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자동혈구분석기 Hemavet 950FS를 이용한 돼지 혈액 내 혈구분석의 유효시간 평가
Evaluation of valid time for analysis of complete blood cell in pig blood using the Hemavet 950FS 원문보기

한국산학기술학회논문지 = Journal of the Korea Academia-Industrial cooperation Society, v.18 no.1, 2017년, pp.194 - 201  

김기현 (농촌진흥청 국립축산과학원) ,  김광식 (농촌진흥청 국립축산과학원) ,  김두완 (농촌진흥청 국립축산과학원) ,  사수진 (농촌진흥청 기술협력국) ,  김영화 (농촌진흥청 국립축산과학원)

초록
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본 연구는 자동혈구분석기 Hemavet 950FS를 이용한 돼지 혈액 내 혈구분석의 유효성을 검증하고, 정확한 분석을 위한 유효시간을 결정하기 위하여 실시하였다. 분석시료는 체중 60 kg (${\pm}3.5$)의 Duroc 종 34두로부터 채취하였으며, 이들 중에서 분석치가 정상범위를 벗어나거나 용혈이 발견된 시료는 연구에서 제외하고 최종적으로 10개의 시료를 본 연구에 이용하였다. 임의의 하나의 시료에 대해 10회 연속분석을 통하여 일내변동을 조사한 결과, leukocytes계 혈구들 중에서 백혈구, 호중구, 림프구에서는 낮은 일내변동으로 분석의 유효성이 인정되었으나, 단핵구, 호산구, 호염구에 있어서는 큰 변동을 나타내었다. 이와 반면에 erythrocytes 및 thrombocytes계 혈구들의 모든 지표들은 안정적인 일내변동이 관찰되었다. 채혈 후 시간 경과에 따른 혈구변화를 분석한 결과 leukocytes계 혈구 및 thrombocytes계 혈구는 시간경과에 따라 검출농도가 유의적으로 감소되는 것으로 관찰되었다. 반면, erythrocytes계 혈구들은 채혈 후 120시간까지는 안정적으로 분석이 가능한 것으로 나타났다. 본 연구의 결과를 종합하면, Hemavet 950FS는 돼지의 혈액 내에서 단핵구, 호산구, 호염구를 제외하고 일반 혈구분석에 유용한 것으로 판단된다. 또한, leukocytes 및 thrombocytes계 혈구들에 대한 정확한 분석을 위해서는 채혈 후 4시간 이내에 분석이 이루어져야하며, erythrocytes계 혈구들은 채혈 후 120시간까지는 안정적으로 검출이 가능한 것으로 사료된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

