$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

지구성 훈련에 반응한 골격근의 미토콘드리아 항상성 조절
Regulation of Mitochondrial Homeostasis in Response to Endurance Exercise Training in Skeletal Muscle 원문보기

생명과학회지 = Journal of life science, v.27 no.3 = no.203, 2017년, pp.361 - 369  

주정선 (수원대학교 스포츠과학부)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

미토콘드리아의 항상성은 미토콘드리아 생합성과 마이토파지(자가포식에 의한 미토콘드리아 분해)로 불리는 2가지 주요 과정들에 의해 정교하게 조절되고 있다. 지구성 운동 훈련에 반응하여 골격근에서 미토콘드리아 생합성에 관한 기전들은 잘 정립되어 있는 반면 지구성 운동 훈련 후 골격근의 마이토파지 조절 기전과 마이토파지와 미토콘드리아 생합성의 협응을 조절하는 기전은 아직 명확히 밝혀져 있지 않다. 최근 연구들에 의하면 지구성 운동 훈련은 골격근에서 미토콘드리아 생합성, 미토콘드리아 역동성, 미토콘드리아 분해와 관련된 유전인자들의 발현을 증가시킨다고 하였다. 하지만 골격근에서 자가포식이 억제되었을 경우, 지구성 운동 훈련에 의한 미토콘드리아 생합성과 관련된 지표들인 Cox IV와 citrate synthase의 증가는 상쇄되었다. 따라서 자가포식과 마이토파지는 골격근의 미토콘드리아 생합성에 중요한 역할을 하며 정반대되는 이 두 과정(이화 또는 동화작용)의 협응 과정이 지구성 운동 훈련에 반응하여 대사적 기능과 지구력 운동 수행능력을 향상시키는 것과 같은 골격근의 적응에 중요한 듯하다. 지구성 운동은 미토콘드리아의 일정한 숫자를 유지시키기 위해 미토콘드리아 생합성, 미토콘드리아의 융합과 분열, 자가포식/마이토 파지들의 각각의 과정들을 조절하는 것으로 여겨진다. 지구성 운동 훈련은 골격근에서 마이토파지를 활성화시켜 미토콘드리아 양과 질을 조절하여 늙고 건강하지 않은 미토콘드리아를 젊고 건강한 미토콘드리아로 교체시킬 수 있다. 이 총론에서 미토콘드리아 생합성과 마이토파지의 분자학적 기전과 서로 상반되는 이 두 과정간의 협응이 골격근의 지구성 훈련에 대한 세포적 적응에 관련한다는 내용이 논의될 것이다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Mitochondrial homeostasis is tightly regulated by two major processes: mitochondrial biogenesis and mitochondrial degradation by autophagy (mitophagy). Research in mitochondrial biogenesis in skeletal muscle in response to endurance exercise training has been well established, while the mechanisms r...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • 현재 지구성 운동 훈련으로 유도된 전사(transcription) 조 절을 통한 미토콘드리아 생합성을 증가시키는 기전은 상당히 확립되어 있지만 지구성 운동 훈련이 미토콘드리아 생합성과 상반된 작용인 마이토파지에 미치는 영향, 그리고 그와 관련 된 기전과 신호 시스템에 대한 연구는 최근에 와서 보고되기 시작하였다. 본 리뷰에서 저자는 현재까지 연구된 지구성 운 동이 미토콘드리아 생합성, 미토콘드리아 역동성과 마이토파 지에 미치는 영향과 이에 관련된 신호 기전들에 초점을 맞추 었으며 지구성 운동 훈련에 의해 적응된 골격근에서 이러한 과정들이 어떻게 상호 작용하고 협업하여 미토콘드리아의 양 적 그리고 질적 균형을 유지시키는 가를 논의하고자 한다. 신 체구성에 대한 정보는 매우 다양한 차원으로 나타나는 관련성 으로 인하여 많은 분야의 관심대상이 되고 있다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
신체적 비활동이 인체에 미치는 부정적 영향은 무엇인가? 운동 훈련은 심혈관계, 신경 내분비계, 호흡계, 근골격계를 포함한 대부분의 조직에서 긍 정적인 영향을 미치는 것으로 알려져 있다. 신체적 비활동은 관상동맥 질환, 뇌졸증, 제2형 당뇨, 골다공증, 몇 가지 암과 같은 만성질환의 발병률을 상대적으로 증가시키며 노인들의 낙상, 우울증, 불안, 비만을 증가시킨다[31]. 반면, 규칙적인 운 동은 이전부터 갖고 있는 여러 질환을 완화시키고 진전을 늦 출 수 있다.
지구성 운동 훈련은 무엇을 측정한 결과 미토콘드리아의 양을 증가시킨다고 할 수 있는가? 지구성 운동 훈련을 통한 적응에 대한 기전을 이해하기 위해 연구자들의 많은 노 력이 미토콘드리아의 생합성(mitochondrial biogenesis)에 집 중되어 왔다. 지구성 운동 훈련은 미토콘드리아의 질량을 나 타내주는 지표들(e.g., cytochrome c oxidase-IV, Cox IV)의 발 현, 미토콘드리아 효소 활동(e.g., citrate synthase, CS) 그리고 전신 최대산소섭취량의 측정을 통해 본 결과 미토콘드리아의 양을 증가시킨다고 오랫동안 인식되어 왔다[34]. 지구성 훈련 에 의한 미토콘드리아 생합성은 peroxisome proliferator- activated receptor gamma co-activator alpha (PGC-1a)라는 전사 보조인자의 활동에 의해 촉진된다.
규칙적인 운 동을 통해 완화시키고 진전을 늦출 수 있는 질환은 무엇인가? 반면, 규칙적인 운 동은 이전부터 갖고 있는 여러 질환을 완화시키고 진전을 늦 출 수 있다. 예를 들어, 체지방량의 감소, 혈당조절 향상, 비만 자의 산소섭취량 증가, 대사증후군, 제2형 당뇨, 심장 질환 등 이 포함된다. 지구성 운동 훈련은 유익한 적응 과정을 통해 운동수행능력을 증가시킬 수 있다.
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (34)

