Endophytic fungi have yielded a variety of secondary metabolites so far. In the course of the project to find bioactive secondary metabolites from cultures of endophytic fungi, an isolate of Arthrinium phaeospermum (JS 0567) was selected for chemical investigation. A large scale culture of this stra...
Endophytic fungi have yielded a variety of secondary metabolites so far. In the course of the project to find bioactive secondary metabolites from cultures of endophytic fungi, an isolate of Arthrinium phaeospermum (JS 0567) was selected for chemical investigation. A large scale culture of this strain in rice media was extracted with an organic solvent and the extract was subjected to a serious of chromatography, which led to six metabolites. Their chemical structures were elucidated as 2,3,6,8-tetrahydroxy-1-methylxanthone(1), 2,3,4,6,8-pentahydroxy-1-methylxanthone(2), 3,4,6,8-tetrahydroxy-1-methylxanthone(3), 3,6,8-trihydroxy-1-methylxanthone(4), 2,4,2',4',6'-pentahydroxy-6-methylbenzophenone(5), and 5,7-di hydroxy-3-methylphthalide(6) on the basis of spectroscopic data. To the best of our knowledge, this is the first study on the secondary metabolites from Arthrinium phaeospermum.
Endophytic fungi have yielded a variety of secondary metabolites so far. In the course of the project to find bioactive secondary metabolites from cultures of endophytic fungi, an isolate of Arthrinium phaeospermum (JS 0567) was selected for chemical investigation. A large scale culture of this strain in rice media was extracted with an organic solvent and the extract was subjected to a serious of chromatography, which led to six metabolites. Their chemical structures were elucidated as 2,3,6,8-tetrahydroxy-1-methylxanthone(1), 2,3,4,6,8-pentahydroxy-1-methylxanthone(2), 3,4,6,8-tetrahydroxy-1-methylxanthone(3), 3,6,8-trihydroxy-1-methylxanthone(4), 2,4,2',4',6'-pentahydroxy-6-methylbenzophenone(5), and 5,7-di hydroxy-3-methylphthalide(6) on the basis of spectroscopic data. To the best of our knowledge, this is the first study on the secondary metabolites from Arthrinium phaeospermum.
* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.
문제 정의
분리된 화합물들은 spectral data를 바탕으로 각각 2, 3, 6, 8-tetrahydroxy- 1- methylxanthone(1), 2, 3, 4, 6, 8- pentahydroxy- 1- methylxanthone(2), 3, 4, 6, 8-tetrahydroxy- 1- methylxanthone(3), 3, 6, 8-trihydroxy- 1- methylxanthone(4), 2, 4,2′,4′,6′-pentahydroxy- 6- methylbenzophenone(5) 및 7- hydroxy- 5-methoxy- 3- methyl isobenzofuranone(6)로 동정하였다. 내생균 Arthrinium phaeospermum이 생산하는 이차대사산물에 관해서는 본 연구에서 처음으로 이루어졌다. 분리된 화합물들이 알려진 물질들이라 하더라도, 몇 가지는 강한 항균작용이 보고되거나, 암세포 증식억제 작용이 보고된 바 있는 바, 내생균이 생산하는 이차대사산물 역시 잠재력 있는 천연자원이 될 수 있음을 알 수 있었다.
본 연구에서는 식물 내생균이 생산하는 생리활성물질 연구의 일환으로, 전남 순천의 늪지 지역에서 생존하는 수생식물의 내생균이 기주식물에 미치는 영향을 연구하기 위하여, 그 내생균을 분리하고, 이들이 생산하는 이차대사산물을 규명하고자 본 연구를 실시하게 되었다. 본 연구에서는 갈대의 뿌리에서 분리된 내생균 Arthrinium phaeospermum을 배양하여, 그 배양물로부터 6종의 polyketide계 물질을 분리하여 이를 보고하고자 한다.
