Streptococcus dysgalactiae로부터 분리된 히알루론산과 황화된 유도체의 구조와 항염증 활성 Structural Characteristics and Anti-inflammatory Activities of Chemically Sulfated-hyaluronic Acid from Streptococcus dysgalactiae원문보기
히알루론산(HA, Hyaluronic acid)은 β-1, 3-N-acetyl glucosamine과 β-1, 4-glucuronic acid가 반복된 선형 폴리머고분자로서 생물학적 활성 및 생체친화성 특성 때문에 의약 및 약학분야에서 중요한 분자로 여겨지고 있다. 본 연구는 HA을 S. dysgalactiae으로 얻고, 화학적 방법을 통해 황화된 히알루론산(S-HA, Sulfated hyaluronic acid) 유도체를 합성하여 그 구조와 항염증 활성을 비교하였다. HA의 생산은 S. dysgalactiae를 5 l 생물반응기를 이용하여 대량 배양하여 수용성 히알루론산(HA-WS, water soluble hyaluronic acid)과 비수용성 히알루론산(HA-WI, water insoluble hyaluronic acid)을 분리 정제하였다. 특히 HA-WI를 황화시켜 황화된 히알루론산(S-HA) 유도체를 합성하였으며, 그 수율은 90%로 나타났다. 합성된 S-HA의 구조를 FT-IR 및 1H/13C-NMR를 통해 S. dysgalactiae로부터 생산된 표준 HA, HA-WS 및 HA-WI와 비교 분석한 결과, 황으로 치환된 양상을 확인하였다. 또한, S-HA 의 항염증 활성을 RAW 264.7 대식세포를 통해 확인한 결과, S-HA는 천연 형태의 HA (HA, HA-WS)보다 nitric oxide (NO)와 COX-2 및 PGE2 유전자 발현이 유의하게 낮게 발현되었다. 염증 매개 cytokine인 TNF-α (<80 pg/ml) 및 IL-6 (<100 pg/ml)의 생성도 S-HA가 천연 HA보다 낮은 수준으로 정량되었다. 이 같은 결과에서 황화된 S-HA은 천연 히알루론산보다 용해성이 우수하고 염증관련 사이토카인의 생성 억제를 통해 항염증 효과를 나타내므로 염증치료제, 성형 및 생체 적용 약물전달 소재로 그 활용이 기대된다.
히알루론산(HA, Hyaluronic acid)은 β-1, 3-N-acetyl glucosamine과 β-1, 4-glucuronic acid가 반복된 선형 폴리머 고분자로서 생물학적 활성 및 생체친화성 특성 때문에 의약 및 약학분야에서 중요한 분자로 여겨지고 있다. 본 연구는 HA을 S. dysgalactiae으로 얻고, 화학적 방법을 통해 황화된 히알루론산(S-HA, Sulfated hyaluronic acid) 유도체를 합성하여 그 구조와 항염증 활성을 비교하였다. HA의 생산은 S. dysgalactiae를 5 l 생물반응기를 이용하여 대량 배양하여 수용성 히알루론산(HA-WS, water soluble hyaluronic acid)과 비수용성 히알루론산(HA-WI, water insoluble hyaluronic acid)을 분리 정제하였다. 특히 HA-WI를 황화시켜 황화된 히알루론산(S-HA) 유도체를 합성하였으며, 그 수율은 90%로 나타났다. 합성된 S-HA의 구조를 FT-IR 및 1H/13C-NMR를 통해 S. dysgalactiae로부터 생산된 표준 HA, HA-WS 및 HA-WI와 비교 분석한 결과, 황으로 치환된 양상을 확인하였다. 또한, S-HA 의 항염증 활성을 RAW 264.7 대식세포를 통해 확인한 결과, S-HA는 천연 형태의 HA (HA, HA-WS)보다 nitric oxide (NO)와 COX-2 및 PGE2 유전자 발현이 유의하게 낮게 발현되었다. 염증 매개 cytokine인 TNF-α (<80 pg/ml) 및 IL-6 (<100 pg/ml)의 생성도 S-HA가 천연 HA보다 낮은 수준으로 정량되었다. 이 같은 결과에서 황화된 S-HA은 천연 히알루론산보다 용해성이 우수하고 염증관련 사이토카인의 생성 억제를 통해 항염증 효과를 나타내므로 염증치료제, 성형 및 생체 적용 약물전달 소재로 그 활용이 기대된다.
