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[국내논문] 후코이단이 혈관 내피세포의 신생혈관 생성 효과 및 관련 유전자의 발현에 미치는 영향
Effect of Fucoidan on Angiogenesis and Gene Expression in Human Umbilical Vein Endothelial Cells 원문보기

Korean journal of clinical laboratory science : KJCLS = 대한임상검사과학회지, v.49 no.4, 2017년, pp.323 - 328  

박호 (원광보건대학교 임상병리학과) ,  김범수 (전북대학교 탄소기반 나노 융합 응용기술 차세대 공학연구자 육성사업단)

초록
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신생혈관생성은 여러 신생혈관 생성 인자들이 포함되는 중요한 과정이며, 특히 이 과정에서는 섬유아세포증식인자(FGF-2)는 세포의 증식률과 미세관 형성을 촉진하기 때문에 중요한 신생혈관 생성인자로 여겨진다. 최근 연구에 따르면 해조류에서 추출되는 후코이단 다당류 물질이 섬유아세포 증식인자2에 의한 혈관내피세포의 미세관형성을 더욱 촉진한다고 보고하였다. 그러나 섬유아세포 증식인자와 후코이단 복합처리에 따른 신생혈관생성 활성에 대한 분자적 메카니즘은 아직 연구가 부족하다. 따라서 본 연구에서는 신생혈관생성 활성을 알아보기 위하여 섬유아세포 증식인자와 후코이단 물질의 복합처리에 따른 세포의 증식과 미세관형성률 그리고 세포의 이동율을 측정하였다. 또한 이들의 신생혈관 생성 활성에 관련된 인자를 탐색하기 위하여 VEGF-A, ICAM-1, MMP9, 그리고 ICAM-1 유전자를 연전사 중합연쇄반응으로 평가하였다. 본 연구의 결과에서는 후코이단과 섬유아세포 증식인자 복합처리는 혈관내피세포의 성장률, 미세관 형성률 그리고 세포의 이동률을 촉진하고, 이 과정에서 신생혈관생성 기능과 관련된 STAT3, VEGF-A, MMP9 그리고 ICAM-1의 유전자 발현을 촉진함으로 신생혈관 생성활성이 나타나는 것으로 보여진다. 그러나 이러한 유전자 발현이 fucoidan/FGF2에 의한 angiogenic 활성 촉진에 직접적인 영향을 미치는 지에 대한 추가적인 연구가 이루어져야 할 것으로 생각된다.

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Angiogenesis is a process including members of the angiogenic factors. In particular, fibroblast growth factor 2 (FGF2) is considered the most potent angiogenic factor because it promotes cell proliferation and tube formation. A recent study reported that fucoidan derived from marine plant potentiat...

