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초록
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고사리(Pteridium aquilinum)의 4가지 분획물(n-헥산, 클로로포름, 아세트산에틸 및 증류수)의 총 페놀 함량은 아세트산에틸 분획물이 265.08 mg GAE/g으로 가장 높게 나타났으며, 라디칼 소거활성 및 지질 과산화 생성 억제효과 결과 또한 아세트산에틸 분획물의 활성이 가장 높게 나타났다. 고사리의 아세트산에틸 분획물은 알파-글루코시데이스에 대하여 뛰어난 억제활성($IC_{50}=205.26{\mu}g/mL$)을 나타내었으며, 억제 형태는 혼합형 제해 특성임을 확인하였다. 또한, PC12 신경세포에서의 고농도 포도당으로 유도된 산화적 스트레스에 대한 고사리 아세트산에틸 분획물은 세포 내 ROS 생성을 억제시키고, 세포 생존율을 증가 및 세포막 손상에 대한 보호효과를 나타내었다. 고사리 아세트산에틸 분획물의 주요 페놀성 화합물을 HPLC로 분석한 결과는 켐페롤-3-글루코사이드인 것으로 나타났다. 본 연구 결과를 종합해볼 때, 주요 페놀성 물질로서의 켐페롤-3-글루코사이드을 함유한 고사리 아세트산에틸 분획물은 소장 내 알파-글루코시데이스를 억제를 통한 혈당 강하 효과뿐만 아니라, 고농도 포도당으로 발생되는 산화적 스트레스에 대한 억제효과를 통하여 신경세포 사멸에 대한 효과적인 개선 효과를 갖는 고부가가치 자연 소재로의 활용가치가 높다고 판단된다.

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The protective effect of Pteridium aquilinum on high glucose-induced cytotoxicity was examined in vitro to investigate the relationship between diabetic condition and neuronal dysfunction. The ethyl acetate fraction of P. aquilinum (EFPA), with total phenolic content of 265.08 mg gallic acid equival...

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문제 정의

  • 특히, 플라보노이드 계열의 물질들에 대한 항산화 활성에 대한 연구 및 단백다당류의 면역 활성에 관한 연구들이 주를 이루어 진행되고 있으며, 항당뇨에 대한 생리활성연구는 아직 부족한 실정이다(10-12). 따라서 본 연구는 고사리를 활용하여 알파 글루코시데이스 억제효과 및 고농도 포도당으로 유도된 산화적 스트레스에 의한 신경세포 보호 효과를 확인하고, 고사리에 존재하는 주요 생리활성 물질의 분석을 통하여, 자연 자원 유래 기능성 식품 소재로서의 활용 가능성을 연구하고자 하였다.
  • 그렇기 때문에 지질 과산화물을 측정하는 것은 단백질 손상 등의 척도뿐만 아니라 신경세포 손상의 척도로도 판단될 수 있다(23). 따라서 본 연구에서는 마우스 뇌 신경세포막으로부터 추출한 지질성분에 대한 지질 과산화 중간생성물인 MDA 생성 억제효과를 측정함으로써 고사리의 지질과산화 생성 억제효과를 살펴보았다(Fig. 3). 고사리 모든 분획물에서 뛰어난 지질 과산화 억제 효과를 나타냈으며, 농도 500 μg/mL에서 n-헥산 분획물(76.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
당뇨병 환자 치료를 위해 사용하는 혈당 강하제는 무엇인가? 그렇기 때문에 혈당 상승으로 유발될 수 있는 다양한 합병증들의 예방을 위하여 산소유리기와 같은 산화적 스트레스를 제거를 위한 항산화 물질을 섭취하는 것도 매우 중요한 것으로 알려져 있다(3,6). 현재 혈당 강하제로 사용 되고 있는 알파 글루코시데이스(α-glucosidase) 억제제(acarbose, migiltol 등) 또는 인슐린 감수성 촉진 약제(metformin, thiazolidinedione 등)가 사용되고 있으며, 젖산축적, 신부전증, 간 독성과 같은 부작용을 나타냄에 따라 보다 안전하고 뛰어난 효과를 나타낼 수 있는 자연물 소재로부터의 연구가 요구되고 있는 실정이다(1,7,8).
당뇨병은 무엇인가? 당뇨병은 고혈당을 수반하는 질환으로써, 인슐린의 합성 억제나 저항성에 의하여 발생되는 탄수화물 대사장애로 알려져 있다(1). 포도당은 포유동물의 뇌가 정상적인 기능을 유지하기 위한 필수적인 에너지원이지만(2), 과도한 포도당은 체내에서 알데하이드(aldehyde)기를 쉽게 카복실(carboxyl)기로 산화시키고, 이러한 당들은 자동산화(autoxidation)나 단백질당화(protein glycosylation) 반응에 의하여 superoxide (O2-), 과산화수소(hydrogen peroxide,H2O2)와 같은 반응성이 높은 활성산소종(reactive oxygen species,ROS) 생성을 증가시키는 것으로 알려져 있다(3).
고사리의 대표적 생리활성물질은 무엇인가? 고사리(Pteridium aquilinum)는 열대 지방에서부터 온대 지방에 이르기까지 전세계적으로 분포되어 있는 가장 흔한 식물 중 하나로 우리나라에서는 제주도뿐만 아니라 경남 남해, 전북 남원,강원도 고성 등 널리 재배 되고 있다(9,10). 고사리의 대표적인 생리활성을 나타내는 물질로는 플라보노이드(flavonoids), 테페노이드(terpenoids), 스테로이드(steroids), 프테로신(pterosins) A 및 B와 같은 물질들이 보고되어 있다(6). 특히, 플라보노이드 계열의 물질들에 대한 항산화 활성에 대한 연구 및 단백다당류의 면역 활성에 관한 연구들이 주를 이루어 진행되고 있으며, 항당뇨에 대한 생리활성연구는 아직 부족한 실정이다(10-12).
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참고문헌 (27)

