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Real-time PCR과 Colony forming unit법을 이용한 타액 내 2종의 구강미생물 총량분석
Analysis of total oral microorganisms in saliva using real-time PCR and colony forming unit 원문보기

JKSDH : Journal of Korean Society of Dental Hygiene = 한국치위생학회지, v.17 no.1, 2017년, pp.13 - 25  

유수민 (경동대학교 치위생학과) ,  정성국 (조선대학교 치과대학 예방치과교실) ,  유현준 (단국대학교 치과대학 예방치과교실) ,  장종화 (한서대학교 치위생학과)

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Objectives: The purpose of this study was to compare colony forming unit (CFU) method and multiplex real-time polymerase chain reaction (MRT-PCR) method for accurate quantitative analysis of bacteria. Methods: We compared the CFU method and the MRT-PCR method, which are still used in Korea, for Prev...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 본 연구의 목적은 선행 연구를 기반으로 다종의 치주질환 원인 균을 짧은 시간에 분석 가능한 MRT-PCR법의 구강미생물 정량분석에 대한 정확성을 확인하기 위함이다. 이를 위해 선택배지가 정형화된 치주질환 원인균인 P.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
치주질환이란? 치주질환은 치주조직의 염증과 구조의 소실을 야기시키는 질환으로 다양한 전신적 및 국소적 요인들에 의하여 발병되며, 주원인은 치면세균막 내 혐기성 세균이다. Sastri [1]는 치면세균막 내에 약 400여 세균 종들이 존재한다고 보고하였고, 현재는 특정 치주질환과 관련된 구강 내 병원성 세균간의 역학관계 및 치주질환 병소에 호발하는 세균의 분포양상에 관한 연구들이 활발히 이루어지고 있다.
단위부피당 형성된 집락 수를 측정하는 방법의 한계점은? 단위부피당 형성된 집락 수(colony forming unit, CFU)를 측정하는 방법으로 치주질환 병소부위에 존재하는 원인균을 탐색하였으나 치주질환 여부와 관계없이 원인균이 발견되지 않는 경우도 있었다. 더욱이 CFU법은 특정 목표 균을 찾거나 배양하기 위해 선택적 배지를 만들어야 하는데, 아직까지 구강 내 일부 균들에 대한 선택배지만이 정량 및 정성적으로 확인하도록 확립되었을 뿐이다[5,6].
PCR방법의 장점은? 따라서 1990년대 중반부터는 분자생물학의 발전으로 25-100개의 세균만 있어도 검출이 가능한 중합효소연쇄반응(polymerase chain reaction, PCR)이 사용되고 있다[7]. PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8]. 타액을 대상으로 PCR분석을 할 경우 타액 내에 들어있는 화합물들이 PCR 증폭에 영향을 주어 우려도 있지만[9,10], 그러한 요인을 제거하는 Chelex 100을 이용한 깨끗한 DNA를 추출하는 방법 등으로 구강 내 타액의 복잡한 환경에 의해 분석이 용이하지 못한 부분을 해소하고 있다[11].
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참고문헌 (38)

  1. Sastri A. Plaque microorganism and periodontal disease. J Dent Assoc Thai 1977;27(3):88-92. 

  2. Yun JH, Park JE, Kim DI, Lee SI, Choi SH, Cho KS, et al. Identification of putative periodontal pathogens in Korean chronic periodontitis patients. J Korean Acad Periodontol 2008;38(2):143-52. 

  3. Boutaga K, van Winkelhoff AJ, Vandenbroucke-Grauls CM, Savelkoul PH. Comparison of real-time PCR and culture for detection of Porphyromonas gingivalis in subgingival plaque samples. J Clin Microbiol 2003;41(11):4950-4. 

  4. Lovegrove JM. Dental plaque revisited: bacteria associated with periodontal disease. J N Z Soc Periodontol 2004;87:7-21. 

  5. Jang HS, Kim JY, Kook JK, You SY, Kim HS, Kim SG, et al. Comparison of the prevalence of 4 periodontopathogens in supra-and subgingival plaque of young adults without periodontitis. J Korean Acad Periodontol 2003;33(2):159-66. 

