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[국내논문] 한우 고환 간질세포의 형태계측학적 연구
Morphometric study of the Leydig cell in Korean native cattle (Bos taurus coreae) 원문보기

韓國家畜衛生學會誌 = Korean journal of veterinary service, v.39 no.3, 2016년, pp.141 - 149  

태현진 (전북대학교 수의과대학 생체안전성 연구소) ,  안동춘 (전북대학교 수의과대학 생체안전성 연구소) ,  이영덕 (전북대학교 수의과대학 생체안전성 연구소) ,  나성진 (전북대학교 수의과대학 생체안전성 연구소) ,  박병용 (전북대학교 수의과대학 생체안전성 연구소) ,  김인식 (전북대학교 수의과대학 생체안전성 연구소)

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Changes in the Leydig cell from pre-puberty to adulthood were studied in Korean native cattle. Eight groups of male cattle aged 14, 17, 20, 25, 30, 35, 40 and 104 weeks (n=7 cattle per group) after birth were used. The purpose of this study was to obtain quantitative information on the Leydig cell o...

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문제 정의

  • 따라서 고환 간질세포의 구조와 기능에 관하여 명확하게 밝혀지지 않은 한우를 대상으로 출생 후 14 주령부터 104 주령까지 일반조직학적인 방법 및 형태계측학적 방법으로 간질세포의 용적치밀도, 절대용적, 평균세포 용적 및 고환 내 총 숫자의 변화를 구명하기 위하여 이 연구를 수행하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
한우 생후 14주령에서 채취한 고환에서 간질조직의 성장단계별 용적치밀도 변화 추이는? 85%, 104 주령에는 76.86% 까지 증가 하였고, 곱슬정세관과는 반대로 간질조직 용적 치밀도는 45.52%의 비율이 25 주령 까지 유지 되다가 생후 30주령 이후부터 감소하여 40 주령에는 36.81%, 104 주령에는 23.14%로 나타났다. 독일 재래 소 고환에서 간질조직의 용적치밀도는 4 주령에서 51.
생후 14주령의 한우에서 채취한 고환에서 곱슬정 세관의 광학 현미경 관찰 결과는? 생후 14주령의 한우에서 채취한 고환에서 곱슬정 세관은 고환의 약 54.2%를 차지하였고, 직경이 약 75.56 μm이었고, 기저막 부위에는 원형의 큰 핵을 가진 정조세포(spermatogonia)들이 위치하고 그 사이에서는 부정형의 핵을 가진 소수의 지지세포(Sertoli cell)들이 관찰되었다. 반면 45.
고환 내 내분비기능을 담당하는 세포는? 고환 내 내분비기능을 담당하는 간질세포는 체내 대부분의 수컷호르몬을 분비하는 대표적인 세포이다. 간질세포는 일반적으로 미분화된 중간엽세포에서 발생하는 것으로 알려져 있으며(Kerr, 1988; Mendis-Handagama와 Ariyaratne, 2001), 간질세포 자극호르몬(interstitial cell stimulating hormone)은 간질세포막에 있는 특수한 막수용체에 작용하여 간질세포를 성장, 분화시키고, 간질세포의 세포질 내 미세구조에 존재하는 몇 가지 효소를 이용하여 웅성호르몬을 합성하여 분비 하는 작용이 있으며(Saez, 1994), 이 수컷호르몬은 정자발생의 조절, 부속생식기관의 유지 및 발기기능을 포함한 수컷생식계통에서 중요한 작용을 나타낸다(Robert와 Delost, 1978; Saez, 1994).
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참고문헌 (40)

  1. Aire TA. 1997. The structure of the interstitial tissue of the active and resting avian testis. J Vet Res 64: 291-299. 

  2. Allrich RD, Christensen RK, Rord JJ, Zimmerman DR. 1983. Pubertal development of the boar: age-related change testicular morphology and in vitro production of testosterone and estradiol-17 beta. Biol Reprod 28: 902-909. 

  3. Aoki A. 1970. Hormonal control of Leydig cell differentiation. Proplasma 71: 209-225. 

  4. Ariyaratne HBS, Chamindrani Mendis-Handagama SML. 2000. Change in the testis interstitium of sprague dawly rats from birth to sexual maturity. Biol Reprod 62: 680-690. 

  5. Castro AC, Berntson WE, Cardoso FM. 2002. Plasma and testicular testosterone levels, volume density and number of Leydig cells and spermatogenic efficiency of rabbit. Biol Res 35: 493-498. 

  6. Ewing LL, Zirkin BR. 1983. Leydig cell structure and steroidogenic function. Recent Prog Horm Res 39: 599-632. 

  7. Ewing LL, Zirkin BC, Cochran RC, Kromann N, Peters C, Ruiz-Bravo N. 1979. Testosterone secretion by rat, rabbit, guinea pig, dog, and hamster testes perfused in vitro : correlation with Leydig cell mass. Endocrinology 105: 1136-1142. 

  8. Fawcett DW, Neaves WB, Flores MN. 1973. Comparative observations on intertubular lymphatics and the organization of the interstitial tissue of the mammalian testis. Biol Reprod 9: 500-532. 

  9. Floderus S. 1944. Untersuchunger uber den bau der menschlichen hypophysemit bseonder berucksichtigung der quantitativen mikromorphologischen verhaltnisse. Acta Pathol Microbiol Scand 5: 1-276. 

  10. Gondos B, Morrison KP, Renston RH. 1977. Leydig cell differentiation in the prepubertal rabbit testis. Biol Reprod 17: 745-748. 

  11. Gondos B, Reston RH, Goldsten DA. 1976. Postnatal differentiation of Leydig cells in the rabbit testis. Am J Anat 145: 167-182. 

