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산수유(Corni fructus) 분획 추출물의 항산화 활성 및 RAW 264.7 대식세포에서 염증매개물질 억제 효과
Antioxidant activity and suppression of pro-inflammatory mediator of Corni fructus extracts in activated RAW 264.7 macrophage 원문보기

한국식품저장유통학회지 = Korean journal of food preservation, v.23 no.6, 2016년, pp.876 - 882  

김예진 (경북대학교 식품영양학과) ,  손대열 (대구한의대학교 바이오산업융합학부)

초록
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산수유에 함유된 유효성분을 극성이 다른 용매로 계통분획하여 얻은 추출물(water 분획물, CWF; EtOAc 분획물, CEF; butanol 분획물, CBF)의 항산화활성및 항염증 효과를 확인하였다. 그 결과, 모든 분획물은 농도가 증가함에 따라 자유 라디칼 소거능이 증가하였으며, 특히 가장 높은 폴리페놀 함량(179.3 mg TAE/g)이 확인된 CEF의 경우 대조군으로 사용된 BHA와 ${\alpha}-tocopherol$보다 뛰어난 자유 라디칼 소거활성(DPPH: $RH_{50}$; $25.1{\mu}g/mL$, ABTS: $RC_{50}$; $36.1{\mu}g/mL$)이 확인되다. Mouse macrophage RAW 264.7 cell을 사용하여 NO, $PGE_2$염증성 사이토카인($TNF-{\alpha}$, $IL-1{\beta}$, IL-6)의 생성억제 측정을 통한 항염증 효과 분석 결과, 산수유 분획물(CWF, CEF, CBF)은 용매에 따른 유의적 차이 없이 처리농도 범위($1{\sim}100{\mu}g/mL$)에서 NO, $PGE_2$염증성 cytokine 생성을 유의적으로 억제하였다. CWF와 CEF는 농도 의존적으로 NO 생성을 억제하였으며, $100{\mu}g/mL$ 농도에서 CWF($0.5{\mu}M$)와 CEF($1.2{\mu}M$)는 LPS 비처리군과 유사하게 NO 생성을 억제하였다. $100{\mu}g/mL$ 농도에서 가장 높은 염증성 cytokine 생성 억제 효과는 CWF가 $TNF-{\alpha}$의 생성을 51.2%, CEF가 $IL-1{\beta}$와 IL-6의 생성을 각각 67%와 58% 억제하여, 산수유 분획물의 뛰어난 항염증 효과가 확인되었다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

The antioxidant and anti-inflammatory effects of Corni fructus extracts (CEF, EtOAc extraction; CBF, buthanol extraction; CWF, water extraction) were investigated. The total phenolics of CEF (173.3 mg TAE/g) were significantly higher than those of CWF (26.7 mg TAE/g) and CBF (94.8 mg TAE/g). DPPH an...

주제어

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문제 정의

  • 약리작용으로는 이뇨, 혈압강하, 항암 및 항균작용 등이 알려져 있으며, 특히 지금까지 산수유 종자의 항당뇨 효과(7), 물 추출물의 항히스타민 효과(8), 항균효과(9) 및 항산화 효과(10) 등이 알려져 있으며 산수유의 주요 화학 성분에 대한 연구가 보고되어져 있다(11). 본 실험에서는 산수유 메탄올 추출물을 이용하여 비극성에서 극성의 용매로 분획물을 제조하여 각 분획물이 LPS로 염증이 유도된 mouse 대식세포 RAW 264.7 cell에서의 염증 매개 물질 생산 억제에 대한 효과를 검증함으로써 산수유를 이용한 항산화 및 항염증 효과를 지닌 기능성 식품으로써의 이용가치를 높이고자 한다.

가설 설정

  • 1)Concentration of test sample required to produce 50% inhibition of the DPPH radical.
  • 2)Concentration of test sample required to produce 50% inhibition of the ABTS radical.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
대식세포는 어떤 역할을 하는 세포인가? 대식세포(macrophage)는 동물 체내 모든 조직에 분포하며 인체 내에서 선천적 면역반응을 담당하는 면역세포로, 인체 면역체계에서 중요한 역할을 하는 백혈구이다. 외부의 자극으로 인해 활성화된 대식세포는 염증매개물질 분비를 통해 염증반응을 유발함으로써 천식, 기관지염, 관절염,다발성경화증, 동맥경화증, 뇌졸중, 알츠하이머병이나 피킨슨병과 같은 퇴행성뇌질환 및 바이러스 감염으로 인한염증질환 등을 유발하고, 질환을 악화시킨다(3).
활성산소종이 인체에서 제거되지 못하면 무엇을 유발하는가? Superoxide radical, hydrogen peroxide 및 hydroxyl radical 같은 활성산소종(reactive oxygen species, ROS)은 매우 강력한 산화력을 가지고 있기 때문에 인체 내에서 제거되지 못하면 산화적 스트레스를 유발하게 되어 지질과산화를 유도하고 단백질, 세포막 및 DNA 등을 손상시켜 암, 노화, 염증반응을 비롯한 다양한 성인병을 유발하는 것으로 알려져 있다(1). 이러한 질병의 원인이 되는 활성산소종, 즉 생체 내 자유라디칼을 제어하는 역할을 하는 항산화제에 대한 많은 연구가 진행되고 있다.
산수유나무의 과육은 어떤 약리작용을 가지고 있는가? 산수유(Corni fructus)는 층층나무과에 속하는 산수유나무(Cornus officinalis)의 과육으로, 가을에 성숙한 붉은색열매의 씨를 제거한 건조한 과육을 말하며 맛이 시고 성질은 따뜻하다(6). 약리작용으로는 이뇨, 혈압강하, 항암 및 항균작용 등이 알려져 있으며, 특히 지금까지 산수유 종자의 항당뇨 효과(7), 물 추출물의 항히스타민 효과(8), 항균효과(9) 및 항산화 효과(10) 등이 알려져 있으며 산수유의 주요 화학 성분에 대한 연구가 보고되어져 있다(11). 본 실험에서는 산수유 메탄올 추출물을 이용하여 비극성에서극성의 용매로 분획물을 제조하여 각 분획물이 LPS로 염증이 유도된 mouse 대식세포 RAW 264.
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참고문헌 (23)