  6. Kook JK, Lim SS, You SY, Hwang HK. Antibiotic susceptibility in mutans streptococci and Stretococcus anginosus isolated from dental plaque. J Korean Acad Operative Dent 2004;29(5):462-9. 

  7. Nadkarni MA, Martin FE, Jacques NA, Hunter N. Determination of bacterial load by real-time PCR using a broad-range (universal) probe and primers set. Microbiology 2002;148(Pt 1):257-66. https://doi.org/1099/00221287-148-1-257 

  8. Kim JH, You SY, lim SA, Kook JK, Lim SS, Park SH, et al. Identification of putative pathogens in acute endodontic infections by PCR based on 16s rDNA. J Korean Acad Operative Dent 2003;28(2):178-83. 

  9. Amicosante M, Richeldi L, Trenti G, Paone G, Campa M, Bietti A, et al. Inactivation of polymerase inhibitors for mycobacterium tuberculosis DNA amplification in sputum by using capture resin. J Clin Microbiol 1995;33(3):629-30. 

  10. Johnson SR, Martin DH, Cammarata C, Morse SA. Alterations in sample preparation increase sensitivity of PCR assay for diagnosis of chancroid. J Clin Microbiol 1995;33(4):1036-8. 

  11. Matto J, et al. Detection of Porphyromonas gingivalisfrom saliva by PCR by using a simple sample-processing method. J Clin Microbiol 1998;36(1):157-60. 

  12. Kim MJ, et al. Strain-specific PCR primers for the detection of Prevotella intermedia ATCC 49046. Int J Oral Biol 2011;36(2):79-82. 

  13. Cho HB. Multiplex real time PCR for simultaneous detection of 6 periodontopathic bacteria. Korean J Microbiol 2013;9:292-6. 

  14. Horz HP, Vianna ME, Gomes BP, Conrads G. Evaluation of universal probes and primer sets for assessing total bacterial load in clinical samples: general implications and practical use in endodontic antimicrobial therapy. J Clin Microbiol 2005;43(10):5332-7. https://doi.org/10.1128/JCM.43.10.5332-5337.2005 

  15. Gouet P, Courcelle E, Stuart DI, Metoz F. ESPript: analysis of multiple sequence alignments in PostScript. Bioinformatics 1999;15(4):305-8. 

  16. Loe H, Silness J. Periodontal disease in pregnancy I. Prevalence and severity. Acta Odontol Scand 1963;21:533-51. 

  17. Kroes I, Lepp PW, Relman DA. Bacterial diversity within the human subgingival crevice. Proc Natl Acad Sci USA 1996;96(25):14547-52. 

  18. Loomer PM. Microbiological diagnostic testing in the treatment of periodontal diseases. Periodontol 2000 2004;34:49-56. 

  19. Lyons SR, Griffen AL, Leys EJ. Quantitative real-time PCR for Porphyromonas gingivalis and total bacteria. J Clin Microbiol 2000;38(6):2362-5. 

  20. Eun AJ, Seoh M, Wong S. Simultaneous quantitation of two orchid viruses by the TaqMan real-time RT-PCR. J Virol Methods 2000;87(1-2):151-60. 

  21. Maeda H, Fujimoto C, Haruki Y, Maeda T, Kokeguchi S, Petelin M. et al. Quantitative real-time PCR using TaqMan and SYBR Green for Actinobacillus actinomycetemcomitans, Porphyromonas gingivalis, Prevotella intermedia, tetQ gene and total bacteria. FEMS Immunol Med Microbiol 2003;39(1):81-6. 

  22. Park SN, Park JY, Kook JK. Development of quantitative real-time PCR primers for the detection of Aggregatibacter actinomycetemcomitans. Int J Oral Biol 2011;36(1):1-6. 

  23. Dymock D, Weightman AJ, Scully C, Wade WG. Molecular analysis of microflora associated with dentoalveolar abscesses. J Clin Microbiol 1996;34:537-42. 