본 연구에서는 식물 내생균이 생산하는 생리활성물질 연구의 일환으로, 전남 순천의 늪지 지역에서 생존하는 수생식물의 내생균이 기주식물에 미치는 영향을 연구하기 위하여, 그 내생균을 분리하고, 이들이 생산하는 이차대사산물을 규명하고자 본 연구를 실시하게 되었다. 본 연구에서는 갈대의 뿌리에서 분리된 내생균 Arthrinium phaeospermum을 배양하여, 그 배양물로부터 6종의 polyketide계 물질을 분리하여 이를 보고하고자 한다.
제안 방법
δH 13.42에서 xanthone의 carbonyl group과 수소 결합하는 OH기를 확인할 수 있었고, δH 6.30 및 6.16에서 meta coupling (J=1.8 Hz)하는 두 개의 proton signal을 확인하였다.
5에 대하여 Sephadex LH-20을 충진한 칼럼에 CH2Cl2와 MeOH로의 1:1 혼합용매로 용리시켜 20개의 소분획을 얻었고, 이 중 소분획 19에 대하여, Luna 5μ C18(2) 100A column(250×10.00 mm, Phenomenex)을 이용한 HPLC(Agilent 1260)로 정제하여 화합물 3(2.5 mg)과 4(3.5 mg)를 분리하였다.
Arthrinium phaeospermum의 EtOAc 추출물을 실리카겔칼럼 크로마토그라피로 분획한 후 재결정 및 분취용 HPLC를 실시하여 총 6종의 대사체들을 분리하였다(Fig. 1). 화합물 1의 1H-NMR spectrum에서 δH 13.
00 mm, Phenomenex)이다. 단일 화합물의 구조를 규명하기 위해 이용한 NMR(Nuclear magnetic resonance) spectrum은 Varian VNS 600 spectrometer(1H: 600 MHz, 13C: 150 MHz)와 Varian VNS 300 spectrometer(1H: 300 MHz, 13C: 75 MHz) 그리고 Bruker DPX 300 spectrometer(1H: 300 MHz, 13C: 75 MHz)를 사용하여 측정하였고, NMR chemical shift value는 part per million(ppm)단위로 나타내었다. Mass spectrometer로 Jeol JMS600을 사용하였다.
기기 − TLC(Thin layer chromatography)의 결과 확인은 UV detector(Vilber lourmat, France)을 이용한 254 nm와 365 nm 파장에서 관찰하였고 발색을 병행하여 확인하였다. 병원균 배지를 제조하기 위해 고압증기멸균기(JW Medical Corporation. CHS-AC 80)를 사용하여 고온, 고압에서 모든 생균과 포자를 멸균하였고 병원균의 배양을 위해 incubator를 사용하였다. 화합물의 분리, 정제 및 spectrum 양상 비교를 위해 사용한 HPLC(High performance liquid chromatography)는 Perkin Elmer series 200 liquid chromatography와 Agilent series 1200 HPLC system이다.
분리 및 정제 − 대량배양으로 얻어진 추출물에 대하여 실리카 겔을 충진한 칼럼에 헥산(n-Hexane) 및 EtOAc 혼합용매로 비극성 용매부터 시작하여 극성을 높여 가며 기울기 용리시켜 열린 칼럼 크로마토그라피를 실시하여 총 6개의 분획을 얻었다(Fr. 1~Fr. 6).
이와 같은 data를 바탕으로 문헌과 비교하여 이 화합물을 lichen에서 분리보고된 바 있는 2, 4,2′,4′,6′-pentahydroxy- 6- methylbenzophenone으로 동정하였다.
3 software를 사용하였다. 후자는 vacuum degasser, quaternary pump, diode array detector(DAD), manual injector, auto-sampler, thermo-statted column compartment로 갖추고 있으며 Agilent chemstation software를 사용하여 실험을 진행 하였다. 분리, 정제 및 spectrum 양상 비교를 위해 HPLC에 사용된 column은 Luna 5μ C18(2) 100A column(250×10.
