$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

해독사물탕(解毒四物湯)이 LPS 유도 ICR mouse의 산화스트레스 및 고지혈증에 미치는 효과
The Effects of Haedoksamul-tang on Oxidative Stress and Hyperlipidemia in LPS-induced ICR Mouse 원문보기

Journal of Korean Medicine = 대한한의학회지, v.37 no.1, 2016년, pp.77 - 89  

최규호 (대구한의대학교 한의과대학 내과학교실) ,  정유선 (대구한의대학교 한의과대학 내과학교실) ,  신현철 (대구한의대학교 한의과대학 내과학교실)

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Objectives: The present study was conducted to examine whether Haedoksamul-tang (HS), a traditional oriental herbal medicine, have beneficail effects on anti-inflammation and dyslipidemia in lipopolysaccharide (LPS)-induced ICR mouse. Methods: Twenty four 8-week old male ICR mouse were divided into ...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • HS의 염증반응 억제 효과를 좀 더 살펴보기 위해 대표적인 염증유발 cytokine인 TNF-a와 그로 인해 발현이 유도되는 것으로 알려진 chemokine인 MCP-1의 단백질 발현 정도를 확인해 보았다. 그 결과, 정상군과 비교하여 TNF-a, MCP-1의 발현이 유의하게 증가한 LPS 단독 처리군에 비해 HS 투여군은 모든 투여군에서 TNF-a, MCP-1의 발현이 유의한 수준으로 억제되었다.
  • LPS로 처리한 ICR mouse에서 解毒四物湯의 산화적 스트레스 억제 효과를 확인하기 위해 ROS 발생 및 지질과산화 정도를 관찰해 보았다. 그 결과, 혈청 및 간조직 ROS와 간조직 TBARS 수치가 정상군에 비해 뚜렷이 증가한 LPS 단독 처리군에 비해 解毒四物湯 투여군에서는 간조직의 ROS와 TBARS 모두 유의한 수준으로 감소하였다.
  • LPS에 의해 유발되는 산화적 스트레스, 염증반응, 지질대사이상과 이와 관련한 죽상동맥경화증에 대한 解毒四物湯의 효과 및 대사조절 기전을 알아본 바 다음과 같은 결론을 얻었다.
  • 解毒四物湯의 지질대사 조절과 관련한 기전을 좀 더 살펴보기 위해 지질합성 유전자의 발현을 촉진하는 전사인자인 SREBP-1의 활성에 미치는 영향을 관찰해 보았다. 콜레스테롤과 지방산 합성에 관여하는 유전자들의 발현을 조절하는 SREBPs는 helix-loop-helix-leucine zipper famaily에 속하는 전사인자로, SREBP-1a, 1c, 2의 세 가지 isoform으로 존재하며, 주로 간과 지방조직에서 발현된다34,35).
  • 본 실험에서는 LPS 처리로 NF-κB 활성이 유의하게 증가되었으나 解毒四物湯 투여에 의해 농도의존적으로 확연한 억제효과를 보여 산화적 스트레스 및 염증반응 억제효과를 확인하였다.
  • 이에 본 연구에서는 LPS로 처리된 ICR mouse의 혈청과 간조직에서 解毒四物湯의 산화적 스트레스 및 염증조절 관련 인자들의 발현 억제효과를 확인하고, 나아가 지질대사 장애를 개선함으로써 고지질혈증을 예방하는데 유의한 효과를 관찰한 바 이에 보고하는 바이다.
  • 이에 저자는 LPS로 유도되는 간세포의 염증반응 및 산화적 스트레스를 억제하여 지질대사를 조절하고, 나아가 죽상동맥경화증을 예방하는데 있어 解毒四物湯의 활용가능성을 검토해 보았다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
죽상동맥경화증의 특징은 무엇인가? 심혈관질환의 주요 원인이 되는 죽상동맥경화증은 염증성 cytokine을 생산하는 면역세포들에 의한 만성염증 상태로서, 최근의 실험적, 임상적 연구들에 의하면 내독소혈증이 죽상동맥경화증의 발병에 영향을 미치는 것으로 보고되고 있다1-5). 내독소인 lipopolysaccharide (LPS)는 그람음성균의 세포벽에 존재하는 구성물질의 일종으로 대식세포나 단핵구의 활성으로 cytokine의 분비를 촉진하고 시상하부, 부신피질 등의 활성을 유도해 감염이나 염증을 유발한다6,7).
lipopolysaccharide의 iNOS 유전자 활성화로 생성된 라디칼의 문제점은 무엇인가? 또한 inducible nitric oxide synthase (iNOS)의 유전자를 활성화시켜 nitric oxide (NO)의 생성을 증가시키고, 산화력이 강한 superoxide (O2-), hydrogen peroxide (H2O2), hydroxyl radical (OH-)과 같은 자유라디칼들도 함께 생성하게 된다. 이러한 라디칼들은 간세포의 지질막을 공격하여 급성 지방변성 및 지방축적을 야기하고, 간독성을 통한 세포의 파괴를 가져오므로 산화적 스트레스 및 지질대사 이상을 야기한다8).
lipopolysaccharide의 특징은 무엇인가? 심혈관질환의 주요 원인이 되는 죽상동맥경화증은 염증성 cytokine을 생산하는 면역세포들에 의한 만성염증 상태로서, 최근의 실험적, 임상적 연구들에 의하면 내독소혈증이 죽상동맥경화증의 발병에 영향을 미치는 것으로 보고되고 있다1-5). 내독소인 lipopolysaccharide (LPS)는 그람음성균의 세포벽에 존재하는 구성물질의 일종으로 대식세포나 단핵구의 활성으로 cytokine의 분비를 촉진하고 시상하부, 부신피질 등의 활성을 유도해 감염이나 염증을 유발한다6,7). 또한 inducible nitric oxide synthase (iNOS)의 유전자를 활성화시켜 nitric oxide (NO)의 생성을 증가시키고, 산화력이 강한 superoxide (O2-), hydrogen peroxide (H2O2), hydroxyl radical (OH-)과 같은 자유라디칼들도 함께 생성하게 된다. 이러한 라디칼들은 간세포의 지질막을 공격하여 급성 지방변성 및 지방축적을 야기하고, 간독성을 통한 세포의 파괴를 가져오므로 산화적 스트레스 및 지질대사 이상을 야기한다8).
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (41)

