학원 원예특작환경과) ,  박종한 (국립원예특작과학원 원예특작환경과) ,  김종국 (경북대학교 생명과학부)

초록
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대표적인 담수습지인 경상남도 창원시 주남저수지와 동판저수지에서 우점하는 수생식물종인 자라풀 및 생이가래를 채집하였다. 주남저수지의 자생식물 뿌리에서 19균주와 동판저수지의 자생식물 뿌리에서 9균주를 순수분리 하였다. 이들 내생균류들의 internal transcribed spacer (ITS) 영역 염기서열을 분석하여 계통수를 작성한 결과 분리된 28균주는 주남저수지의 경우 11속, 동판저수지의 경우 5속에 속하는 것으로 확인되었으며, 두 습지에서 모두 13속의 내생균류가 분리되었다. 이들 중 담수습지별로 공통적으로 분리된 균주는 Fusarium, Phoma 및Talaromyces속으로 확인되었다. 담수습지 및 식물종별 내생균류의 다양성을 분석하였을 때 각각 상이한 지수를 보였으며, 그들 중 환경생태학적으로 중요한 위치를 차지하는 생이가래가 높은 지수를 나타내었다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Hydrocharis dubia Backer and Salvinia natans All. were sampled from the Junam and Dongpan reservoirs, representative freshwater wetlands of Korea. A total of 19 endophytic fungal strains were isolated from hydrophytes native to the Junam wetlands and 5 strains were isolated from the Dongpan wetlands...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 본 연구는 경남지역의 주남저수지와 동판저수지에 우점하고 있는 2종의 수생식물에서 내생균류를 분리하여 습지에 따른 내생균류의 분포상 및 다양성을 비교 및 분석하였다

가설 설정

  • 이로 미루어 볼 때 같은 식물종이라도 자생하는 환경에 따라 분리되는 균주가 다르게 나타나며, 이는 특정한 육상 지형구조에 담수가 고여있는 내륙습지라는 생태환경에 자생하는 내생균류가 차별화되어 적응한 결과로 생각된다. 둘째, 담수식물 마다 뿌리 표피 층의 두께와 근관이 다르기 때문에 수생식물 종 별로 상호작용하는 내생균류 분포상이 식물 종마다 다르다고 할 수 있을 것이다. 수생식물의 종은 다양하지 않으나 수생태계에서 독립적인 형태학적 특징을 가지고 발달 되었으며, 식물뿌리 형태와 구조 등에 따라 분포하는 미생물의 다양성과 분포상 및 내생균류도 다를 것으로 생각된다[7, 12, 13, 15].
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
내생균류가 숙주에게 하는 역할은 무엇인가? 일반적으로 내생균류는 식물의 잎과 뿌리에 많이 분포하고 있으며 수생식물, 염생식물 혹은 작물과 공생하면서 induced systemic resistance (ISR), plant growth promoting fungi (PGPF) 효과로서 숙주식물의 생육 및 발달에 긍정적인 영향을 미치며[9], 환경적 스트레스에 대한 식물체의 면역력을 증가시킨다고 보고되고 있다[10, 11].
습지는 위치에 따라 무엇으로 분류되는가? 습지는 해안에 위치하고 있는 연안습지, 내륙에 분포하는 담수습지로 크게 분류된다. 담수습지는 대기 중의 CO2의 농도증가를 억제하는 기후 안정의 역할을 기본으로 하며 홍수조절, 정화작용, 동·식물 서식처 제공, 탄소-인-질소 순환 및 육상-수생태계 간의 전이지대로서 완충역할을 수행한다[1].
수생식물은 담수 환경에서 어떤 영향을 미치는가? 수생식물은 하천습지와 담수습지 등의 담수환경에서 특징적 군락을 형성하며 서식한다. 이들은 담수의 표면에 서식하며 광합성을 수행하는 기초생산자로서, 수생 생태계의 기능 및 구조에 영향을 미치며[4], 담수환경 하부로의 태양광 투과[5] 및 용존산소량(DO, dissolved oxygen)[6]에 지대한 영향을 미친다. 특히 수생식물의 내부조직에 내생하는 균류는 이들의 생장에 긍정적 영향을 미친다고 보고되고 있으나[7, 8], 국내 담수 생태계에 자생하는 수생식물의 내생균류에 대한 연구는 거의 이루어지지 않고 있다.
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참고문헌 (24)

  1. Whitaker V, Matvienko B. The denitrification potential and hydrological conditions in the wetlands of the Lobo resevoir. In: Proceeding of Verhandlungen Internationale Vereinigung fur Theoretische und Angewandte Limnologie; 1995 Jul 23-29; Sao Paulo, Brazil. International Association of Theoretical & Applied Limnology; 1995. p.1377-82. 

  2. Denny P. Biodiversity and wetlands. Wetlands Ecol Manag 1994;3:55-61. 

  3. Kuczynska-Kippen N. Habitat choice in rotifer communities of three shallow lakes: impact of macrophyte substratum and season. Hydrobiologia 2007;593:27-37. 