Hyaluronic acid (HA) is an important macromolecule in medical and pharmaceutical fields. HA is a natural and linear polymer composed of repeating disaccharide units of β-1, 3-N-acetyl glucosamine and β-1, 4-glucuronic acid. This work aimed to confirm the structural characteristics and an...
Hyaluronic acid (HA) is an important macromolecule in medical and pharmaceutical fields. HA is a natural and linear polymer composed of repeating disaccharide units of β-1, 3-N-acetyl glucosamine and β-1, 4-glucuronic acid. This work aimed to confirm the structural characteristics and anti-inflammatory activities of HA and its chemically sulfated-HA. HA was produced from a fed-batch fermentation process using Streptococcus dysgalactiae in a 5 l bioreactor. HA was isolated water-soluble form (HA-WS) and water-insoluble form (HA-WI) from culture medium, and was obtained chemically sulfated-derivative (S-HA) that resulted in a 90% yield from HA-WI. The structural features of the sulfated- HA (S-HA) were investigated by FT-IR and 1H-NMR spectroscopy. The FT-IR and NMR patterns revealed the similarity in both the FTIR spectrum as well as NMR spectrum of both reference standard and purified HA from S. dysgalactiae. The anti-inflammatory activities of HA and S-HA were examined on LPS-induced RAW 264.7 cells. S-HA was significantly inhibited production of pro-inflammatory mediators such as nitric oxide (NO) and PGE2 and the gene levels of iNOS and COX-2, which are responsible for the production of NO and PGE2, respectively. Furthermore, S-HA also suppressed the overproduction of pro-inflammatory cytokine TNF-α (<80 pg/ml) and IL-6 (<100 pg/ml) compared to that of HA-WI. The present study clearly demonstrates that HA-S exhibits anti-inflammatory activities in RAW 264.7 macrophage cells.
Hyaluronic acid (HA) is an important macromolecule in medical and pharmaceutical fields. HA is a natural and linear polymer composed of repeating disaccharide units of β-1, 3-N-acetyl glucosamine and β-1, 4-glucuronic acid. This work aimed to confirm the structural characteristics and anti-inflammatory activities of HA and its chemically sulfated-HA. HA was produced from a fed-batch fermentation process using Streptococcus dysgalactiae in a 5 l bioreactor. HA was isolated water-soluble form (HA-WS) and water-insoluble form (HA-WI) from culture medium, and was obtained chemically sulfated-derivative (S-HA) that resulted in a 90% yield from HA-WI. The structural features of the sulfated- HA (S-HA) were investigated by FT-IR and 1H-NMR spectroscopy. The FT-IR and NMR patterns revealed the similarity in both the FTIR spectrum as well as NMR spectrum of both reference standard and purified HA from S. dysgalactiae. The anti-inflammatory activities of HA and S-HA were examined on LPS-induced RAW 264.7 cells. S-HA was significantly inhibited production of pro-inflammatory mediators such as nitric oxide (NO) and PGE2 and the gene levels of iNOS and COX-2, which are responsible for the production of NO and PGE2, respectively. Furthermore, S-HA also suppressed the overproduction of pro-inflammatory cytokine TNF-α (<80 pg/ml) and IL-6 (<100 pg/ml) compared to that of HA-WI. The present study clearly demonstrates that HA-S exhibits anti-inflammatory activities in RAW 264.7 macrophage cells.