  1. Johan F. Immunity, atherosclerosis and cardiovascular disease. BMC med. 2013;11:117-29. 

  2. Feng X, Zhang Y, Xu R, Xie X, Tao L, Gao H, et al. Lipopolysaccharide up-regulates the expression of Fcalpha/mu receptor and promotes the binding of oxidized low-density lipoprotein and its IgM antibody comples to activated human macrophages. Atherosclerosis. 2010;208:396-405. 

  3. Wiesner P, Choi SH, Almazan F, Benner C, Huang W, Diehl CJ, et al. Low doses of lipopolysaccharide and minimally oxidized low-density lipoprotein cooperatively activate macrophages via nuclear factor kappa B and activator protein-1: possible mechanism for acceleration of atherosclerosis by subclinical endotoxemia. Circ Res. 2010;107:56-65. 

  4. Maitra U, Li L. Molecular mechanisms responsible for the ruduced expression of cholesterol transporters from macrophages by low-dose endotoxin. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2013;33:24-33. 

  5. Vikatmaa P, Lajunen T, Ikonen TS, Pussinen PJ, Leinonen M, Saikku P, et al. Chlamydial lipopolysaccharide (cLPS) is present in atherosclerotic and aneurysmal arterial wall--cLPS levels depend on disease manifestation. Cardiovasc Pathol. 2010;19(1):48-54. 

  6. Jean L, Bret D, Chistophe C. Systemic capsaicin pretreatment fails to bolck the decrease in food-motivated behavior induced by lipopolysaccharide and interleukin- $1{\beta}$ . Brain Research Bul. 1997;42:443-9. 