대상 데이터
5715)을 사용하였고 결과 확인을 위해 발색시약으로 20% aqH2SO4를 사용하였다. Column chromatography용 고정상은 Kiesel gel 60(70-230 mesh, Merck Art. 7734)와 Sephadex LH-20(GE Healthcare, Sweden)를 사용하였다. Column chromatography용 유기용매는 시약용 1(OCI company Ltd.
7734)와 Sephadex LH-20(GE Healthcare, Sweden)를 사용하였다. Column chromatography용 유기용매는 시약용 1(OCI company Ltd., DC chemical CO. Ltd.)을 사용하였고, HPLC의 이동상으로는 HPLC grade의 water, methanol(Fisher Scientific Korea Ltd.)을 사용하였다. NMR 측정을 위하여 acetone-d6, DMSO-d6 및 CD3OD(Cambridge Isotope Laboratories, Inc.
단일 화합물의 구조를 규명하기 위해 이용한 NMR(Nuclear magnetic resonance) spectrum은 Varian VNS 600 spectrometer(1H: 600 MHz, 13C: 150 MHz)와 Varian VNS 300 spectrometer(1H: 300 MHz, 13C: 75 MHz) 그리고 Bruker DPX 300 spectrometer(1H: 300 MHz, 13C: 75 MHz)를 사용하여 측정하였고, NMR chemical shift value는 part per million(ppm)단위로 나타내었다. Mass spectrometer로 Jeol JMS600을 사용하였다.
)을 사용하였다. NMR 측정을 위하여 acetone-d6, DMSO-d6 및 CD3OD(Cambridge Isotope Laboratories, Inc.)를 사용하였다.
순천만 늪지 지역에서 자생하는 갈대의 뿌리에서 내생균 A. phaeospermum를 분리하여 쌀배지에 대량으로 배양한 후, 배양물을 EtOAc로 추출, 그 추출물에서 6종의 화합물을 분리하였다. 분리된 화합물들은 spectral data를 바탕으로 각각 2, 3, 6, 8-tetrahydroxy- 1- methylxanthone(1), 2, 3, 4, 6, 8- pentahydroxy- 1- methylxanthone(2), 3, 4, 6, 8-tetrahydroxy- 1- methylxanthone(3), 3, 6, 8-trihydroxy- 1- methylxanthone(4), 2, 4,2′,4′,6′-pentahydroxy- 6- methylbenzophenone(5) 및 7- hydroxy- 5-methoxy- 3- methyl isobenzofuranone(6)로 동정하였다.
시약 − TLC plate는 Kiesel gel 60 F254(precoated, Merck Art. 5715)을 사용하였고 결과 확인을 위해 발색시약으로 20% aqH2SO4를 사용하였다.
실험재료 − 본 실험에 사용된 균주 Arthrinium phaeospermum은 국립생물자원관에서 분양받아(부여번호 JS0567) 사용하였으며, 표본은 덕성여자대학교 약학대학 생약학 실험실에 보관 중이다.
이 화합물의 13C-NMR spectrum에서 δC 183.2의 ketone기를 포함하여 총 14개의 탄소를 확인할 수 있었다.
성능/효과
δH 5.91에서 broad하게 나타나는 두 개의 aromatic proton signal을, δH 6.28에서 역시 두 개의 aromatic proton signal을 확인하여, 이 화합물이 화합물 1-4와 같이 xanthone골격이 되기에는 sp2 carbon에 결합한 치환기가 xanthone에 비해 두 개가 더 존재함을 확인할 수 있었다.