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문제 정의
본 연구는 Streptococcus dysgalactiae의 배양을 통해 수용성 및 비수용성 히알루론산을 분리하고, 분리된 비수용성 히알루론산으로부터 황화(sulfation) 방법으로 황화된 히알루론산 (S-HA)을 합성하고자 한다. 이 같은 황화 목적은 우선 항원성이 최소화하여 조직 내 주입 시 염증반응과 항원항체반응을 줄이고, 천연히알루론산보다 가용성을 높여 이물질로 작용하지 않도록 하여, 생체 내 효소의 영향을 받지 않는 지속성이 개선된 황화된 히알루론산 유도체를 개발하기 위해서이다.
합성하고자 한다. 이 같은 황화 목적은 우선 항원성이 최소화하여 조직 내 주입 시 염증반응과 항원항체반응을 줄이고, 천연히알루론산보다 가용성을 높여 이물질로 작용하지 않도록 하여, 생체 내 효소의 영향을 받지 않는 지속성이 개선된 황화된 히알루론산 유도체를 개발하기 위해서이다. 또한, S-HA가 세포독성이 있는지 확인하였고, 염증 관련 사이토카인 분석을 위해 TNF-α 및 IL-6의 발현량을 알아보았다.
제안 방법
)로 혼합한 후, 초기 변성(denaturation)은 9 5℃에서 3분간 수행하였으며, 증폭을 위해 95℃에서 10초간, 55℃에서 10초간, 72℃에서 30초간 반응시켜 이를 40회 반복수행하였다. Cytokine mRNA 발현량은 glyceraldehyde-3- phosphate (GAPDH) 유전자를 내부대조군(internal control) 으로 보정하여 각각의 유전자 발현 양상을 정량적으로 비교분석하였다. SYBR green을 이용한 RT-PCR의 신뢰성을 확인하기 위해 melting curve를 분석하여 cytokine mRNA fold 값으로 나타내었다.
S. dysgalactiae 배양액으로부터 HA-WI을 분리하고, 용해도 및 항원성이 개선된 히알루론산을 얻기 위해 S-HA 유도체를 합성하였다. 그 결과 Table 2와 같이 HA-WI로부터 90%의 수율로 S-HA가 분리 정제되었다.
Cytokine mRNA 발현량은 glyceraldehyde-3- phosphate (GAPDH) 유전자를 내부대조군(internal control) 으로 보정하여 각각의 유전자 발현 양상을 정량적으로 비교분석하였다. SYBR green을 이용한 RT-PCR의 신뢰성을 확인하기 위해 melting curve를 분석하여 cytokine mRNA fold 값으로 나타내었다.
TNF-α 및 IL-6 cytokine 생산량을 확인하기 위하여 Mouse TNF-α Immunoassay kit, Mouse IL-6 Immunoassay Kit (R&D Systems Inc., Minneapolis, MN, USA)를 사용하여 분석하였다. Mouse macrophage cell line인 RAW 264.
Cell viability was measured using an MTT assay. The relative cell viability was calculated by comparing the absorbance of the HA- and LPS-treated groups to that of the control group. Data are expressed as the mean ± SD (n = 3) of three independent biological replicates.
cDNA 합성된 시료 2 μl와 각각의 유전자에 대한 primers를 SsoFastTM EvaGreen® Supermix with low ROX (Bio-Rad Laboratories, Inc.)로 혼합한 후, 초기 변성(denaturation)은 9 5℃에서 3분간 수행하였으며, 증폭을 위해 95℃에서 10초간, 55℃에서 10초간, 72℃에서 30초간 반응시켜 이를 40회 반복수행하였다. Cytokine mRNA 발현량은 glyceraldehyde-3- phosphate (GAPDH) 유전자를 내부대조군(internal control) 으로 보정하여 각각의 유전자 발현 양상을 정량적으로 비교분석하였다.