  4. Carpenter SR, Lodge DM. Effects of submersed macrophytes on ecosystem processes. Aquatic Bot 1986;26:341-70. 

  5. Yeh TY, Ke TY, Lin YL. Algal growth control within natural water purification systems: macrophyte light shading effects. Water Air Soil Pollut 2011;214:575-86. 

  6. Desmet NJ, Van Belleghem S, Seuntjens P, Bouma, TJ, Buis K, Meire P. Quantification of the impact of macrophytes on oxygen dynamics and nitrogen retention in a vegetated lowland river. Phys Chem Earth 2011;36:479-89. 

  7. You YH, Kang SM, Choi YM, Lee MC, Kim JG. Gibberellins production and identification of endophytic fungi isolated from aquatic plant in fresh water. Kor J Mycol 2015;43:71-6. 

  8. You YH, Kwak TW, Kang SM, Lee MC, Kim JG. Aspergillus clavatus Y2H0002 as a new endophytic fungal strain producing gibberellins isolated from Nymphoides peltata in fresh water. Mycobiology 2015;43:87-91. 

  9. You YH, Yoon H, Kang SM, Woo JR, Choo YS, Lee IJ, Shin JH, Kim JG. Cadophora malorum Cs-8-1 as a new fungal strain producing gibberellins isolated from Calystegia soldanella. J Basic Microbiol 2013;53:630-4. 

  10. Redman RS, Sheehan KB, Stout RG, Rodriguez RJ, Henson JM. Thermotolerance generated by plant/fungal symbiosis. Science 2002;298:1581. 

  11. Waller F, Achatz B, Baltruschat H, Fodor J, Becker K, Fischer M, Heier T, Huckelhoven R, Neumann C, von Wettstein D, et al. The endophytic fungus Piriformospora indica reprograms barley to salt-stress tolerance, disease resistance, and higher yield. Proc Natl Acad Sci USA 2005;102:13386-91. 

  12. You YH, Yoon H, Seo Y, Kim M, Kang MS, Kim C, Ha SC, Cho GY, Kim JG. Genetic diversity of culturable endophytic fungi isolated from halophytes naturally growing in Muan salt marsh. Kor J Life Sci 2012;22:970-80. 

  13. You YH, Seo Y, Yoon H, Kim H, Kim YE, Khalmuratova I, Rim SO, Kim C, Kim JG. Endophytic fungal diversity associated with the roots of coastal sand-dune plants in the Sinduri coastal sand dune, Korea. Kor J Microbiol Biotechnol 2013;41:300-10. 

  14. Khan SA, Hamayun M, Yoon HJ, Kim HY, Suh SJ, Hwang SK, Kim JM, Lee IJ, Choo YS, Yoon UH, et al. Plant growth promotion and Penicillium citrinum. BMC Microbiol 2008;8:231. 

  15. You YH, Yoon H, Kang SM, Shin JH, Choo YS, Lee IJ, Lee JM, Kim JG. Fungal diversity and plant growth promotion of endophytic fungi from six halophytes in Suncheon bay. J Microbiol Biotechnol 2012;22:1549-56. 

  16. White TJ, Bruns TD, Lee SB, Taylor JW. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. In: Innis MA, Gelfand DH, Sninsky JJ, editors. PCR protocols: a guide to methods and applications. San Diego: Academic Press; 1990. p. 315-22. 

  17. Tamura K, Stecher G, Peterson D, Filipski A, Kumar S. MEGA6: molecular evolutionary genetics analysis version 6.0. Mol Biol Evol 2013;30:2725-9. 

  18. Margalef DR. Information theory in ecology. Gen Syst 1958;3:36-71. 

  19. Whittaker RH. Evolution of species diversity in land communities. Evol Biol 1977;10:1-67. 

  20. Fernandez NV, Messuti MI, Fontenla SB. Occurrence of arbuscular mycorrhizas and dark septate endophytes in pteridophytes from a patagonian rainforest, Argentina. J Basic Microbiol 2013;53:498-508. 

  21. Wezowicz K, Rozpadek P, Turnau K. The diversity of endophytic fungi in Verbascum lychnitis from industrial areas. Symbiosis 2014;64:139-47. 

  22. Bezerra JD, Santos MG, Barbosa RN, Svedese VM, Lima DM, Fernandes MJ, Gomes BS, Paiva LM, Almeida-Cortez JS, Souza-Motta CM, et al. Fungal endophytes from cactus Cereus jamacaru in Brazilian tropical dry forest: a first study. Symbiosis 2013;60:53-63. 

  23. Carvalho CR, Goncalves VN, Pereira CB, Johann S, Galliza IV, Alves TM, Rabello A, Sobral ME, Zani CL, Rosa CA, et al. The diversity, antimicrobial and anticancer activity of endophytic fungi associated with the medicinal plant Stryphnodendron adstringens (Mart.) Coville (Fabaceae) from the Brazilian savannah. Symbiosis 2012;57:95-107. 

  24. Soltani J, Hosseyni Moghaddam MS. Fungal endophyte diversity and bioactivity in the Mediterranean cypress Cupressus sempervirens. Curr Microbiol 2015;70:580-6. 

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