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문제 정의

  • 비록 신생혈관생성에 관한 연구에서 fucoidan이 신생 혈관생성 증진 효과[6,7]와 이에 반대적인 신생혈관생성 억제 효과를 가지고 있다는 상반되는 연구결과들이 보고된 바 있지만[8], 이러한 신생혈관생성 활성 연구 및 기본적인 메커니즘에 대한 연구가 부족한 실정이다. 이에 본 연구에서는, fucoidan이 인간 제대혈 유래 혈관 내피세포인 human umbilical vein endothelial cells (HUVECs) 세포에 미치는 영향에 대하여 조 사하였다. 특히 신생혈관생성이라는 과정이 다양한 신생혈관 생성 인자와 이와 관련된 수용체가 결합함으로써 일어난다는 부분에 초점을 두어, FGF2와 fucoidan을 함께 처리함으로써 발생하는 관형성 및 세포이동 등의 연구와 이의 과정에서 변화 되는 유전자의 분자적 수준의 발현을 확인하고자 하였다.
  • 이에 본 연구에서는, fucoidan이 인간 제대혈 유래 혈관 내피세포인 human umbilical vein endothelial cells (HUVECs) 세포에 미치는 영향에 대하여 조 사하였다. 특히 신생혈관생성이라는 과정이 다양한 신생혈관 생성 인자와 이와 관련된 수용체가 결합함으로써 일어난다는 부분에 초점을 두어, FGF2와 fucoidan을 함께 처리함으로써 발생하는 관형성 및 세포이동 등의 연구와 이의 과정에서 변화 되는 유전자의 분자적 수준의 발현을 확인하고자 하였다.
  • Matrigel을 이용한 튜브 형성 정도의 평가는 신생혈관생성의 효과를 확인하기 위해 방법으로 많이 사용된다[4,9]. 이에 본 연구에서 fucoidan의 angiogenic 효과를 평가하기 위하여 혈관 튜브 형성률을 평가하였다. 실험을 위하여 4°C에서 미리 녹여 둔 Matrigel (BD Biosciences, New Bedford, MA, USA)을 취하여 96 well plate에 loading하고, 이를 37°C, 5% CO2 incu- bator에서 한 시간 동안 incubation하여 겔로 굳혔다.
  • 혈관 형성에 있어서 내피세포는, 내피세포 자체가 관을 이룰 만큼 충분한 증식(proliferation)을 하고, 성장한 세포는 방향성을 가지고 공간적인 배열(migration)을 한다고 알려져 있다 [10,11]. 따라서 본 연구에서는 fucoidan 처리 후 wound healing에 대한 효과를 확인하였다. 세포를 6 well plate에 2×105 cells/well의 농도로 세포를 접종하고, 37°C, 5% CO2 incubator 에서 24시간 동안 배양 후, 마이크로 피펫의 blue tip을 사용하여 plate 중간에 scratch를 형성시켰다.
  • 신생혈관 활성 효능을 평가하기 위하여 세포의 이동 활성을 평가하였다. 대조군은 약 10% 정도의 세포이동을 보였으나 FGF2 경우 약 23% fucoidan 21% 정도 세포의 이동이 관찰되었다.
  • 신생혈관 생성에 대한 효과에 대하여 몇몇 연구자들은 fucoidan의 효과를 보고한바 있으나[4,12,13] 이와 관련된 분자적 수준에서의 관련 연구는 미흡하다. 따라서 본 연구에서는 혈관내피세포를 이용하여 fucoidan과 FGF2 성장인자에 따른 신생혈관생성 효과를 평가하고 그에 따른 관련 유전자 발현 변화를 평가하였다. Matou 등[4]은 fucoidan이 FGF2와의 혼합 효과를 검증하기 위하여 0.
  • 1∼10 \(\mu g\)/mL의 fucoidan 농도에서 평가하였으며, 미세관 형성률에 있어 1\(\mu g\)/mL과 10 \(\mu g\)/mL의 후코이단이 처리에서만 유의성 있는 증가를 보였다. 이에 본 연구에서는 fucoidan이 HUVECs의 세포성장에 미치는 영향을 평가하기 위하여 초기 1 \(\mu g\)/mL과 10 \(\mu g\)/mL의 농도를 기준으로 실험하였다. 본 연구의 결과에서 세포의 성장은 fucoidan의 농도가 증가함에 따라 증가하는 경향을 보였다.
  • 신생혈관생성 과정에 는 다양한 유전자들이 관여하고 있다. 본 연구에서는 신생혈관 생성에 변화가 예상되는 중요 신생혈관인자들인 VEGF-A, ICAM-1, MMP9 그리고 STAT3를 대상으로 mRNA 발현변화를 평가하였다. VEGF-A는 혈관내피세포의 유사 분열 물질 및 다양한 생리학적 및 병리학적 조건에서 혈관 신생의 중요 조절 인자로 알려져 있다[14].
  • 그러나 섬유아세포 증식인자와 후코이단 복합처리에 따른 신생혈관생성 활성에 대한 분자적 메카니즘은 아직 연구가 부족하다. 따라서 본 연구에서는 신생혈관생성 활성을 알아보기 위하여 섬유아세포 증식인자와 후코이단 물질의 복합처리에 따른 세포의 증식과 미세관형성률 그리고 세포의 이동율을 측정하였다. 또한 이들의 신생혈관 생성 활성에 관련된 인자를 탐색하기 위하여 VEGF-A, ICAM-1, MMP9, 그리고 ICAM-1 유전자를 연전사 중합연쇄반응으로 평가하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
신생혈관생성이란? 신생혈관생성은 기존 혈관들로부터 새로운 혈관이 형성되는 과정으로, 이는 배아 발생, 상처치유, 염증 그리고 암 성장을 포함하는 다양한 생리학적 및 병리학적 조건에서 중요한 역할을 한다[1]. 신생혈관생성과정은 여러인자들에 의해 조절되는데 [2], 이러한 신생혈관생성이 정상적으로 조절되지 못하면 암, 류마티스성 관절염, 당뇨병성 망막증 등 여러 가지 질환들이 야기되기 때문에 중요한 연구 대상이다.
신생혈관생성은 어떠한 역할을 하는가? 신생혈관생성은 기존 혈관들로부터 새로운 혈관이 형성되는 과정으로, 이는 배아 발생, 상처치유, 염증 그리고 암 성장을 포함하는 다양한 생리학적 및 병리학적 조건에서 중요한 역할을 한다[1]. 신생혈관생성과정은 여러인자들에 의해 조절되는데 [2], 이러한 신생혈관생성이 정상적으로 조절되지 못하면 암, 류마티스성 관절염, 당뇨병성 망막증 등 여러 가지 질환들이 야기되기 때문에 중요한 연구 대상이다.
신생혈관생성과정에 관여하는 인자들에는 어떤것들이 있는가? 신생혈관생성과정은 여러인자들에 의해 조절되는데 [2], 이러한 신생혈관생성이 정상적으로 조절되지 못하면 암, 류마티스성 관절염, 당뇨병성 망막증 등 여러 가지 질환들이 야기되기 때문에 중요한 연구 대상이다. 또한 신생혈관생성이 일어 나기 위해서는 vascular endothelial growth factor-A (VEGF-A), transforming growth factor alpha (TGF-), platelet derived growth factors (PDGF), tumor necrosis factor alpha (TNF-alpha) 등 다양한 신생혈관인자가 관여하기 때문에 신생 혈관생성 인자의 특성을 연구하는 것 역시 중요한 연구 대상이 된다. 그 중 fibroblast growth factor2 (FGF2)는 내피세포의 성장을 촉진할 뿐만 아니라, 내피세포의 물리적 조직에도 관여하기 때문에 다른 신생혈관생성 인자 못지 않게 중요한 인자로 여겨진다[3].
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참고문헌 (24)

