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During the ovary preservation in low temperature, the cumulus oocyte complexes(COCs) lose their developmental competences after in vitro fertilization. We used phosphate-buffered saline (PBS) as a basic solutions of at various temperatures (25, 15 or $5^{\circ}C$) and supplemented them wi...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 이런 연구는 이식 가능한 배반포를 계속적으로 공급한다는 점에서 동일한 목적을 가진 기술이라고 판단할 수 있는데(Ideta 등, 2015), 이식 가능한 수정란을 지속적으로 생산하는 것은 생체 유래 배반포를 지속적으로 보존하는 것과 차이가 있으며 난자를 회수하는 시점을 조절함으로서 건강한 배반포를 균일하게 생산하면 더욱 이용성이 높을 것으로 판단된다. 따라서 본 연구에서는 도축장으로부터 난소를 이송하고 보존하는 연구를 통하여 난소 보존 방법에 관한 효율적인 방법을 강구하고자 실험을 실시 하였다. 도축장에서 채취된 난소를 저온 저장할 때 glucose와 glutamine을 첨가하여 저온보존성을 조사하였으며 적절한 난소 보존 조건을 확보하여 난자 이용성을 증진시킴과 동시에 수정란 생산에 대한 시간적 장점을 확보하기 위하여 다양한 조건에서 난자의 성숙율, 체외 수정 및 발생율을 조사하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
난소 이송과정 중에서 보존 온도를 높게 유지하면 어떤 문제점이 있는가? 그러나 난소는 하나의 장기로서 산소의 공급과 영양 성분이 요구되는 것으로 추정되나, 이송 과정 동안 혈액의 유실을 통하여 저 산소 상태가 6~8시간 이상 유지되면 난자의 질이 저하 되는 것으로 알려져 있다(Yang 등, 1990; Abe 와 Shioya, 1996). 또한, 난소 이송과정 중에서 보존 온도를 높게 유지하게 되면 난소 내 에너지의 대사가 촉진되어 난자의 질적 저하를 야기 할 수 있는 것으로 알려져 있다. 장기 이식을 위하여 심장, 신장 및 안구 등의 냉장 보존액에 대한 연구는 50여 년 전부터 실시되어 많은 자료가 축적되었으나(Collins 등, 1972; Jablonski 등, 1980; Guibert 등, 2011), 난소의 이송에 대한 적절한 조건에 관한 연구는 도축장에서 난소를 채취한 후 가급적 짧은 시간(3~6시간)에 사용하는 것이 유리하다는 연구결과가 보고되어 있다(Ball 등, 1983: Yang 등, 1990).
소의 체외 수정란 생산기법은 어떻게 이용되는가? 소의 체외 수정란 생산기법은 일반적으로 도축장 유래 난소로 부터 난자-난구세포괴(COCs, cumulus oocyte complex) 를 회수하고 난자의 체외 성숙, 체외성숙 및 수정란 발생 및 수정란 이식기법을 활용하여 건강한 송아지를 생산하는데 이용되고 있다. 이 때 사용되는 난소는 일반적으로 0.
난소의 저온저장 과정은 어떤 단점을 갖는가? 난소의 저온저장 과정 중에 나타날 수 있는 손상은 저온상태에서 조직과 세포의 대사에 의한 저산소증에 의한 손상(hypoxic injury)을 고려해 볼 수 있다. 저온 보존과정은 난소 조직의 신진 대사를 낮추고 산소 소모를 억제해야 하는데 이것이 충분하지 않을 수 있어 활성화 산소(ROS, reactive oxygen species)가 세포내에 축적되게 되며 세포막의 파괴를 유도할 수 있다. 또한 난자는 배반포로 발생하기 위하여 많은 영양소를 필요하게 되며 아미노산과 비타민이 중요한 성분으로 알려져 있으므로 대사물질의 결필을 막기 위하여 저온저장 과정에서 영양성분을 공급할 필요성이 존재한다(Rosenkraus와 First. 1991).
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참고문헌 (22)

  1. Abe S and Shioya Y. 1996. Effects of temperature and duration of preservation of bovine ovaries in phyiological saline on the development of bovine embryos derived from follicular oocytes matured and fertilized in vitro. Anim. Sci. Technol. Jpn. 67:633-638. 

  2. Ball GD, Leibfried ML, Lenz RW, Ax RL, Bavister BD and First NL. 1983. Factors affecting successful in vitro fertilization of bovine follicular oocytes. Biol. Reprod. 28:717-725. 