This study was conducted to determine the valid time for accurate detection of complete blood cell count (CBC) in pig blood using an automatic blood corpuscle analyzer (Hemavet 950FS). Blood samples were collected from 34 pigs (Duroc) with a 60 kg (${\pm}3.5$) body weight. Ten specimens w...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 본 연구는 자동혈구분석기 Hemavet 950FS를 이용한 돼지의 혈액 내 혈구분석의 유효성을 검증하고, 더 나아가 채혈 후 시간 경과에 따른 혈구변화를 추적하여 정확한 분석에 필요한 최소 소요시간을 설정하기 위하여 실시하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
동물체 내에서 혈액의 역할은? 동물체 내에서 혈액은 혈관을 통해 온몸을 돌면서 산소와 영양소 등을 공급하고, 노폐물을 운반하여 신장을 통해 배설될 수 있도록 하며, 그 외에 내분비기관에서 분비되는 호르몬의 운반, 외부의 병원체에 대한 방어 및 체온 조절 등 다양한 기능을 담당한다. 또한, 혈액 내에는 혈구와 각종 체대 대사물질들이 함유되어 있기 때문에 인간의 건강진단 차원에서 개인의 건강상태를 판정하는 중요한 지표가 되고 있으며[1,2], 이와 같은 이유로 혈액은 가축에 있어서도 생리학적, 면역학적, 영양학적 상태, 질병 등을 조사하는 데 가장 널리 사용되는 생체시료이다[3,4].
돼지혈액을 채혈 직후 시료를 분석하는 것이 사실상 불가능한 이유는? 실험동물로써 돼지를 사용하는 경우에 있어서 혈액학적 및 생화학적 데이터의 기초평가로써 혈구분석의 필요성이 최근에 더욱 강조되고 있는 실정이다[5]. 돼지혈액의 경우, 축사현장에서 시료를 채취해야하는 현실적인 제약과 분석실까지 이동하는 데에 소요되는 시간적인 문제 때문에 채혈 직후 시료를 분석하는 것은 사실상 불가 능하다. 연구소유래 시료부터 농장유래 시료에 이르기까지 시료에 따라 분석이 개시되는 데까지 소요되는 시간은 적게는 수 분 이내에서 많게는 2일 정도까지 소요되는 경우가 빈번히 발생한다.
백혈구 (leukocytes)계 혈구, 적혈구(erythrocytes)계 혈구 및 혈소판(thrombocytes)계 혈구에 영향을 주는 요인은? 혈액내의 혈구에 대한 지표들로써는 백혈구 (leukocytes)계 혈구, 적혈구(erythrocytes)계 혈구 및 혈소판(thrombocytes)계 혈구에 대한 항목들로 분류된다. 이들 혈구는 동물의 품종, 나이, 성별, 배란, 임신, 발정 등의 생리적인 상태뿐만 아니라 식이, 시료채취시간, 환경온도, 스트레스 등 외인적인 요소에 의해서도 영향을 받는 것으로 알려져 있다[6-10]. 이들 혈구의 경우 채혈후 저장기간에 따라서도 영향을 받는 데, 채혈 후의 시간 경과에 따라서 막의 온전성이 감소되며, 용혈과 미극립자 등이 형성되어 혈중 농도가 변하게 된다[11-15].
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참고문헌 (19)

  1. K. R. Park, Y. C. Cho, The Association of Blood Pressures and Blood Biochemical Properties with BMI in Health Checkup Examinees. J. Korea Acad. Industr. Coop. Soc., 12, 3072-3081, 2011. DOI: http://dx.doi.org/10.5762/KAIS.2011.12.7.3072 

  2. K. J. Moon, H. Y. Kim, Effects of brown rice-vegetable school meal program on subjective health status, BMI and hematological parameters among high school students. J. Korea Acad. Industr. Coop. Soc., 16, 7385-7393, 2015. DOI: http://dx.doi.org/10.5762/KAIS.2015.16.11.7385 

  3. M. A. Lichtman, E. Beutler, T. J. Kipps, U. Seligsohn, K. Kaushansky, J. T. Prchal, 'Williams Hematology', 7th Ed., McGraw-Hill, New York, 2006. 

  4. M. A. Islam, C. Grobe-Brinkhaus, M. J. Proll, M. J. Uddin, S. A. Rony, D. Tesfaye, E. Tholen, M. Holker, K. Schellander, C. Neuhoff, Deciphering transcriptome profiles of peripheral blood mononuclear cells in response to PRRSV vaccination in pigs. BMC Genomics, 17, 641-658, 2016. DOI: http://dx.doi.org/10.1186/s12864-016-2849-1 

  5. P. Dubreuil, Y. Couture, C. Farmer, D. Petitclerc, Hematological and biochemical changes following an acute stress in control and somatostatin-immunized pigs. Can. J. Anim. Sci., 73, 241-252, 1993. DOI: http://dx.doi.org/10.4141/cjas93-026 

  6. Y. Nishiyama, H. Niiyama, H. Harada, A. Katou, N. Yoshida, H. Ikeda, Effect of Exercise Training on Red Blood Cell Distribution Width as a Marker of Impaired Exercise Tolerance in Patients With Coronary Artery Disease. Int. Heart J. DOI: http://dx.doi.org/10.1536/ihj.16-015 