  1. Carmeliet P, Jain RK. Angiogenesis in cancer and other diseases. Nature. 2000;407(14):249-257. 

  2. Folkman J, Cotran R. Relation of vascular proliferation to tumor growth. Int Rev Exp Pathol. 1976;16:207-248. 

  3. Yun YR, Won JE, Jeon E, Lee S, Kang W, Jo H, et al. Fibroblast growth factors: biology, function, and application for tissue regeneration. J Tissue Eng. 2010;218142. 

  4. Matou S, Colliec-Jouault S, Galy-Fauroux I, Ratiskol J, Sinquin C, Guezennec J, et al. Effect of an oversulfated exopolysaccharide on angiogenesis induced by fibroblast growth factor-2 or vascular endothelial growth factor in vitro. Biochem Pharmacol. 2005;69(5):751-759. 

  5. Liu F, Wang J, Chang AK, Liu B, Yang L, Li Q, et al. Fucoidan extract derived from Undaria pinnatifida inhibits angiogensis by human umbilical vein endothelial cells. Phytomedicine. 2012;19(8-9):797-803. 

  6. Koyanagi S, Tanigawa N, Nakagawa H, Soeda S, Shimeno H. Oversulfation of fucoidan enhances its anti-angiogenic and antitumor activities. Biochem Pharmacol. 2003;65(2):173-179. 

  7. Soeda S, Kozako T, Iwata K, Shimeno H. Oversulfated fucoidan inhibits the basic fibroblast growth factor-induced tube formation by human umbilical vein endothelial cells: it's possible mechanism of action. Biochim Biophys Acta. 2000;1497(1):127-134. 