  1. Tepe B, Sokmen A (2007) Screening of the antioxidative properties and total phenolic contents of three endemic Tanacetum subspecies from Turkish flora. Bioresource Technol, 98, 3076-3079 

  2. Kim YJ, Son DY (2011) Hot water leaves extracts of Zizyphus jujube exert antioxidative effects in vitro and cytotoxicity in human cancer cell lines. Hort Environ Biotechnol, 52, 635-640 

  3. Albina JE, Reichner JS (1995) Nitric oxide in inflammation and immunity. New Horiz, 3, 46-64 

  4. Lee SJ, Lim KT (2008) Phytoglycoprotein inhibits interleukin- $1{\beta}$ and interleukin-6 via p38 mitogen activated protein kinase in lipopolysaccharide stimulated RAW 264.7 cells. Naunyn-Schmiedeberg's Arch Pharmacol, 377, 45-54 

  5. Higuchi M, Higashi N, Taki H, Osawa T (1990) Cytolytic mechanisms of activated macrophages. Tumor necrosis factor and L-argininge-dependent mechanisms act synergistically as the major cytolytic mechanisms of activated macrophages. J Immunol, 144, 1425-1431 

  6. Chung SR, Jeune KH, Park SY, Jang SJ (1993) Toxicity and lectins constituents from the seed of Cornus officinalis. Korean J Pharmacogn, 24, 177-182 

  7. Park YK, Whang WK, Kim HI (1995) The antidiabetic effects of extracts from Cornus officinalis seed. Chung- Ang J Pharm Sci, 9, 5-11 

  8. Seo YB, Kil GJ, Lee YK, Lee YC (2002) Study on the effects of corni fructus about the anti-allergic action. Korean J Herbology, 17, 1-11 

  9. Kim YD, Kim HK, Kim KJ (2003) Antimicrobial activity of solvent fraction from Cornus officinalis. J Korean Soc Food Sci Nutr, 32, 829-832 

  10. Kim OK (2005) Antidiabetic and antioxidative effects of corni fructus in streptozotocin-induced diabetic rats. J Korean Oil Chemists Soc, 22, 157-167 

  11. Tian G, Zhang T, Yang F, Ito Y (2000) Separation of gallic acid from Cornus officinalis Sieb. et Zucc by high-speed counter-current chromatography. J Chromatogr A, 886, 309-312 

  12. Folin O, Denis W (1912) On phosphotungastic phosphomolybdic compounds as color reagents. J Biol Chem, 12, 239-243 

  13. Blois MS (1958) Antioxidant determinations by the use of a stable free radical. Nature, 181, 1199-1200 

  14. Re R, Pellegrini N, Proteggente A, Yang M, Rice-Evans C (1999) Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radi Biol Med, 26, 1231-1237 

  15. Park HJ, Kim SM, Kim MJ, Yu CY, Park SM, Eom SH, Cho DH (2007) Changes of antioxidant activity in Juglans mandshrica Maxim. leaves by far infrared irradiation. Korean J Medicinal Crop Sci, 15, 266-270 

  16. Ahn SI, Heuing BJ, Son JY (2007) Antioxidative activities and nitrite-scavenging abilities of some phenolic compounds. J Korean Food Cookery Sci, 23, 19-24 

  17. Kim YJ, Son DY (2012) Antioxidant and inhibitory effects of korean Panax ginseng extract on pro-inflammatory mediators in LPS-stimulated RAW 264.7 macrophages. J Korean Soc Food Sci Nutr, 41, 1371-1377 

  18. Branen AL (1975) Toxicology and biochemistry of butylated hydroxyanisole and butylated hydroxytoluene. J Am Oil Chem Soc, 52, 59-63 

  19. Funk CD, Funk LB, Kennedy ME, Pong AS, Fitzgerald GA (1991) Human platelet/erythroleukemia cell prostaglandin G/H synthase: cDNA cloning, expression, and gene chromosomal assignment. FASEB J, 5, 2304-2312 

  20. Bosca L, Zeini M, Traves PG, Hortelano S (2005) Nitric oxide and cell viability in inflammatory cells: a role for NO in macrophage function and fate. Toxicol, 208, 249-258 

  21. Bishop-Bailey D, Calatayud S, Warner TD, Hla T, Mitchell JA (2002) Prostaglandins and the regulation of tumor growth. J Environ Pathol Toxicol Oncol, 21, 93-101 

  22. Nathan C (1992) Nitric oxide as a secretory product of mammalian cells. FASEB J, 6, 3051-3064 

  23. Son JH, Kim HJ, Park TS, Jung MS (2011) Study on the anti-oxidant and anti-inflammatory activities of sarcocarp and calyx of persimmon (Cheongdo Bansi). J Appl Biol Chem, 54, 71-78 

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