δH 6.25 및 6.14에서 각각 doublet(J=2.2 Hz)으로 나타나는 signal을 확인하여 benzene ring에 meta coupling하고 있는 두 개의 proton을 확인하였고, δH 2.75에서 singlet으로 나타나는 하나의 sp2 carbon에 결합한 methyl기의 존재를 확인할 수 있었다.
p>내생균(endophyte)이란 식물의 조직내에 살고 있으면서, 기주 식물(host plant)에 위해를 가하지 않는 미생물이라고 정의된다.1) 내생균 (endophyte)이 식물 내에서 하는 역할 등 식물-내생균 상호관계(plant-endophyte interaction)에 관해서는 연구된 바가 많지 않고 현재도 연구 중이지만, 지금까지의 보고에 의하면, 내생균이 기 기주식물의 성장을 도와주고, 어떤 경우에는 기주 식물을 외부의 병충해로부터 보호해 준다는 연구 결과가 있다.2) 실제로 내생균 또는 내생균이 생성하는 이 이차대사산물들이 강한 항균 작용을 나타내는 경우가 많이 보고되었다.
6) 한편 호주에서 오랜시간 동안 상처치유의 목적으로 사용되어 온 “snakevine”이라 불리는 약용식물 “Kennedia nigricans”에서 분리된 내생균 Streptomyces NRRL30562 이 강한 항균물질 munumbicin을 생산함이 밝혀졌다.
7) 무엇보다도 생리활성 물질의 보고로써 내생균이 천연물 및 생물학자들의 큰 관심을 큰 획기적인 연구결과는, 1995년 Strobel group에서는 주목나무 수피에서 분리된 내생균 Taxomyces andreanae이 기주식물인 주목나무가 생산하는 항암물질 Taxol®을 생산함을 발견한 것이다.
8) 주목나무 내생균이 Taxol®을 생산하는 것은 관련 유전자가 식물에서 미생물로 이동했거나, 내생균의 유전자가 기주식물로 이동해서 두 생물종 모두 이 화합물을 생산한다고 추정하고 있다.
균주의 분리 및 배양 − 내생균주 JS0567은 전남 순천만 지역의 갈대의 뿌리에서 분리되었으며, ITS sequencing을 통하여 Arthrinium phaeospermum로 규명되었다.
주목나무 내생균의 Taxol® 생산 이후, 다른 약용 식물들의 내생균이 생산하는 대사체에 대한 연구가 진행되어 왔다. 그 결과, 항암제 etoposide, teniposide 등의 lead compound인 podophyllotoxin이 분리된 식물 Podophyllum peptatum의 내생균 Phialocephala fortinii이 그 기주식물과 똑같이 podophyllotoxin을 생산함이 규명되었다.9) 또한 항암제 campthothecin을 생산하는 중국 식물 희수 Campthotheca acuminata의 내생균 Fusarium solani가 그 기주식물과 똑같이 campthothecin을 생산함이,10) 항우울제 hypericin이 분리된 식물 Hypericum perforatum의 내생균 Thielavia subthermophila 역시 hypericin을 생산함이,11) 그리고 간장약 silymarin이 분리된 마리아엉겅퀴 Sylibum marianum의 내생균 Aspergillus iizukae 역시 silymarin을 생산함이 보고되었다.
63에서 singlet으로 나타나는 aromatic methine proton 의 존재를 확인하여 이 화합물은 화합물 1과 같이 xanthone 골격에 4개의 hydroxyl기가 치환된 xanthone 계열 화합물임을 확인할 수 있었다. 그러나, proton 및 carbon signal의 chemical shift가 1의 그것들과는 차이가 있었기에 치환된 hydroxyl 기의 위치가 다른 화합물임을 예상할 수 있었다. 이상의 data를 문헌과 비교하여 이 화합물을 진균류 Penicillium raistrickii 및 Wardomyces anomalus에서 분리 보고된 바 있는 3, 4, 6, 8-tetrahydroxy- 1- methylxanthone임을 확인할 수 있었다.
이는 ESIMS spectrum으로 확인할 수 있었다. 이 화합물의 (+)ESI-MS spectrum에서 m/z 277에서 [M+H]+에 해당하는 pseudomolecular ion peak을 확인하여, 같은 치환기의 xanthone 골격인 화합물 4에 비하여 분자량 18이 더 크게 나타나, 이 화합물이 benzophenone 골격을 지님을 확인할 수 있었다. 이와 같은 data를 바탕으로 문헌과 비교하여 이 화합물을 lichen에서 분리보고된 바 있는 2, 4,2′,4′,6′-pentahydroxy- 6- methylbenzophenone으로 동정하였다.
