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초록
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서양종 꿀벌의 일벌의 독을 채취하여 정제한 정제봉독에 대한 세균에서의 돌연변이 유발성 검색을 위하여 S. typhimurium의 히스티딘 요구성 균주 TA100, TA1535, TA98, 그리고 TA1537의 균주와 대장균 E. coli의 트립토판 요구성 균주인 WP2 uvrA를 이용해 복귀돌연변이시험을 실시하였다. 정제봉독은 부형제로 사용한 멸균생리식염수에 용해되었으며 모든 농도군의 조제물에서 침전은 관찰되지 않았으며, 정제봉독 조제물을 top agar와 혼합할 때 모든 농도군에서 혼탁이나 침전이 관찰되지 않았다. 대사활성계 적용 TA100, TA1535, TA98 균주에 대해 0, 1.5, 5, 15, 50, 150 및 500 µg/plate의 범위를 설정하고 미 적용시엔 0, 0.15, 0.5, 1.5, 5, 15 및 $500{\mu}g/plate$의 범위로 설정하였다. TA1537과 WP2 uvrA균주에 대한 농도 범위은 대사활성계 적용시엔 0, 5, 15, 50, 150, 500 및 1,500를 미 적용시엔 0, 1.5, 5, 15, 50, 150 및 500 µg/plate 범위로 설정하여 시험을 수행하였다. 그 결과 모든 시험균주에서 대사활성계 적용 여부에 상관없이 정제봉독 처리군의 평균 집락 수는 증가를 나타내지 않았으며, 양성판정 기준을 만족시키지 못하였다. 따라서, 정제봉독은 본 시험조건 하에 사용한 시험 균주에 복귀돌연변이를 유발하지 않는 것으로 사료되었다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

The aim of the current study was to examine genotoxicological safety of purified bee venom (Apis mellifera L.) The bacterial reverse mutation in Salmonella typhimurium (TA100, TA1535, TA98, and TA1537) and Escherichia coli (WP2 uvrA) were evaluated with purified bee venom at concentrations of 0, 1.5...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 그러나 아직까지 정제봉독은 식품의약품안전처의 식품원료로서 등재되지 않아 식용은 물론 정제봉독을 함유한 첨가제, 가축 사료 등으로 개발하는데 제약을 받고 있는 실정이다. 따라서 본 연구는 민간에서 복용하고 있으며 선진국에서도 식용으로 허락된 정제봉독을 식품원료로서 등록하기 위하여 필요한 안전성 시험을 수행하고자 하였다.
  • 그러나 국내에서는 봉독이 식품 원료로서 등록되어 있지 않아 식품 또는 식품첨가물로 개발되지 못하고 있는 실정이다. 따라서 본 연구에서는 봉독 채집 장치를 사용하여 채집된 봉독을 정제한 정제봉독의 식용을 위하여 식품의약품안전처의 새로운 식품원료의 안전성 평가 가이드라인13,14)에 따라 유전독성평가의 하나인 복귀돌연변이시험을 수행함으로써 정제봉독의 식품원료로서의 안전성 여부를 평가하고자 하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
멜리틴(melittin)의 효능은? 서양종꿀벌(Apis mellifera L.) 일벌의 독인 봉독은 다양한 성분이 복합적으로 구성되어있으며, 주 성분인 멜리틴(melittin)은 항염증과3,4) 항균작용5), 강력한 진통작용6), 면역증강7) 등의 역할을 한다고 알려져 있다. 우리나라에서는 봉독 채집 장치가 개발되기 전까지는 살아있는 벌을 이용하는 봉침요법으로 사람이나 가축에 직접 벌의 침을 쏘기 때문에 피부에 벌침이 박혀 내장이 분리되어 꿀벌은 죽게 된다.
봉독은 무엇인가? 고대부터 봉독은 순수 천연물질이면서 강력한 항균, 항염증 효과를 갖고 있으며 부작용과 잔류에 대한 위험성이 적어 봉침요법으로 민간과 한방에서 관절염, 통풍 등의 질환에 사용되어 오고 있다1,2). 서양종꿀벌(Apis mellifera L.) 일벌의 독인 봉독은 다양한 성분이 복합적으로 구성되어있으며, 주 성분인 멜리틴(melittin)은 항염증과3,4) 항균작용5), 강력한 진통작용6), 면역증강7) 등의 역할을 한다고 알려져 있다. 우리나라에서는 봉독 채집 장치가 개발되기 전까지는 살아있는 벌을 이용하는 봉침요법으로 사람이나 가축에 직접 벌의 침을 쏘기 때문에 피부에 벌침이 박혀 내장이 분리되어 꿀벌은 죽게 된다.
국내 봉침요법이 산업화되지 못한 실증적 이유는 무엇인가? 우리나라에서는 봉독 채집 장치가 개발되기 전까지는 살아있는 벌을 이용하는 봉침요법으로 사람이나 가축에 직접 벌의 침을 쏘기 때문에 피부에 벌침이 박혀 내장이 분리되어 꿀벌은 죽게 된다. 무엇보다도 봉독의 정량·정성 분석이 불가능하기 때문에 효능과 안정성이 임상적으로 입증 되었음에도 불구하고 산업화 되지 못했다. 2005년 본 연구팀에서 봉독 채집 장치를 개발함에 따라 국내에서도 봉독 채집이 가능하게 되었으며, 채집과정에서 혼입된 흙이나 먼지 등과 같은 이물질을 제거한 순수 정제봉독이 시판 판매됨으로써 다양한 실용화 소재로서 사용하게 되었다8).
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참고문헌 (19)