  24. Park SN, Lim YK, Kook JK. Development of quantitative real-time PCR primers for detecting 42 oral bact erial species. Arch Microbiol 2013;195(7):473-82. https://doi.org/10.1007/s00203-013-0896-4 

  25. Reardon-Robinson ME, Wu C, Mishra A, Chang C, Bier N, Das A, et al. Pilus hijacking by a bacterial coaggregation factor critical for oral biofilm development. Proc Natl Acad Sci USA 2014;111(10):3835-40. https://doi.org/10.1073/pnas.1321417111 

  26. Martin FE, Nadkarni MA, Hunter N. Quantitative microbiological study of human carious dentine by culture and real-time PCR: association of anaerobes with histopathological changes in chronic pulpitis. J Clin Microbiol 2002;40(5):1698-704. 

  27. Ali RW, Bakken V, Nilsen R, Skaug N. Comparative detection frequency of 6 putative periodontal pathogens in Sudanese and Norwegian adult periodontitis patients. J Periodontol 1994;65(11):1046-52. https://doi.org/1902/jop.1994.65.11.1046 

  28. Matto J, Saarela M, Alaliisua S, Oja V, Jousimies-Somer H, Asikainen S. Detection of Porphyromonas gingivalis from Saliva by PCR by using a simple sample-processing method. J Clin Microbiol 1998;36(1):157-60. 

  29. Moncla BJ, Braham PH, Persson GR, Page GC, Weinberg A. Direct detection of Porphyromonas gingivalis in Macaca fascicularis dental plaque samples using an oligonucleotide probe. J Periodontol 1994;65(5):398-403. https://doi.org/10.1902/jop.1994.65.5.398 

  30. Rolph HJ, Lennon A, Riggio MP, Saunders WP, MacKenzie D, Coldero L, et al. Molecular identification of microorganisms from endodontic infections. J Clin Microbiol 2001;39(9):3282-9. 

  31. Ammann TW, Bostanci N, Belibasekis GN, Thurnheer T. Validation of a quantitative real-time PCR assay and comparison with fluorescence microscopy and selective agar plate counting for species-specific quantification of an in vitro subgingival biofilm model. J Periodontal Res 2013;48(4):517-26. https://doi.org/10.1111/jre.12034 

  32. Verner C, Lemaitre P, Daniel A, Giumelli B, Lakhssassi N, Sixou M. Carpegen real-time polymerase chain reaction vs. anaerobic culture for periodontal pathogen identification. Oral Microbiol Immunol 2006;21(6): 341-6. https://doi.org/10.1111/j.1399-302X.2006.00297.x 

  33. Boutaga K, van Winkelhoff AJ, Vandenbroucke-Grauls CM, Savelkoul PH. Periodontal pathogens: a quantitative comparison of anaerobic culture and real-time PCR. FEMS Immunol Med Microbiol 2005;45(2):191-9. https://doi.org/10.1016/j.femsim.2005.03.011 

  34. Yano A, Kanako N, Ida H, Yamaguchi T, Hanada N. Real-time PCR for quantification of Streptococcus mutans. FEMS microbiol lett 2002;217(1):23-30. 

  35. Jervoe-Storm PM, Koltzscher M, Falk W, Dorfler A, Jepsen S. Comparison of culture and real-time PCR for detection and quantification of five putative periodontopathogenic bacteria in subgingival plaque samples. J Clin Periodontol 2005;32(7):778-3. https://doi.org/10.1111/j.1600-051X.2005.00740.x 

  36. Moon KH, Kwon H. The influence on the recognition for periodontal care to oral micro-organism changes in dental implant patients. Int J Clin Prev Dent 2016;12(4):221-8. 

  37. Kim JB, Paik DI, Moon HS, Choi YJ, Sin SC, Kwon HK, et al. Preventive Dentistry 4ed. Seoul: Komoonsa; 2006: 85-6. 

  38. Haffajee AD, Teles RP, Socransky SS. Association of Eubacterium nodatum and Treponema denticola with human periodontitis lesions. Oral Microbiol Immunol 2006;21(5):269-82. https://doi.org/10.1111/j.1399-302X.2006.00287.x 

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