이 화합물의 13C-NMR spectrum에서 δC 183.0에서 xanthone의 ketone 기를 확인하였고, δC 98.5 및 93.5에서 meta coupling하고 있는 두 개의 aromatic methine carbon을 확인할 수 있었다.
이 화합물의 1H-NMR spectrum에서 δH 6.32 및 6.13에서 meta coupling하는 aromatic proton signal 두 개 이외에 δH 6.63에서 singlet으로 나타나는 aromatic methine proton 의 존재를 확인하여 이 화합물은 화합물 1과 같이 xanthone 골격에 4개의 hydroxyl기가 치환된 xanthone 계열 화합물임을 확인할 수 있었다.
2의 ketone기를 포함하여 총 14개의 탄소를 확인할 수 있었다. 이로써 이 화합물이 진균류에서 많이 분리, 보고되는 xanthone 골격을 지니고 있음을 추정할 수 있었다. 특히 δC 165.
그러나, proton 및 carbon signal의 chemical shift가 1의 그것들과는 차이가 있었기에 치환된 hydroxyl 기의 위치가 다른 화합물임을 예상할 수 있었다. 이상의 data를 문헌과 비교하여 이 화합물을 진균류 Penicillium raistrickii 및 Wardomyces anomalus에서 분리 보고된 바 있는 3, 4, 6, 8-tetrahydroxy- 1- methylxanthone임을 확인할 수 있었다.13,16)
32에서 quartet으로 나타나는 methine proton을 확인할 수 있었다. 이상의 data를 문헌과 비교하여 이 화합물이 mycophenolic acid의 생합성 중간체로 보고된 바 있는 5,7-dihydroxy-3-methylphthalide임을 확인할 수 있었다.21)
5에서 meta coupling하고 있는 두 개의 aromatic methine carbon을 확인할 수 있었다. 이상의 data를 종합하고, 문헌과 비교하여 이 화합물을 해양 곰팡이 Wardomyces anomalus에서 분리 보고된 바 있는 2, 3, 4, 6, 8-pentahydroxy- 1- methylxanthone(=anomalin B)으로 동정하였다.13,14)
3에서 oxygenated된 sp2 탄소가 나타나, 이 화합물이 xanthone 골격에 hydroxyl 기가 4개 치환되어 있음을 추정할 수 있었고, 이는 1H-NMR spectrum에 나타난 exchangeable proton의 개수와 잘 일치하였다. 이상의 data를 종합하고, 문헌과 비교하여 이 화합물을 해양곰팡이 Wardomyces anomalus에서 분리 보고된 바 있는 2, 3, 6, 8-tetrahydroxy- 1- methylxanthone(=anomalin A)로 동정하였다.13-15)
66에서 broad한 singlet으로 나타나는 두 개의 aromatic proton signal을 확인하여 methyl 기가 결합한 ring에는, methyl 기 이외에 하나의 OH만 존재하며, 두 개의 proton은 서로 거의 coupling 하지 않았으므로, 서로 meta 위치에 존재함을 추정할 수 있었다. 이상의 데이터를 문헌과 비교하여 화합물 4를 진균류 Lecanora reuteri 및 Penicillium patulum에서 분리보고 된 바 있는 3, 6, 8-trihydroxy- 1- methylxanthone(=norlichexanthone)으로 동정하였다.17-18)
특히 δC 165.1, 164.6, 158.0, 153.2, 152.7 및 141.3에서 oxygenated된 sp2 탄소가 나타나, 이 화합물이 xanthone 골격에 hydroxyl 기가 4개 치환되어 있음을 추정할 수 있었고, 이는 1H-NMR spectrum에 나타난 exchangeable proton의 개수와 잘 일치하였다.