  7. Sharifov OF, Nawar G, Ternovov W, Mishra VK, Litovsky SH, Palqunachare MN, et al. Cationic peptide mR18L with lipid lowering properties inhibits LPS-induced systemic and liver inflammation in rats. Biochem Biophys Res Commun. 2013;436(4):705-10. 

  8. Kim ID, Kang KS, Kwon RH, Yang JO, Lee JS, Ha BJ. The effect of Rubus coreanum Miquel against lipopolysaccharide-induced oxidative stress and lipid metaobolism. J. Fd Hyg. Safety. 2007;22(3):213-7. 

  9. Ju JH. Dan-gye-sim-beop-bu-yeo. Seoul: Daesung Publishing Co. Ltd. 1982:714. 

  10. Lee SI. Cheon-jin-cheo-bang-hea-sheol. Seoul:Sheong-bo-sa. 1995:289-91. 

  11. Kim ES. A experimental study of Hwangryeonheadock -Tang and Onchung-Eum on hyperlipidemia & hypertension. J. of Korean Medicine. 1999;20(1):185-96. 

  12. Kim YH, Jo HB. Anti-inflammatory effects of Haedoksamul-tang in RAW 264.7 cells. J. of Oriental Obstetrics & Gynecology. 2008;21(2):166-83. 

  13. Beom HB. Effects of Onchungeum and Gamionchungeum on the antiallergic response and blood coagulation. J. of Kyung Hee University. 1990;6(4):490-9. 

  14. Jeon YG. Effects of Haedoksamul-tang on Trimelliticanhydride-induced contact hypersensitivity in a mouse model. 2010:1-41. 

  15. Seo M, Jeon BH, Woo WH, Jeong WY. Effect of Onchengyeum on the damaged liver cell by carbon tetrachloride in rats. Korean J. Oriental Physiology & Pathology. 1989;11(2):27-36. 

  16. Im HJ, Hwang CY, Gang HC, Kim NG, Gwon IH. Inhibitory effects of Onchumgeum on cytokine production from phytohaemagglutin-stimulated peripheral blood mononuclear cells of behcets patients. Korean J. Oriental Physiology & Pathology. 2002;16(4):768-73. 

  17. Zhu GF, Guo HJ, Huang Y, Wu CT, Zhang XF. Eriodictyol, a plant flavonoid, attenuates LPS-induced acute lung injury through its antioxidative and anti-inflammatory activity. Exp Ther Med. 2015:10(6):2259-66. 

  18. Heo J. Dong-ui-bo-gam. Seoul: Bubin Publishing Co. Ltd. 2007:416,455. 

  19. Rush GF, Gorski JR, Ripple MG, Sowinski J, Bugelski P. Organic hydroperoxide-induced lipid peroxidation and cell death in isolated hepatocytes. Toxicol Appl Pharmacol. 1985;78:473-83. 

  20. Izeboud CA, Hoebe KH, Grootendorst AF, Nijmeijer SM, van Miert AS, Witkamp RF, et al. Endotoxin-induced liver damage in rats is minimized by beta 2-adrenoceptor stimulation. Inflamm Res. 2004;53:93-9. 

  21. Munford RS. Severe sepsis and septic sock: the role of gram-negative bacteremia. Annu Rev Pathol. 2006;1:467-96. 

  22. Kleemann R, Verschuren L, van Erk M, Nikolsky Y, Verheij ER, Smilde AK, et al. Atherosclerosis and liver inflammation induced by increased dietary cholesterol intake: a combined transcriptomics and metabolomics analysis. Genome Biol. 2007;8:R200. 

  23. Xu X, Hu J, McGrath BC, Cavener DR. GCN2 in the brain programs PPAR ${\gamma}$ 2 and triglyceride storage in the liver during perinatal development in response to maternal dietary fat. PLos One. 2013;8(10):e75917. 