상온에서 냉각시킨 후 3차 증류수 200 ml를 첨가하고 투석막(dialysis membrane, 14,000 MW cut-off filter)을 이용하여 흐르는 물에서 5일 동안 투석시켜 저분자 물질을 제거하였다. 농축 후 동결건조하여 S-HA을 정제하였다(Fig. 2) [12].
대식세포로부터 염증매개 물질의 억제 효과는 세포독성으로 인해 RAW 264.7 세포가 사멸되는 것에 의해서도 나타날 수 있으므로 이러한 가능성을 배제하고자 RAW 264.7 cell에 미치는 추출물의 세포 독성을 알아보기 위하여 MTT assay를 수행하였다. 시료 농도 200, 50 및 12.
COX-2는 염증매개 물질인 PGE2의 형성촉진에 관여하고[9], NF-KB는 염증반응과 관련된 유전자의 pro- moter에 결합하며 cytokine 및 lipopolysaccharide (LPS)와 같은 염증관여인자 노출에 의해 iNOS 및 COX-2 발현을 촉진시키는 것으로 알려져 있다[6]. 따라서 염증 반응의 주요인자인 iNOS 및 COX-2의 유전자발현량을 확인하여 염증 반응을 확인하였다. 세포로부터 추출된 RNA는 Agilent 2100 bioana-lyzer를 사용하여 gel image를 분석하였고, 각각의 히알루론산 시료를 처리한 RAW 264.
이 같은 황화 목적은 우선 항원성이 최소화하여 조직 내 주입 시 염증반응과 항원항체반응을 줄이고, 천연히알루론산보다 가용성을 높여 이물질로 작용하지 않도록 하여, 생체 내 효소의 영향을 받지 않는 지속성이 개선된 황화된 히알루론산 유도체를 개발하기 위해서이다. 또한, S-HA가 세포독성이 있는지 확인하였고, 염증 관련 사이토카인 분석을 위해 TNF-α 및 IL-6의 발현량을 알아보았다. 최종적으로 염증 인자인 iNOS와 COX-2의 발현량을 qRT-PCR로 확인하여 항염증 유전자의 발현 정도를 비교 분석하였다.
7 세포를 DMEM 배지를 이용하여 2×105 cells/ml로 농도로 96 well plate에 접종하고 5% CO2 배양기에서 4시간 부착시켰다. 배지 상등액을 제거하고 농도 별(1,000, 100, 10 ㎍/ml)로 조제한 시료와 LPS (1 ㎍/ml)를 24시간 동안 CO2 배양기에서 반응 시켜 얻은 배양 상등액을 cytokine 측정에 사용하였다. 측정 방법은 제조사의 지시에 따라 수행하였다.
7과 같다. 본 실험에 사용된 RAW 264.7 세포에 HA, HA-WS, HA-WI 및 S-HA를 각각 200, 50 및 12.5 ㎍/ml의 농도별로 처리하였으며, LPS (1 ㎍/ml) 단독처리하여 음성 대조군으로 사용하였다. HA-WS 그룹을 제외한 모든 그룹에서 정상군과 유사한 NO 생성량을 나타내었으며, HA-WS 그룹에서는 LPS와 같은 수준의 NO2 생성량을 나타내었다.
세포의 total RNA 분리를 위해, RNeasyMinikit (Qiagen, Valencia, CA, USA)를 사용하였다. 분리된 total RNA의 정량은 RNA nano kit (2100 Bioanalyzer system, Agilent Technologies, USA)로 측정하고, total RNA가 500 ng/μl 가 되도록 희석하였다. iScriptTM Select cDNA synthesis kit (Bio-Rad Laboratories, Inc.
분리된 각 히알루론산 시료를 FT-IR Spectrophotometer (FTIR-4100, JASCO-CE, PerkinElmer, UK)를 이용하여 350- 4500 cm-1에서 측정하였다. 히알루론산형태 및 구조적 특성은 400 MHz spectrophotometer (Bruker, AM-200, Germany)를이용하여 1H/13C-NMR spectrum 분석하였고 용매로는 D2O 1 ml에 100 mg의 히알루론산을 넣어 용해시켜 측정하였다.