화합물 1-3에서와는 달리 δH 6.67 및 6.66에서 broad한 singlet으로 나타나는 두 개의 aromatic proton signal을 확인하여 methyl 기가 결합한 ring에는, methyl 기 이외에 하나의 OH만 존재하며, 두 개의 proton은 서로 거의 coupling 하지 않았으므로, 서로 meta 위치에 존재함을 추정할 수 있었다.
화합물 1의 1H-NMR spectrum에서 δH 13.32 및 8.97에서 broad singlet으로 나타나는 4개의 exchangeable proton의 존재를 확인할 수 있었다.
화합물 3의 1H 및 13C NMR spectra역시 화합물 1과 2의 그것들과 유사하여, xanthone계열의 물질임을 추정할 수 있었다. 이 화합물의 1H-NMR spectrum에서 δH 6.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
약용 식물들의 내생균이 생산하는 대사체로는 무엇이 발견되었는가?
주목나무 내생균의 Taxol® 생산 이후, 다른 약용 식물들의 내생균이 생산하는 대사체에 대한 연구가 진행되어 왔다. 그 결과, 항암제 etoposide, teniposide 등의 lead compound인 podophyllotoxin이 분리된 식물 Podophyllum peptatum의 내생균 Phialocephala fortinii이 그 기주식물과 똑같이 podophyllotoxin을 생산함이 규명되었다.9) 또한 항암제 campthothecin을 생산하는 중국 식물 희수 Campthotheca acuminata의 내생균 Fusarium solani가 그 기주식물과 똑같이 campthothecin을 생산함이,10) 항우울제 hypericin이 분리된 식물 Hypericum perforatum의 내생균 Thielavia subthermophila 역시 hypericin을 생산함이,11) 그리고 간장약 silymarin이 분리된 마리아엉겅퀴 Sylibum marianum의 내생균 Aspergillus iizukae 역시 silymarin을 생산함이 보고되었다.12)
내생균은 기주식물에게 어떤 일을 하는가?
내생균(endophyte)이란 식물의 조직내에 살고 있으면서, 기주 식물(host plant)에 위해를 가하지 않는 미생물이라고 정의된다.1) 내생균 (endophyte)이 식물 내에서 하는 역할 등 식물-내생균 상호관계(plant-endophyte interaction)에 관해서는 연구된 바가 많지 않고 현재도 연구 중이지만, 지금까지의 보고에 의하면, 내생균이 기 기주식물의 성장을 도와주고, 어떤 경우에는 기주 식물을 외부의 병충해로부터 보호해 준다는 연구 결과가 있다.2) 실제로 내생균 또는 내생균이 생성하는 이 이차대사산물들이 강한 항균 작용을 나타내는 경우가 많이 보고되었다.
내생균은 무엇인가?
내생균(endophyte)이란 식물의 조직내에 살고 있으면서, 기주 식물(host plant)에 위해를 가하지 않는 미생물이라고 정의된다.1) 내생균 (endophyte)이 식물 내에서 하는 역할 등 식물-내생균 상호관계(plant-endophyte interaction)에 관해서는 연구된 바가 많지 않고 현재도 연구 중이지만, 지금까지의 보고에 의하면, 내생균이 기 기주식물의 성장을 도와주고, 어떤 경우에는 기주 식물을 외부의 병충해로부터 보호해 준다는 연구 결과가 있다.
참고문헌 (21)
Bacon, C. W. and White, J. F. (2000) Microbial Endophytes, Marcel Dekker, New York.
Tan, R. X. and Zou, W. X. (2001) Endophytes: a rich source of functional metabolites. Nat. Prod. Rep. 18: 448-459.
Strobel, G. A., Miller, R. V., Miller, C., Condron, M., Teplow, D. B. and Hess, W. M. (1999) Cryptocandin, a potent antimycotic from the endophytic fungus Cryptosporiopsis cf. quercina. Microbiology 145: 1919-1926.
Walsh, T. A. (1992) Emerging targets in antibacterial and antifungal chemotherapy. In Sutcliffe, J. A. and Georgopapadakou, N. H. (ed), 349-373, Chapman & Hall, London.