  1. Chalkiadaki, A, Igarashi, M, Nasamu, A. S, Knezevic, J. and Guarente, L. 2014. Muscle-specific SIRT1 gain-of-function increases slow-twitch fibers and ameliorates pathophysiology in a mouse model of Duchenne muscular dystrophy. PLoS Genet. 10, e1004490. 

  2. Chan, D. C. 2012. Fusion and fission: interlinked processes critical for mitochondrial health. Annu. Rev. Genet. 46, 265-287. 

  3. Davies, S. P., Helps, N. R., Cohen, P. T. and Hardie, D. G. 1995. 5'-AMPK inhibits dephosphorylation, as well as promoting phosphorylation, of the AMPK-activated protein kinase: studies using bacterially expressed human protein phosphatase-2C alpha and native bovine protein phosphatase-2AC. FEBS Lett. 377, 421-425. 

  4. Drake, J. C., Wilson, R. J. and Yan, Z. 2016. Molecular mechanisms for mitochondrial adaptation to exercise training in skeletal muscle. FASEB J. 30, 13-22. 

  5. Geisler, S., Holmstrom, K. M., Skujat, D., Fiesel, F. C. and Rothfuss, O. C., et al. 2010. PINK1/Parkin-mediated mitophagy is dependent on VDAC1 and p62/SQSTM1. Nat. Cell Biol. 12, 119-131. 

  6. Gerhart-Hines, Z., Rodgers, J. T., Bare, O., Lerin, C. and Kim, S. H., et al. 2007. Metabolic control of muscle mitochondrial function and fatty acid oxidation through SIRT1/PGC-1alpha. EMBO J. 26, 1913-1923. 

  7. Goldman, S. J., Taylor, R., Zhang, Y. and Jin, S. 2010. Autophagy and the degradation of mitochondria. Mitochondrion 10, 309-315. 

  8. Gomes, L. C., Di Benedetto, G. and Scorrano, L. 2011. During autophagy mitochondrial elongate, are spared from degradation and sustain cell viability. Nat. Cell Biol. 13, 589-598. 

  9. Hanna, R. A., Quinsay, M. N., Orogo, A. M., Giang, K. and Rikka, S., et al. 2012. Microtubule-associated protein 1 light chain 3 (LC3) interacts with Bnip3 protein to selectively remove endoplasmic reticulum and mitochondria via autophagy. J. Biol. Chem. 287, 19094-19104. 

  10. Irrcher, I., Liubicic, V. and Hood, D. A. 2009. Interactions between ROS and AMP kinase activity in the regulation of PGC-1alpha transcription in skeletal muscle cells. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 296, C116-123. 

  11. Jin, S. M., Lazarou, M., Wang, C., Kane, L. A. and Narendra, D. P., et al. 2010. Mitochondrial membrane potential regulates PINK1 import and proteolytic destabilization by PARL. J. Cell Biol. 191, 933-942. 

  12. Ju, J. S., Jeon, S. I., Park, J. Y., Lee, J. Y. and Lee, S. C., et al. 2016. Autophagy plays a role in skeletal muscle mitochondrial biogenesis in an endurance exercise-trained condition. J. Physiol. Sci. 66, 417-430. 

  13. Klionsky, D. J. 2007. Autophagy: from phenomenology to molecular understanding in less than a decade. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 8, 931-937. 

  14. Konopka, A. R., Suer, M. K., Wolff, C. A. and Harber, M. P. 2014. Markers of human skeletal muscle mitochondrial biogenesis and quality control: effects of age and aerobic exercise training. J. Gerontol. A. Biol. Sci. Med. Sci. 69, 371-378. 