  12. Goyal HO, Dhingra LD. 1973. A study on the postnatal histology of the testis in buffalo (bubalus bubalis). From birth to one year. Acta Anat 84: 237-250. 

  13. Johnson L, Neaves WB. 1981. Age-related change in the Leydig cell population, seminiferous tubules, and sperm production in stallions. Biol Reprod 24: 703-712 

  14. Johnson L, Thomson DL. 1986. Seasonal variation in the total volume of Leydig cells in stallions is explained by variation in cell number rather than size. Biol Reprod 35: 971-979. 

  15. Kerr JB, Knell CM. 1988. The fate of fetal Leydig cells during the development of the fetal and fatal and postnatal rat testis. Development 103: 535-544. 

  16. Kim IS, Ariyaratne HBS, Mendis-Handagama SMLC. 2001. Effects of continuous and intermittent exposure of lactating mother to Aroclor 1242 on testicular steroidogenic function in the adult male offspring. Tissue Cell 33: 169-177. 

  17. Kim IS, Ariyaratne HBS, Mendis-Handagama SMLC. 2002. Change in the testis interstitium of Brown Norway rats with aging and effects of luteinizing and thyroid hormones on the aged testis in enhancing the steroidogenic potential. Biol Reprod 66: 1359-1366. 

  18. Kim IS, Kim HY, Lee YH, Yang HH. 2000. Comparison of components of the testis interstitium with testosterone secretion in pigeon, Pheasant, and chicken testis incubated in vitro. Koera J Lab Anim Sci 16: 257-268. 

  19. Kim IS, Yang HH. 1999. Morphometric study of the testicular interstitium of the rat during postnatal development. Korea J Anat 32: 849-858. 

  20. Kim IS, Yang HH. 2001. Seasonal change of testicular weight, sperm production, serum testosterone, and in vitro testosterone release in Korean ring-necked pheasants (Phasianus colchicus Karpowi). J Vet Med Sci 63: 151-516. 

  21. Mendis-Handagama SMLC, Ariyaratne HBS. 2001. Change in the testis interstitium of Sprague Dawley rats from birth to sexual maturity. Biol Reprod 65: 660-671. 

  22. Mendis-Handagama SMLC, Ewing LL. 1990. Sources of error in the estimation of Leydig cell number in control and atrophied mammalian testes. J Microsc 59: 73-82. 

  23. Mendis-Handagama SMLC, Risbridger GP, de Krester DM. 1987. Morphometric analysis of the components of the neonatal and the adult rat testis interstitium. Int J Androl 10: 525-534. 

  24. Mendis-Handagama SMLC, Zirkin BR, Ewing LL. 1998. Comparison of components of the testis interstitium with testosterone secretion hamster, rat, and guinea pig testis perfused in vitro. Am J Anat 188: 12-22. 

  25. Moura AA, Erickson BH. 2001. Testicular development, histology, and Hormone profiles in three yearling angus bulls with spermatogenic arrest. Theriogenology 55: 1469-1488. 

  26. Neaves ES, Chiarini-Garcia H, Franca LR. 2002. Comparative testis morphometry and seminiferous epithelium cycles length in donkeys and mule. Biol Reprod 67: 274-255. 

  27. Neaves WB. 1973. Change in testicular Leydig cells and in plasma testosterone levels among seasonally breeding rock hyrax. Biol Reprod 8: 451-466. 

  28. Nistal M, Paniagua R, Regadera J, Santamaria L, Amat P. 1986. A quantitative morphometry of human Leydig cells from birth to adulthood. Cell Tissue Res 246: 229-236. 

  29. Pant HC, Sharma RK, Patel Shukla HR, Mittal AK, Kasiraj R, Misra AK, Prabhakar JH. 2003. Testicular development and its relationship to semen production in Murrah buffalo bulls. Theriogenology 60: 27-34. 

  30. Rana BK, Bilaspuri GS. 2000. Change in interstitial cells during development of Buffalo testis. Vet J 159: 179-185. 

  31. Rana BK, Bilaspuri GS. 2004. A quantitative study of seminiferous tubular cells in the developing Murrah buffalo testis. Vet J 167: 95-103. 

  32. Robert A, Delost P. 1978. Peripheral metabolism of testosterone during puberty in the male guinea-pig. Reprod Fert 53: 227-276. 

  33. Saez JM. 1994. Leydig cell: endocrine, paracrine, and autocrine regulation. Endrocrine Rev 15: 576-626. 

  34. Sanchez B, Pizarro M, Garcia P, Flores JM. 1993. Histological study of Leydig cells in the cat from birth to sexual maturity. J Reprod Fert 47: 349-353. 

  35. Scala G, De Girolamo P, Corona M, Pelagalli GV. 2002. Microvasculature of the Buffalo Epididymis. Anat Rec 266: 58-68. 

  36. Sinha-Hikim AP, Amador AG, Russell LD. 1989. Structure/function relationship in active and inactive hamster Leydig cells : A correlative morphometric and endocrine study. Endocrinology 125: 1844-1856. 

  37. Wrobel KH. 1990. The postnatal development of the bovine Leydig cell population. Reprod Dom Anim 25: 51-60. 

  38. Wrobel KH. 2000. Prespermatogenesis and supermatogoniogenesis in the bovine testis. Anat Embryol 202: 209-222. 

  39. Zayed AE, Hifny A, Abou-Elmagd A, Wrobel KH. 1995. Seasonal changes in the intertubular tissue of the camel testis (Camelus dromedarius). Ann Anat 177: 199-212. 

  40. Zirkin BR, Ewing LL, Kromann N, Cochran RC. 1980. Testosterone secretion by rat, rabbit, guinea pig, dog, and hamster testes perfused in vitro: correlation with Leydig cell ultrastructure. Endocrinology 107: 1868-1874. 

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