Li, J. Y., Strobel, G. A., Harper, J. K., Lobkovsky, E. and Clardy, J. (2000) Cryptocin, a potent tetramic acid antimycotic from the endophytic fungus Cryptosporiopsis cf. quercina. Org. Lett. 2: 767-770.
Strobel, G. A., Li, J. Y., Sugawara, F., Koshino, H., Harper, J. and Hess, W. M. (1999) Oocydin A, a chlorinated macrocyclic lactone with potent anti-oomycete activity from Serratia marcescens. Microbiology 145: 3557-3564.
Castillo, U. F., Strobel, G. A., Ford, E. J., Hess, W. M., Porter, H., Jensen, J. B., Albert, H., Robison, R., Condron, M. A., Teplow, D. B., Stevens, D. and Yaver, D. (2002) Munumbicins, wide-spectrum antibiotics produced by Streptomyces NRRL 30562, endophytic on Kennedia nigriscans. Microbiology 148: 2675-2685.
Strobel, G. A., Stierle, A., Stierle, D. and Hess, W. M. (1993) Taxomyces andreanae a proposed new taxon for a bulbilliferous hyphomycete associated with Pacific yew. Mycotaxon 47: 71-78.
Eyberger, A. L., Dondapati, R. and Porter, J. R. (2006) Endophyte fungal isolates from Podophyllum peltatum produce podophyllotoxin. J. Nat. Prod. 69: 1121-1124.
Kusari, S., Zuhlke, S. and Spiteller, M. (2009) An endophytic fungus from Camptotheca acuminata that produces camptothecin and analogues. J. Nat. Prod. 72: 2-7.
Kusari, S., Lamshoft, M., Zuhlke, S. and Spiteller, M. (2008) An endophytic fungus from Hypericum perforatum that produces hypericin. J. Nat. Prod. 71: 159-162.
El-Elimat, T., Raja, H. A., Graf, T. N., Faeth, S. H., Cech, N. B. and Oberlies, N. H. (2014) Flavonolignans from Aspergillus iizukae, a fungal endophyte of milk thistle (Silybum marianum). J. Nat. Prod. 77: 193-199.
Abdel-Lateff, A., Klemke, C., Konig, G. M. and Wright, A. D. (2003) Two new xanthone derivatives from the algicolous marine fungus Wardomyces anomalus. J. Nat. Prod. 66: 706-708.
Ebada, S. S., Schulz, B., Wray, V., Totzke, F., Kubbutat, M., Mueller, W., Hamacher, A., Kassack, M., Lin, W. and Proksch, P. (2011) Arthrinins A-D: Novel diterpenoids and further constituents from the sponge derived fungus Arthrinium sp. Bioorg. Med. Chem. 19: 4644-4651.
Belofsky, G. N., Gloer, K. B., Gloer, J. B., Wicklow, D. T. and Dowd, P. F. (1998) New p-terphenyl and polyketide metabolites from the sclerotia of Penicillium Raistrickii. J. Nat. Prod. 61: 1115-1119.
Broadbent, D., Mabelis, R. P. and Spencer, H. (1975) 3,6,8- Trihydroxy-1-methylxanthone: an antibacterial metabolite from Penicillium patulum. Phytochemistry 4: 2082-2083.
Mutanyatta, J., Matapa, B. G., Shushub, D. D. and Abegaz, B. M. (2003) Homoisoflavonoids and xanthones from the tubers of wild and in vitro regenerated Ledebouria graminifolia and cytotoxic activities of some of the homoisoflavonoids. Phytochemistry 62: 797-804.
Watanabe, M., Tsukazaki, M., Hamada, Y., Iwao, M. and Furukawa, S. (1989) An efficient synthesis of phthalides by Diels-Alder reaction of sulfur-substituted furanones with silyloxydienes: a formal synthesis of mycophenolic acid. Chem. Pharm. Bull. 37: 2948-2951.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.