  15. Levine, B. and Klionsky, D. J. 2004. Development by self-digestion: molecular mechanisms and biological functions of autophagy. Dev. Cell. 6, 463-477. 

  16. Lira, V. A., Okutsu, M., Zhang, M., Greene, N. P. and Laker, R. C, et al. 2013. Autophagy is required for exercise training-induced skeletal muscle adaptation and improvement of physical performance. FASEB J. 27, 4184-4193. 

  17. Little, J. P., Safdar, A., Benton, C. R. and Wright, D.C. 2011. Skeletal muscle and beyond: the role of exercise as mediator of systemic mitochondrial biogenesis. Appl. Physiol. Nutr. Metab. 36, 598-607. 

  18. Masiero, E., Agatea, L., Mammucari, C., Blaauw, B. and Loro, E., et al. 2009. Autophagy is required to maintain muscle mass. Cell Metab. 10, 507-515. 

  19. McConell, G. K., Ng, G. P., Phillips, M., Ruan, Z. and Macaulay, S. L., et al. 2010. Central role of nitric oxide synthase in AICAR and caffeine-induced mitochondrial biogenesis in L6 myocytes. J. App.l Physiol. 108, 589-595. 

  20. Menzies, K. J., Singh, K., Saleem, A. and Hood, D. A. 2013. Sirtuin 1-mediated effects of exercise and resveratrol on mitochondrial biogenesis. J. Biol. Chem. 288, 6968-6979. 

  21. Mizushima, N., Ohsumi, Y. and Yoshimori, T. 2002. Autophagosome formation in mammalian cells. Cell Struct. Funct. 27, 421-429. 

  22. Palikaras, K. and Tavernarakis, N. 2014. Mitochondrial homeostasis: the interplay between mitophagy and mitochondrial biogenesis. Exp. Geront. 56, 182-188. 

  23. Perry, C. G., Lally, J., Holloway, G. P. and Heigenhauser, G. J., et al. 2010. Repeated transient mRNA bursts precede increases in transcriptional and mitochondrial proteins during training in human skeletal muscle. J. Physiol. 588, 4795-4810. 

  24. Pilegaard, H., Saltin, B. and Neufer, P. D. 2003. Exercise induces transient transcriptional activation of the PGC-1 alpha gene in human skeletal muscle. J. Physiol. 546, 851-858. 

  25. Puigserver, P., Adelmant, G., Wu, Z., Fan, M. and Xu, J., et al. 1999. Activation of PPARgamma coactivator-1 through transcription factor docking. Science 286, 1368-1371. 

  26. Ravikumar, B., Sarkar, S., Davies, J. E., Futter, M. and Garcia-Arencibia, M., et al. 2010. Regulation of mammalian autophagy in physiology and pathophysiology. Physiol. Rev. 90, 1383-1435. 

  27. Safdar, A., Little, J. P., Stokl, A. J., Hettinga, B. P. and Akhtar, M., et al. 2011. Exercise increases mitochondrial PGC-1alpha content and promotes nuclear-mitochondrial cross-talk to coordinate mitochondrial biogenesis. J. Biol. Chem. 286, 10605-10617. 

  28. Tam, B. T., Pei, X. M., Yu, A. P., Sin, T. K. and Leung, K. K., et al. 2015. Autophagic adaptation is associated with exercise-induced fibre-type shifting in skeletal muscle. Acta. Physiol. 214, 221-236. 

  29. Twig, G., Elorza, A., Molina, A. J., Mohamed, H. and Wikstrom, J. D., et al. 2008. Fission and selective fusion govern mitochondrial segregation and elimination by autophagy. EMBO 27, 433-446. 

  30. Vainshtein, A. and Hood, D. A. 2016. The regulation of autophagy during exercise in skeletal muscle. J. Appl. Physiol. 120, 664-673. 

  31. Warburton, D. E., Nicol, C. W. and Bredin, S. S. 2006. Health benefits of physical activity: the evidence. CM AJ. 174, 801-809. 

  32. Wright, D. C., Han, D. H., Garcia-Roves, P. M., Geiger, P. C. and Jones, E. T., et al. 2007. Exercise-induced mitochondrial biogenesis begins before the increase in muscle PGC-1alpha expression. J. Biol. Chem. 282, 194-199. 

  33. Xiao, B., Heath, R., Saiu, P., Leiper, F. C. and Leone, P., et al. 2007. Structural basis for AMP binding to mammalian AMP-activated protein kinase. Nature 449, 496-500. 

  34. Yan, Z., Lira, V. A. and Greene, N. P. 2012. Exercise training-induced regulation of mitochondrial quality. Exerc. Sport Sci. Rev. 40, 159-164. 

저자의 다른 논문 :

LOADING...

관련 콘텐츠

오픈액세스(OA) 유형

GOLD

오픈액세스 학술지에 출판된 논문

저작권 관리 안내
섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로