분리된 상등액에 3배의 EtOH (95%)을 첨가한 후 4℃에서 하루 이상 반응시키고 원심분리(2,500× g, 20 min at 4℃)하였다. 분획에 25 ml 멸균 증류수를 첨가 후 투석막(molecular weight cut off: 14,000)에 넣고 흐르는 물에서 5일 동안 투석시켜 저분자 물질을 제거한 후 최종적으로 투석된 분획물은 동결건조하여 HA-WI을 정제하였다[12].
따라서 염증 반응의 주요인자인 iNOS 및 COX-2의 유전자발현량을 확인하여 염증 반응을 확인하였다. 세포로부터 추출된 RNA는 Agilent 2100 bioana-lyzer를 사용하여 gel image를 분석하였고, 각각의 히알루론산 시료를 처리한 RAW 264.7 세포에서 분리한 total RNA는 RNA ratio (28s/18s)값이 1.7 이상, RNA integrity number (RIN)값이 8.0 이상으로 cDNA 합성에 사용하였다(Table 4). RAW 264.
양친매성 고분자(amphiphilic macromolecules)는 수용액환경에서 자기 조립 특성이 있으므로, NMR의 구조적 특성을확인하기 위해 HA를 D2O에 녹여 1H/13C NMR 스펙트럼으로 조사하였다. Fig.
)를 사용하여 cDNA를 합성하고 -70℃에서 보관하여 사용하였다. 유전자 발현량 측정을 위해 GAPDH (glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase), iNOS (inducible NO synthase), COX-2 (Cyclooxygenase-2) primer를 Bioneer corporation에 의뢰 제작하여 사용하였다 (Table 1).
또한, S-HA가 세포독성이 있는지 확인하였고, 염증 관련 사이토카인 분석을 위해 TNF-α 및 IL-6의 발현량을 알아보았다. 최종적으로 염증 인자인 iNOS와 COX-2의 발현량을 qRT-PCR로 확인하여 항염증 유전자의 발현 정도를 비교 분석하였다.
Crude HA 분획은 다시 멸균수에 희석한 후, 투석막(molecular weight cut off: 14, 000)에 넣고 흐르는 물에서 5일 동안 투석시켜 저분자 물질을 제거하였다. 최종적으로 투석된 분획물은 동결건조하여 조다당류를 정제하였다.
배지 상등액을 제거하고 농도 별(1,000, 100, 10 ㎍/ml)로 조제한 시료와 LPS (1 ㎍/ml)를 24시간 동안 CO2 배양기에서 반응 시켜 얻은 배양 상등액을 cytokine 측정에 사용하였다. 측정 방법은 제조사의 지시에 따라 수행하였다. Assay diluent 50 μl를 각 well에 분주한 후, 세포배양 상등액 50 μl씩 첨가한 후 2시간 동안 실온에서 반응시켰다.
히알루론산의 iNOS 및 COX-2 mRNA 발현량 측정은 마우스 대식세포주인 RAW 264.7 세포를 DMEM 배지를 이용하여 2×105 cells/ml로 농도로 10Ø cell culture dish에 접종하고 5% CO2 배양기에서 4시간 부착시켰다. 배지 상등액을 제거하고 10 ㎍/ml로 조제한 시료와 LPS (1 ㎍/ml)를 24시간 동안 CO2 배양기에서 반응시켜 얻은 세포를 mRNA측정에 사용하였다.
히알루론산의 항염증 활성을 평가하기 위해 RAW 264.7 세포에 자극 후 NO 생성량을 측정하였다[34]. 96 well plate에각 well당 2×105 cells/ml를 분주하고 24시간 배양 후, 상등액을 제거하고 배지 200 μl에 녹인 농도별 시료를 각 well에 첨가하여, 24시간 배양하였다.