  1. Park KJ, Oh YJ, Lee SY, Kim HS, Ha HC. Anti-diabetic Effect of crude polysaccharides from Grifola frondosa in KK-Ay diabetic mouse and 3T3-L1 adipocyte. Korean J. Food Sci. Technol. 39: 330-335 (2007) 

  2. Hoyer S. Brain glucose and energy metabolism abnormalities in sporadic Alzheimer disease. Causes and consequences: An update. Exp. Gerontol. 35: 1363-1372 (2000) 

  3. Lee YJ, Suh KS, Choi MC, Chon S, Oh S, Woo JT, Kim SW, Kim JW, Kim YS. Kaempferol protects HIT-T15 pancreatic beta cells from 2-deoxy-D-ribose-induced oxidative damage. Phytother. Res. 24: 419-423 (2010) 

  4. Baynes W. Chemical modification of proteins by lipids in diabetes. Clin. Chem. Lab. Med. 41: 1159-1165 (2003) 

  5. Yan LM, Velkova A, Tatarek-Nossol M, Andreetto E, Kapurniotu A. APP mimic blocks $A{\beta}$ cytotoxic self-assembly: Cross-suppression of amyloid toxicity of $A{\beta}$ and IAPP suggests a molecular link between Alzheimer's disease and typeII diabetes. Angew. Chem. Int. Edit. 46: 1246-1252 (2007) 

  6. Ryu S, Yoon JT. Effects of green-tea polyphenol ingestion before exercise on antioxidative defense system in streptozotocin-induced diabetic rats. J. Exerc. Nutr. Biochem. 6: 271-276 (2002) 

  7. Peng X, Zhang G, Liao Y, Gong D. Inhibitory kinetics and mechanism of kaempferol on ${\alpha}$ -glucosidase. Food Chem. 190: 207-215 (2016) 

  8. Si MM, Lou JS, Zhou CX, Shen JN, Wu HH, Yang B, He QJ, Wu HS. Insulin releasing and alpha-glucosidase inhibitory activity of ethyl acetate fraction of Acorus calamus in vitro and in vivo. J. Ethnopharmacol. 128: 154-159 (2010) 

  9. Yi MR. Lim SB. Antioxidative and anti-inflammatory activities of Pteridium aquilinum in LPS-stimulated RAW 264.7 cells. J. Agric. Life Sci. 49: 209-219 (2015) 

  10. Xu W, Zhang FF, Luo YB, Ma L, Kou XH, Huang K. Antioxidant activity of a water-soluble polysaccharide purified from Pteridium aquilinum. Carbohydr. Res. 344: 217-222 (2009) 