  1. Bogdanov, S.: Bee Venom: Composition, Health, Medicine: A Review. Bee Products Science. April 2016, www.beehexagon.net. (2016). 

  2. Kim, H.W., Kwon, Y.B., Ham, T.W., Roh, D.H., Yoon, S.Y., Lee, H. J., Han, H.J., Yang, I.S., Beitz, A.J., Lee, J.J.: Acupoint stimulation using bee venom attenuates formalininduced pain behavior and spinal cord fos expression in rats. J. Vet. Med. Sci. 65, 349-355 (2003). 

  3. Piek, T.: Venoms of the Hymenoptera. London, Academic Press (1986). 

  4. Habermann, E., Reiz, K.G.: On the biochemistry of bee venom pep-tides, melittin and apamin. Biochemistry 343, 192-203 (1965). 

  5. Fennell, J.F., Shipman, W.H., Cole, L.J.: Antibacterial action of a bee venom fraction(melittin) against a penicillin-resistant Staphylococcus and other microorganisms. Res. Dev. Tech. Rep. 5, 1-13 (1967). 

  6. Curcio-Vonlanthen, V., Schneider, C.H., Frutig, K., Blaser, K.H., Kalbacher, H.: Molecular parameters in melittin immunogenicity. J. Pept. Sci. 3, 267-276 (1997). 

  7. Rudenko, S.V., Nipot, E.E.: Modulation of melittin-induced hemolysis of erythocytes. Biokhimiia. 61, 2116-2124 (1996). 

  8. Han, S.M., Lee, G.K., Yeo, J.H., Woo, S.O., Kweon, H.Y.: A simplified purificating method of bee venom. 10-075881. Patent. Korea (2007). 

  9. Lee, W.R., Pak, S.C., Park, K.K.: The protective effect of bee venom on fibrosis causing inflammatory diseases. Toxins. 16, 4758-4772 (2015). 

  10. Maurice N, Deltheil T, Melon C, Degos B, Mourre C, Amalric M, Kerkerian-Le Goff L.: Bee Venom Alleviates Motor Deficits and Modulates the Transfer of Cortical Information through the Basal Ganglia in Rat Models of Parkinson's Disease. PLoS One. 16, e0142838 (2015). 

  11. Park, S., Erdogan, S., Hwang, D., Hwang, S., Han, E.H., Lim, Y.H.: Bee Venom Promotes Hair Growth in Association with Inhibiting $5{\alpha}$ -Reductase Expression. Biol Pharm Bull. 39, 1060-1068 (2016). 

  12. Yoirishm, N.: Curative properties of honey and bee venom. University press of the Pacific Honolulu, Hawaii, pp. 144-171 (2001). 

  13. KFDS: Good Laboratory Practice, Osong, Korea (2014). 

  14. KFDS: Guideline of toxicological testing for drugs, Osong, Korea (2014). 

  15. Basic Mutagenicity Tests: UKEMS Recommended Procedures, Edited by David J. Kirkland, Cambridge University Press, ISBN 0-521-39347-7 (1990). 

  16. Maron, D.M., Ames, B.N.: Revised methods for the Salmonella mutagenicity test. Mutat. Res. 113, 173-215 (1983). 

  17. Green, M.H.L., Muriel, W.J.: Mutagen testing using $trp^+$ reversion in Escherichia coli., Mutat. Res. 38, 3-32 (1976). 

  18. Han, S.M., Lee, K.G., Yeo, J.H., Pak, S.C.: Dermal and ocular irritation studies of honeybee (Apis mellifera L.) venom. Am. J. Chin. Med. 40, 795-800 (2012). 

  19. Han, S.M., Hong, I.P., Woo, S.K., Kim, S.G., Jang, H.R.: Antigenicity of Purified Bee Venom Gel from Honeybee (Apis mellifera L.) in Guinea Pigs. Yakhak Hoeji. 60, 53-57 (2016). 

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