에서 측정하였다. 히알루론산형태 및 구조적 특성은 400 MHz spectrophotometer (Bruker, AM-200, Germany)를이용하여 1H/13C-NMR spectrum 분석하였고 용매로는 D2O 1 ml에 100 mg의 히알루론산을 넣어 용해시켜 측정하였다.
대상 데이터
dysgalactiae ID 9103으로 한국미생물자원센터(KCTC)로부터 분양 받아 사용하였다. 균주의 보관 및 배양은 brain heart infusion (Difco, Becton, Dickinson Co., N.J., U.S.A.)을 사용하여 본 실험에 사용하였다. 실험의대조물질 표준 히알루론산나트륨은 일동제약(주) 중앙연구소 (화성, 한국)로부터 제공 받아 표준물질로 사용하였다.
실험의대조물질 표준 히알루론산나트륨은 일동제약(주) 중앙연구소 (화성, 한국)로부터 제공 받아 표준물질로 사용하였다. 대식세포주 RAW 264.7은 한국세포주은행(The Korea Cell Line Bank, Seoul, Korea)에서 구입했고 세포 배지인 Dulbecco Modified Eagle's Medium (DMEM)와 α- Minimal Essential Medium (MEM)은 Invitrogen Life Technologies (Carlsbad, CA, USA)에서, TNF-α와 IL-6 정량을 위한 ELISA kit는 R&D systems (Minneapolis, MN, USA)사에서 구입하였다.
본 실험에 사용한 균주는 S. dysgalactiae ID 9103으로 한국미생물자원센터(KCTC)로부터 분양 받아 사용하였다. 균주의 보관 및 배양은 brain heart infusion (Difco, Becton, Dickinson Co.
배지 상등액을 제거하고 10 ㎍/ml로 조제한 시료와 LPS (1 ㎍/ml)를 24시간 동안 CO2 배양기에서 반응시켜 얻은 세포를 mRNA측정에 사용하였다. 세포의 total RNA 분리를 위해, RNeasyMinikit (Qiagen, Valencia, CA, USA)를 사용하였다. 분리된 total RNA의 정량은 RNA nano kit (2100 Bioanalyzer system, Agilent Technologies, USA)로 측정하고, total RNA가 500 ng/μl 가 되도록 희석하였다.
)을 사용하여 본 실험에 사용하였다. 실험의대조물질 표준 히알루론산나트륨은 일동제약(주) 중앙연구소 (화성, 한국)로부터 제공 받아 표준물질로 사용하였다. 대식세포주 RAW 264.
, Winooski, VT, USA)를사용하여 540 nm에서 흡광도를 측정하였다. 표준물질은 so- dium nitrate (NaNO2)를 농도별로 희석하여 표준 검량선으로 NO 농도 측정에 사용하였다.
데이터처리
본 연구의 통계처리는 SPSS software program (Statistical Package for Social Science, version 18.0, SPSS Inc., Chicago, IL, USA)을 이용하여 일원배치 분산분석(one-way ANOVA)에 의해 수행되었으며, 사후분석은 95% 신뢰수준에서 정상군대비 다른 집단 간의 유의성을 Student's paired t-tests에 의하여 검정하였다.
이론/모형
7 murinae macrophages. Cell viability was measured using an MTT assay. The relative cell viability was calculated by comparing the absorbance of the HA- and LPS-treated groups to that of the control group.
TNF-α, IL-1β 및 IL-6는 대표적인 염증성 cytokine으로 NO를 생성하는 매개물질로서 국소 염증을 발생시켜 T 세포 활성화, B 세포 성숙과 NK 세포를 활성화시키는 cytokine이다[22]. 따라서 황화된 히알루론산이 염증성 cytokine의 생성에 미치는 영향을 알아보기 위해 RAW 264.7 세포에 LPS 처리한 음성대조군과 히알루론산을 농도별로 처리하여 ELISA 방법으로 TNF-α 및 IL-6를 측정하였다. 그 결과(Fig.