  8. Manzo-Silberman S, Louedec L, Meilhac O, Letourneur D, Michel JB, Elmadbouh I. Therapeutic potential of fucoidan in myocardial ischemia. J Cardiovasc Pharmacol. 2011;58(6): 626-632. 

  9. Matou S, Helley D, Chabut D, Bros A, Fischer AM. Effect of fucoidan on fibroblast growth factor-2-induced angiogenesis in vitro. Thromb Res. 2002;106(4-5):213-221. 

  10. Beck L Jr, D'Amore PA. Vascular development: cellular and molecular regulation. FASEB J. 1997;11(5):365-373. 

  11. Risau W, Flamme I. Vasculogenesis. Annu Rev Cell Dev Biol. 1995;11:73-91. 

  12. Chabut D, Fischer AM, Helley D, Colliec S. Low molecular weight fucoidan promotes FGF-2-induced vascular tube formation by human endothelial cells, with decreased PAI-1 release and ICAM-1 downregulation. Thromb Res. 2004;113(1):93-95. 

  13. Zemani F, Benisvy D, Galy-Fauroux I, Lokajczyk A, Colliec-Jouault S, Uzan G, et al. Low-molecular-weight fucoidan enhances the proangiogenic phenotype of endothelial progenitor cells. Biochem Pharmacol. 2005;70(8):1167-1175. 

  14. Ju M, Mailhos C, Bradley J, Dowie T, Ganley M, Cook G, et al. Simultaneous but not prior inhibition of VEGF165 enhances the efficacy of photodynamic therapy in multiple models of ocular neovascularization. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2008;49:662-670. 

  15. Lai CM, Spilsbury K, Brankov M, Zaknich T, Rakoczy PE. Inhibition of corneal neovascularization by recombinant adenovirus mediated antisense VEGF RNA. Exp Eye Res. 2002; 75(6):625-634. 

  16. Ferrara N, Davis-Smyth T: The biology of vascular endothelial growth factor. Endocr Rev. 1997;18:4-25. 

  17. Brown LF, Detmar M, Claffey K, Nagy JA, Feng D, Dvorak AM, et al. Vascular permeability factor/vascular endothelial growth factor: a multifunctional angiogenic cytokine. EXS. 1997;79:233-269. 

  18. Carmona G, Chavakis E, Koehl U, Zeiher AM, Dimmeler S. Activation of Epac stimulates integrin-dependent homing of progenitor cells. Blood. 2008;111(5):2640-2646. 

  19. Radisavljevic Z, Avraham H, Avraham S. Vascular endothelial growth factor up-regulates ICAM-1 expression via the phosphatidylinositol 3 OH-kinase/AKT/Nitric oxide pathway and modulates migration of brain microvascular endothelial cells. J Biol Chem. 2000;275(27):20770-20774. 

  20. Presta M, Andres G, Leali D, Dell'Era P, Ronca R. Inflammatory cells and chemokines sustain FGF2-induced angiogenesis. Eur Cytokine Netw. 2009;20(2):39-50. 

  21. Muroski ME, Roycik MD, Newcomer RG, Van den Steen PE, Opdenakker G, Monroe HR, et al. Matrix metalloproteinase- 9/gelatinase B is a putative therapeutic target of chronic obstructive pulmonary disease and multiple sclerosis. Curr Pharm Biotechnol. 2008;9(1):34-46. 

  22. Chen Z, Han ZC. STAT3: a critical transcription activator in angiogenesis. Med Res Rev. 2008;28(2):185-200. 

  23. Jekal SJ, Lee JA, Rho JS. Mast cells and vascular endothelial growth factor expression in neoangiogenesis of cervical intraepithelial neoplasia and invasive squamous cell carcinomas of the uterine cervix. Korean J Clin Lab Sci. 2005;37(3):197-206. 

  24. Xie T, Wei D, Liu M, Gao AC, Osman FA, Sawaya R, Huang S. Stat3 activation regulates the expression of matrix metalloproteinase-2 and tumor invasion and metastasis 2. Oncogene. 2004;23(20):3550-3560. 

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