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팽이버섯 (Flammulina velutipes) 계통의 분류를 위한 SSR 마커개발
Development of SSR markers for classification of Flammulina velutipes strains 원문보기

Journal of mushrooms = 한국버섯학회지, v.15 no.2, 2017년, pp.78 - 83  

우성이 (농촌진흥청 국립원예특작과학원 버섯과) ,  서경인 (국립종자원) ,  장갑열 (농촌진흥청 국립원예특작과학원 버섯과) ,  공원식 (농촌진흥청 국립원예특작과학원 버섯과)

초록
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버섯과에서 한국, 중국, 일본에서 재배 또는 수집하여 농촌진흥청에 보관 중인 32개의 팽이버섯 계통에 대하여 조사하였다. 팽이버섯의 미소반복서열(microsatellite)을 포함하고 있는 490개의 DNA 단편을 얻었다. 다양한 팽이버섯 균들의 PCR을 통한 DNA 프로파일링을 수행함으로써 다형성 변이가 많이 검출되었다. 총 34개의 대립 유전자가 12개의 다형성 SSR 마커 중에서 검출되었고, 평균 3.42개의 대립 유전자와 대립 유전자의 수는 유전자좌당 2개에서 7개까지 분포하였다. 대립 형질 빈도는 0.42(GB-FV-127)에서 0.98(GB-FV-166)이었으며 이형접합체 관측치($H_O$)와 기대치($H_E$)는 각각 0.00에서 0.94(평균 = 0.18)와 0.03에서 0.67(평균 = 0.32)이었다. 다형성 지수는 (PIC) GB-FV-127 마커에서 가장 높은 0.61, 평균대립 유전자 수는 5를 나타내었고, GB-FV-166마커에서 0.03과 2로 가장 낮았다. 본 연구에서 평균 PIC 값(0.29)은 대립 유전자의 평균 수(3.42)로 관찰되었다. 결론적으로 우리는 풍부한 SSR 라이브러리에서 12 개의 다형성 SSR 마커를 개발하는데 성공했다. 이러한 SSR은 계통 발생 분석, 유전적 변이 평가에 중요하게 사용될 것이다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Microsatellite SSR markers were developed and utilized to reveal the genetic diversity of 32 strains of Flammulina velutipes collected in Korea, China, and Japan. From the SSR-enriched library, 490 white colonies were randomly selected and sequenced. Among the 490 sequenced clones, 85 (17.35%) were ...

주제어

AI 본문요약
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* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

제안 방법

  • gDNA 500 ng을 각 제한효소 제조사의 지침에 따라 EcoRV, DraI, SmaI, PvuI, AluI, HaeIII 및 RsaI로 절단하였다. 절단된 DNA를 1.
  • 각각 다른 형광물질로 증폭된 PCR 산물 단편의 크기를 분석하기 위해 자동 염기서열 분석 장치 (ABI 3130 Genetic Analyzer, Applied Biosystems, 미국)를 이용하였다. 분석을 위하여, PCR 산물 1.
  • 이 디자인된 프라이머쌍 중에서 팽이 균주에서 다형성변이를 많이 나타내는 SSR 프라이머 조합을 선발하기 위하여, 팽이균주에 대하여 PCR을 통한 DNA profiling 분석을 수행하였다.
  • 팽이버섯 32계통을 사용하여 biotin-streptavidin capture(Dixit et al., 2005) 방법으로 SSR 마커를 개발하였다. 팽이버섯의 미소반복서열(microsatellite)를 포함하고 있는490개의 DNA 단편을 얻었다.
  • 팽이버섯 수집 균주들 간의 계통분석은 SSR 데이터에 근거한 32개 균주 간의 유전적 거리를 기초하여 10,000 bootstraps 반복에 의해 UPGMA 클러스터 분석에 의해 생성되었다(Fig. 1).