히알루론산이 RAW 264.7 세포에 세포독성이 있는지 알아보기 위하여 MTT (3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyl tetrazolium bromide) 방법으로 확인하였다[23]. 96 well plate에 각 well당 2×105 cells/ml 세포를 분주하여, 24시간 배양후 상등액을 제거하고, 농도별 시료를 배지 200 μl에 녹여 각 well에 첨가한 후 24시간 배양하였다.
성능/효과
HA와 S-HA 유도체의 구조적 차이는 당 잔기의 sulfate의 결합이며, FT-IR와 NMR 분석으로 통해 sulfate기가 결합하고 있음을 확인하였다. FT-IR 결과 히알루론산은 공통적으로 C-O-C stretching, C-O, C=O group, amid Ⅱ group 및 OH stretching 피크가 확인되었으며 S-HA에는 S-O- C group의 피크를 나타내어 S기로 치환된 것을 확인하였다. 히알루론산과 히알루론산 유도체는 전형적인 당고리 결합구조를 가지고 있으며, 이는 Alkrad 등에 의해 수행된 히알루론산 유도체의 FT-IR패턴 연구결과와 유사하였다[1].
Fig. 4는 HA, HA-WS와 S-HA의 1H/13C NMR 스펙트럼을 나타낸 것이며, 각각의 특성 피크를 확인한 결과, 합성된 S-HA는 미생물에서 분리한 천연 히알루론산 HA와가용성 히알루론산(HA-WS)보다 특성 피크가 이동됨으로써황화가 성공적으로 이루어진 것으로 확인하였다. 즉, 1H NMR 스펙트럼에서, 히알루론산 메틸기의 피크인 2.
5와 같이 세포의 생존율은 HA, HA-WS, HA-WI 및 S-HA에서 생리식염수를 처리한 대조군과 세포증식에 큰 차이가 없었다. HA, HA-WS, HA- WI 및 S-HAe 생리식염수를 투여한 정상군(Normal)의 생장률 100%를 기준으로 98.14±0.2%로 세포독성이 없고 정상적인 증식을 나타냈다. 이 같은 결과는 히알루론산이 세포증식은 큰 영향을 주지 않는다는 Park의 결과와 유사하였다 [24].
5 ㎍/ml의 농도별로 처리하였으며, LPS (1 ㎍/ml) 단독처리하여 음성 대조군으로 사용하였다. HA-WS 그룹을 제외한 모든 그룹에서 정상군과 유사한 NO 생성량을 나타내었으며, HA-WS 그룹에서는 LPS와 같은 수준의 NO2 생성량을 나타내었다.
3 및 Table 3과 같이 표준물질인 HA와 HA-WS, HA-WI가 유사한 pattern을 나타내었다. HA와 S-HA 유도체의 구조적 차이는 당 잔기의 sulfate의 결합이며, FT-IR와 NMR 분석으로 통해 sulfate기가 결합하고 있음을 확인하였다. FT-IR 결과 히알루론산은 공통적으로 C-O-C stretching, C-O, C=O group, amid Ⅱ group 및 OH stretching 피크가 확인되었으며 S-HA에는 S-O- C group의 피크를 나타내어 S기로 치환된 것을 확인하였다.
0 이상으로 cDNA 합성에 사용하였다(Table 4). RAW 264.7 세포에 히알루론산 시료를 10 ㎍/ml 농도로 처리하고 iNOS 및 COX-2 발현량을 측정한 결과(Fig. 8), LPS 음성대조군은 iNOS 및 COX-2의 발현량은 각각 19.3, 7.11배로 현저히 증가하였으나, 모든 히알루론산 그룹에서 염증관여 유전자 발현량은 4.5 및 2.6 이하로 현저히 떨어지는 것으로 나타났다(Fig. 9). 따라서 히알루론산 시료는 항원성 물질로서 염증반응에 관여하지 않는 것으로 확인되었다.