  3. Bokros CL, Hugdahl JD, Blumenthal SSD and Morejohn. 1996. Proteolytic analysis of polymerized maize tubulin: regulation of microtubule stability to low temperature and $Ca^{2+}$ by the carboxyl terminus of ${\beta}$ -tubulin. Plant. Cell. Environ. 19:539-548. 

  4. Brackett BG and Oliphant G. 1975. Capacitation of rabbit spermatozoa in vitro. Biol. Reprod. Dev. 40:5-11. 

  5. Collins GM, Hartley LC and Clunie GJ. 1972. Kidney preservation for transportation. Experimental analysis of optimal perfusate composition. Brit. J. Surg. 59:187-189. 

  6. Elimadi A and Haddad PS. 2001. Cold preservation-warm reoxygenation increases hepatocyte steady-state $Ca^{{+}{+}}$ and response to Ca++-mobilizing agonist. Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver. Physiol. 281:G809-G815. 

  7. Guibert EE, Petrenko AY, Balaban CL, Somov AY, Rodriguez JV and Fuller BJ. 2011. Organ Preservation: Current Concepts and New Strategies for the Next Decade. Transfus. Med. Hemother. 38:125-142. 

  8. Ideta A, Aoyagi Y, Tsuchiya K, Kamijima T, Nishimiya Y and Tsuda S. 2013. A simple medium enables bovine embryos to be held for seven days at $4^{\circ}C$ . Sci. Rep. 1173:1-5. 

  9. Ideta Aoyagi Y, Tsuciya K, Nakamura Y, Hayama K, Shirasawa A, Sakaguch K, Tominaga N, Nishimiya Y and Tsuda S. 2015. Prolonging hypothermic storage (4 C) of bovine embryos with fish antifreeze protein. J. Reprod. Dev. 61:1-6. 

  10. Iwata H, Ohota M, Hashimoto S. and Nagai Y. 2003. Free oxygen radicals are generated at the time of aspiration of oocytes from ovaries that have been stored for a long time. Zygote 11:1-5. 

  11. Jablonski P, Howden B, Marshall V, Scott D. 1980 Evaluation of citrate flushing solution using the isolated perfused rat kidney. Transplantation 30:239-243. 

  12. Lodish H, BerkA and Zipursky SL. 2000. Molecular Cell Biology 4th edition, Freema WH and Company, Section 19. 2 

  13. Martino A, Pollard JW and Leibo SP. 1996. Effect of chilling bovine oocytes on their developmental competence. Mol. Reprod. Dev. 45:503-512. 

  14. Matello CM, Gameiro PA, Bell EL, Mattaini KR, Yang J, Hiller K, Jewell CM, Johnson JR, Irvine DJ, Guarente L, Kelleher JK, Vander Heiden MG, Iliopoulos O. and Stephanogoulos G. 2012. Reductive glutamine metabolism by IDH1 mediates lipogenesis under hypoxia. Nature 481:380-384. 

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  16. Rauen U and de Groot H. 2004. New insights into the cellular and molecular mechanisms of cold storage injury. J. Investig. Med. 52:299-309. 

  17. Reis A, Staines ME, Watt RG, Dolman DF and McEvoy TG. 2002. Embryo production using defined oocyte maturation and zygote culture media following repeated ovum pick-up (OPU) from FSH-stimulated Simmental heifers. Anim. Reprod. Sci. 72:137-151. 

  18. Rosenkraus JCF and First NL. 1991. Culture of bovine zygotes to the blastocyst stage: effect of amino acids and vitamins. Theriogenology 35:266. 

  19. Ozturk SS and Palsson BO. 1990. Chemical decomposition of glutamine in cell culture media: effect of media type, pH, and serum concentration. Biotechnol. Prog. 6:121-128. 

  20. Senatore EM, Xu J, Suarez Novac MV, Gong G, Lin T, Bela A, Moreno JF, Mannino ME, Tian X, Presicce GA, Wu SC and Du F. 2010. Improved in vitro development of OPU-derived bovine (Bos taurus) embryos by group culture with agarose-embedded helper embryos. Theriogenology 74:1643-1651. 

  21. Wallin M and Stromberg E. 1995. Cold-stable and cold-adapted microtubules. Int. Rev. Cytol. 157:1-31. 

  22. Yang NS, Lu KH and Gordon I. 1990. In vitro fertilization (IVF) and culture (IVC) of bovine oocytes from stored ovaries. Theriogenology 33, 352 (Abstract). 

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