대상 데이터

  • 공시균주에는 한국, 중국, 일본에서 재배 또는 수집하여 농촌진흥청에 보관 중인 32개의 팽이버섯 계통에 대하여 조사하였다 (Table 1). 팽이버섯의 gDNA의 추출은 DNA extraction kit (Mag Extractor, Toyobo, Osaka, Japan)를 이용하여 수행하였다.
  • 반복 유닛을 포함하는 부분을 기준으로 하여 미소반복서열을 증폭할 수 있었다. 또한 염기서열은 Primer3 프로그램(http://frodo.wi.mit.edu/cgi_bin/primer3/primer3_www.cgi)를 사용하여 제작하였고 총 201쌍의 프라이머쌍을 디자인하였다.
  • 버섯과에서 한국, 중국, 일본에서 재배 또는 수집하여 농촌진흥청에 보관 중인 32개의 팽이버섯 계통에 대하여 조사하였다. 팽이버섯의 미소반복서열(microsatellite)을 포함하고 있는 490개의 DNA 단편을 얻었다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
우리나라 재배농가에서 사용하는 팽이버섯 품종의 특징은 무엇인가? , 2002). 우리나라 재배농가에서 사용하는 팽이버섯 품종은 주로 일본에서 개발된 백색 품종을 도입하여 재배조건에 적합한 계통을 선발하여 사용해왔다. 현재 세계적으로 재배되는 대부분의 백색팽이버섯은 유연관계가 매우 가까워서 외국품종에 대한 로열티문제가 대두될 가능성이 많다(Kitamoto et al.
현재 세계적으로 재배되는 대부분의 백색팽이버섯의 문제점은 무엇인가? 우리나라 재배농가에서 사용하는 팽이버섯 품종은 주로 일본에서 개발된 백색 품종을 도입하여 재배조건에 적합한 계통을 선발하여 사용해왔다. 현재 세계적으로 재배되는 대부분의 백색팽이버섯은 유연관계가 매우 가까워서 외국품종에 대한 로열티문제가 대두될 가능성이 많다(Kitamoto et al., 1993).
분자생물학적 분류 방법 중 simple sequence repeat 방법이 선호도가 높은 이유는 무엇인가? , 2013). 이들 중에서도 SSR을 이용하여 계통별 유전적 다양성 분석은 분자마커들 중 재현성이 가장 높고 분석이 비교적 쉬우며 간편하기 때문에 선호도가 높다. 특히 다양한 개체군에서 상동영역을 증폭할 수 있다는 장점을 지니고 있다(Wheeler et al.
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참고문헌 (14)

  1. Beacham TD, Pollard S, Le KD. 2000. Microsatellite DNA population structure and stock identification of steelhead trout (Oncorhynchus mykiss) in the Nass and Skeena Rivers in Northern British Columbia. Mar Biotechnol. 2:587-600. 

  2. Chiang TY, Lee TW, Lin FJ, Huang KH, Lin HD. 2008. Isolation and characterization of microsatellite loci in the endangered freshwater fish Varicorhinus alticorpus (Cyprinidae). Conserv Gen. 9:1399-1401. 

  3. Frankham R, Ballou JD, Briscoe DA. 2002. Introduction to conservation genetics. Cambridge University Press. pp. 45-96. 

  4. Jo IH, Bang KH, Kim YC, Kim JU, Shin MR, Moon JY, Noh BS, Hyun DY, Kim DH, Cha SW, Kim HS. 2013. Analysis of mitochondrial DNA sequence and molecular marker development for identification of Panca species. Kor J Med Crop Sci. 21:91-96. 

  5. Kim JH, Seo JW, Byeon JH, Ahn YS, Cha SW, Cho JH. 2014. Morphological characteristics and phylogenetic analysis of Polygonalum species based on chloroplast DNA sequences. Kor J Med Crop Sci. 22:489-496. 

  6. Kitamoto Y, Nakamata M, Masuda P. 1993. Production of a novel white Flammulina velutipes by breeding. Genetics and Breeding of Edible Mushrooms. Gordon and Breach Science Publishers. pp.65-86. 

  7. Koizumi N, Jinguji H, Takahashi H, Higuchi M, Takata K, Minezawa M, Takemura T, Mori A, 2007. Isolation and characterization of polymorphic microsatellite DNA markers in the Omono type of ninespine stickleback, genus Pungitius. Mol Ecol Res. 7:1315-1318. 

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  11. Smith CT, Koop BF and Nelson RJ, 1998. Isolation and characterization of coho salmon (Oncorhynchus kisutch) microsatellites and their use in other salmonids. Mol Ecol. 7: 1613-1621. 

  12. Sunnucks P. 2000. Efficient genetic markers for population biology. Trend Ecol Evol. 15: 199-203. 

  13. Wheeler GL, Dorman HE, Buchanan A, Challagundla L and Wallace LE. 2014. A review of the prevalence, utility, and caveats of using chloroplast simple sequence repeats for studies of plant biology. Appl Plant Sci. 2:2168-0450. 

  14. Williams JG, Kubelik AR, Livak KJ, Rafalski JA, Tingey SV. 1990. DNA polymorphisms amplified by arbitrary primers are useful as genetic markers. Nuc Acid Res. 18:6531-6536. 

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