7 세포에 LPS 처리한 음성대조군과 히알루론산을 농도별로 처리하여 ELISA 방법으로 TNF-α 및 IL-6를 측정하였다. 그 결과(Fig. 7A, B)와 같이 cytokine들은(TNF-α 및 IL-6) 모두농도 의존적으로 감소하는 결과를 나타내었다. 종양괴사인자인 TNF-α의 경우 LPS (1 ㎍/ml)에서는 2, 584 pg/ml로 높은생성량을 보였으나, 모든 히알루론산 처리군에서는 150 pg/ml 이하의 낮은 생성량을 나타내었다.
9). 따라서 히알루론산 시료는 항원성 물질로서 염증반응에 관여하지 않는 것으로 확인되었다. 이 같은 결과는 황화시킨 히알루론산(S-HA)은 기존 히알루론산보다 항염증반응 적고 용해도가 우수하여 성형 및 생체 적용소재로 그 이용 가능성이 높을 것으로 여겨진다.
26% 정도 낮게 생성되었다. 또한 IL-6의 생성 정도는 황화된 히알루론산, S-HA을 200, 50, 12.5 ㎍/ml 농도로 처리하였을 때 각각 90.69, 69.18 및 62.20 pg/ml IL-6를 생성하였으며, 이 같은 결과는 양성대조물질인 HA보다 12.5 ㎍/ml의 투여농도에서 52.02% 적은수준으로 생성되었다. 또한, HA-WI와 비교할 경우 12.
02% 적은수준으로 생성되었다. 또한, HA-WI와 비교할 경우 12.5 μ g/ml 투여 농도에서 9.51% 낮은 IL-2 생성률을 보였다. 이 같은 결과로 볼 때 황화된 S-HAe RAW 264.
7 cell에 미치는 추출물의 세포 독성을 알아보기 위하여 MTT assay를 수행하였다. 시료 농도 200, 50 및 12.5 ㎍/ml의 농도로 첨가하여 24시간 배양 후 MTT assay 결과 Fig. 5와 같이 세포의 생존율은 HA, HA-WS, HA-WI 및 S-HA에서 생리식염수를 처리한 대조군과 세포증식에 큰 차이가 없었다. HA, HA-WS, HA- WI 및 S-HAe 생리식염수를 투여한 정상군(Normal)의 생장률 100%를 기준으로 98.
51% 낮은 IL-2 생성률을 보였다. 이 같은 결과로 볼 때 황화된 S-HAe RAW 264.7 대식세포에서염증매개성 cytokine TNF-α와 IL-6의 생성을 천연 HA 및 HA-WI 보다 10-50% 수준으로 억제하여 항염증 효과를 확인하였다.
4는 HA, HA-WS와 S-HA의 1H/13C NMR 스펙트럼을 나타낸 것이며, 각각의 특성 피크를 확인한 결과, 합성된 S-HA는 미생물에서 분리한 천연 히알루론산 HA와가용성 히알루론산(HA-WS)보다 특성 피크가 이동됨으로써황화가 성공적으로 이루어진 것으로 확인하였다. 즉, 1H NMR 스펙트럼에서, 히알루론산 메틸기의 피크인 2.0 ppm이 S-HA 의 피크인 1.4 ppm로 이동하여 황으로 치환되었음을 확인하였다. 이러한 결과는 Choi 등의 연구결과와 유사하였다[7].
64 pg/ml으로 각각 정량되어 투여농도에 의존적이었다. 즉, S-HA에 의한 TNF-α 생성 정도는 HA보다 10 ㎍/ml 투여 농도수준에서 54.13% 낮은 비율로 생성되었으며, 황화되지 않은 비수용성히알루론산, HA-WI와 비교하더라도 28.26% 정도 낮게 생성되었다. 또한 IL-6의 생성 정도는 황화된 히알루론산, S-HA을 200, 50, 12.
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