  24. Liu RH, Hotchkiss JH. Potential genotoxicity of chronically elevated nitirc oxide: a review. Mutat. Res. 1996;339:73-89. 

  25. Collins T, Cybulsky MI. NF-kappaB: pivotal mediator or innocent bystander in atherogenesis. J Clin Invest. 2001;107:255-64. 

  26. Thuberg BL, Collins T. The nuclear factor-B/inhibitor of B autoregulatory system and atherosclerosis. Curr Opin Lipidol. 1998;9:387-96. 

  27. Wang QS, Xiang Y, Cui YL, Lin KM, Zhang XF. Dietary blue pigments derived from Genipin, attenuate inflammation by inhibiting LPS-Induced iNOS and COX-2 expression via the NF- ${\kappa}B$ inactivation. PLos One. 2012;7(3):1-11. 

  28. Kwon HJ, Sung BK, Kim JW, Lee JH, Kim ND, Yoo MA, et al. The effect of lipopolysaccharide on enhanced inflammatory process with age:modulation of NF- ${\kappa}B$ . J. Amer. Aging Assoc. 2001;24:163-72. 

  29. Napoli C, de Nigris F, Williams-Ignarro S, Pignalosa O, Sica V, Ignarro LJ. Nitric oxide and atherosclerosis: an update. Nitric Oxide. 2006;15:265-79. 

  30. Baldwin AS. Jr The NF-kappa B and I kappa B proteins: new discoveries and insights. Annu Rev Immunol. 1996;14:649-83. 

  31. DeGraba TJ. Expression of inflammatory mediators and adhesion molecules in human atherosclerotic plaque. Neurology. 1997;49 (Supple 4):S15-9. 

  32. Fassbender K, Rossol S, Kammer T, Daffertshofer M, Wirth S, Dollman M, et al. Proinflammatory cytokines in serum of patients with acute cerebral ischemia: kinetics of secretion and relation to the extent of brain damage and outcome of disease. J Neurol Sci. 1994;122(2):135-9. 

  33. Adams DH, Lioyd AF. Chemokines: leukocyte recruitment and activation cytokines. Lancet. 1997;349:490-5. 

  34. Brown MS, Goldstein JL. The SREBP pathway:regulation of cholesterol metabolism by proteolysis of a membrane-bound transcription factor. Cell. 1997;89:331-40. 

  35. Weber LW, Boll M, Stampfl A. Maintaining cholesterol homeostasis: sterol regulatory element-binding proteins. World J Gastroenterol. 2004;10(21):3081-7. 

  36. Horton JD, Goldstein JL, Brown MS. SREBPs:activators of the complete program of cholesterol and fatty acid synthesis in the liver. J Clin Invest. 2002;109:1125-31. 

  37. Foufelle F, Ferre P. New perspectives in the regulation of hepatic glycolytic and lipogenic genes by insulin and glucose: a role for the transcription factor sterol regulatory element binding protein-1c. Biochem J. 2002;366:377-91. 

  38. Ferre P, Foretz M, Azzout-Marniche D, Becard D, Foufelle F. Sterol-regulatory-element-binding protein 1c mediates insulin action on hepatic gene expression. Biochemical Society Transactions. 2001;29(4):547-52. 

  39. Horton JD. Sterol regulatory element-binding proteins: transcriptional activators of lipid synthesis. Biochemical Society Transactions. 2001;30(6):1091-5. 

  40. Tong L. Acetyl-coenzyme A carboxylase: crucial metabolic enzyme and attractive target for drug discovery. Cell Mol Life Sci. 2005;62(16):1784-803. 

  41. Munday MR. Regulation of mammalian acetyl-CoA carboxylase. Biochem Soc Trans. 2002;30(6):1059-64. 

저자의 다른 논문 :

관련 콘텐츠

오픈액세스(OA) 유형

GOLD

오픈액세스 학술지에 출판된 논문

이 논문과 함께 이용한 콘텐츠

저작권 관리 안내
섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로