  7. M. J. Jo, J. K. Ma, A. R. Shin, F. Dong, K. B. Song, Y. H. Choi, H. K. Lee, Relationship between periodontal status and blood count and anemia in adults: Based on the 5th Korea National Health and Nutrition Examination Survey. J. Korean Acad. Oral Health, 39, 152-157, 2015. DOI: http://dx.doi.org/10.11149/jkaoh.2015.39.2.152 

  8. K. R. Park, Y. C. Cho, The abnormal rates of blood pressures and blood biochemical properties with BMI in health checkup examinees. J. Korea Acad. Industr. Coop. Soc., 11, 4843-4853, 2010. DOI: http://dx.doi.org/10.5762/KAIS.2010.11.12.4843 

  9. M. F. Burks, M. E. Tumbelson, K. W. Hicklin, D. P. Hutcheson, C. C. Middleton, Age and sex related changes of hematologic parameters in Sinclair (S-1) miniature swine. Growth, 4l, 5l-52, 1977. 

  10. T. B. Klem, E. Bleken H. Morberg, S. I. Thoresen, T. Framstad, Hematologic and biochemical reference intervals for Norwegian crossbreed grower pigs. Vet. Clin. Pathol., 39, 221-226, 2010. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1939-165X.2009.00199.x 

  11. J. T. Latham, J. R. Bove, F. L. Weirich, Chemical and Hematologic Changes in Stored Cpda-1 Blood. Transfusion, 22(2), 158-159, 1982. DOI: http://dx.doi.org/10.1046/j.1537-2995.1982.22282177126.x 

  12. J. P. Aubuchon, T. N. Estep, R. J. Davey, The Effect of the Plasticizer Di-2-Ethylhexyl Phthalate on the Survival of Stored Rbcs. Blood, 71(2), 448-452, 1988. 

  13. U. Salzer, R. Zhu, M. Luten, H. Isobe, V. Pastushenko, T. Perkmann, P. Hinterdorfer, Giel J.C.G.M. Bosman, Vesicles generated during storage of red cells are rich in the lipid raft marker stomatin. Bosmanet, Transfusion, 48(3), 451-462, 2008. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1537-2995.2007.01549.x 

  14. T. J. Greenwalt, C. G. McGuinness, U. J. Dumaswala, Studies in Red-Blood-Cell Preservation .4. Plasma Vesicle Hemoglobin Exceeds Free Hemoglobin. Vox Sang, 61(1),14-17, 1991. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1423-0410.1991.tb00920.x 

  15. N. Robinson, A. Kirchbichler, O. Banuls, M. Mader, R. Aikin, P. E. Sottas, G. D'Onofrio, Validation of a Blood Stability Score as an easy-to-use blood sample quality index. Int. J. Lab. Hematol., 2016. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/ijlh.12557 

  16. E. G. Welles, A. S. Hall, D. M. Carpenter, Canine complete blood counts: a comparison of four in-office instruments with the ADVIA 120 and manual differential counts. Vet. Clin. Pathol., 38, 20-29, 2009. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1939-165X.2008.00084.x 

  17. D. B. Duncan, Multiple range and multiple F tests. Biometrics. 11, 1-42, 1955. DOI: http://dx.doi.org/10.2307/3001478 

  18. S. L. Putwain, E. J. Villiers, J. Archer, Validation of the Hemavet HV950FS multispecies haematology analyser for analysis of canine blood. Comp. Clin. Pathol., 17, 1-8,2008. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/s00580-007-0708-9 

  19. U. Windberger, A. Bartholovitsch, R. Plasenzotti, K. J. Korak, G. Heinze, Whole blood viscosity, plasma viscosity and erythrocyte aggregation in nine mammalian species: reference values and comparison of data. Exp. Physiol., 88, 431-440. 2003. DOI: http://dx.doi.org/10.1113/eph8802496 

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