  11. Calabrese V, Cornelius C, Leso V, Trovato-Salinaro A, Ventimiglia B, Cavallaro M, Scuto M, Rizza S, Zanoli L, Neri S, Castellino P. Oxidative stress, glutathione status, sirtuin and cellular stress response in type 2 diabetes. Biochim. Biophys. Acta-Mol. Basis Dis. 1822: 729-736 (2012) 

  12. Latorrea AO, Caniceiro BD, Wysocki HL, Haraguchi M, Gardner DR, Grniak SL. Selenium reverses Pteridium aquilinum-induced immunotoxic effects. Food Chem. Toxicol. 49: 464-470 (2011) 

  13. Yoon HJ, Lee S, Hwang IK. Effects of green pepper (Capsicum annuum var.) on antioxidant activity and induction of apoptosis in human breast cancer cell lines. Korean J. Food Sci. Technol. 44: 750-758 (2012) 

  14. Floegel A, Kim DO, Chung SJ, Koo SI, Chun OK. Comparison of ABTS/DPPH assays to measure antioxidant capacity in popular antioxidant-rich US foods. J. Food Compos. Anal. 24: 1043-1048 (2011) 

  15. Chang ST, Wu JH, Wang SY, Kang PL, Yang NS, Shyur LF. Antioxidant activity of extracts from Acacia confusa bark and heartwood. J. Agr. Food Chem. 49: 3420-3424 (2001) 

  16. Watanabe J, Kawabata J, Kurihara H and Niki R. Isolation and identification of alpha-glucosidase inhibitors from Tochu-cha (Eucommia ulmoides). Biosci. Biotechnol. Biochem. 61: 177-178 (1997) 

  17. Piga R, Naito Y, Kokura S, Handa O, Yoshikawa T. Protective effect of serotonin derivatives on glucose-induced damage in PC12 rat pheochromocytoma cells. Br. J. Nutr. 103: 25-31 (2010) 

  18. Kim JK, Choi SJ, Cho HY, Hwang HJ, Kim YJ, Lim T, Kim CJ, Kim HK, Peterson S, Shin DH. Protective effects of kamepferol (3,4',5,7-tetrahydroxyflavone) against amyloid beta peptide ( $A{\beta}$ )-induced neurotoxicity in ICR mice. Biosci. Biotechnol. Biochem. 74: 397-401 (2010) 

  19. Mousavi SH, Tayarani NZ, Parsaee H. Protective effect of saffron extract and crocin on reactive oxygen species-mediated high glucose-induced toxicity in PC12 cells. Cell. Mol. Neurobiol. 30: 185-191 (2010) 

  20. Proestos C, Sereli D, Komaitis M. Determination of phenolic compounds in aromatic plants by RP-HPLC and GC-MS. Food Chem. 95: 44-52 (2006) 

  21. Lee JH, Park KH, Lee MH, Kim HT, Seo WD, Kim JY, Baek IY, Jang DS, Ha TJ. Identification, characterisation, and quantification of phenolic compounds in the antioxidant activity-containing fraction from the seeds of Korean perilla (Perilla frutescens) cultivars. Food Chem. 136: 843-852 (2013) 

  22. Uchida K, Stadtman ER. Covalent attachment of 4-hydroxynonenal to glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase. A possible involvement of intra- and intermolecular cross-linking reaction. J. Biol. Chem. 268: 6388-6393 (1993) 

  23. Stoewsand GS. Bioactive organosulfur phytochemicals in Brassica oleracea vegetables. Food Chem. Toxicol. 33: 537-543 (1995) 

  24. B Zhao. Natural antioxidants protect neurons in Alzheimer's disease and Parkinson's disease. Neurochem. Res. 34: 630-638 (2009) 

  25. Al-Gayyar MMH, Matragoon S, Pillai BA, Ali TK, Abdelsaid MA, El-Remessy AB. Epicatechin blocks pro-nerve growth factor (proNGF)-mediated retinal neurodegeneration via inhibition of p75 neurotrophin receptor expression in a rat model of diabetes. Diabetologia 54: 669-680 (2011) 

  26. Edwards JL, Quattrini A, Lentz SI, Figueroa-Romero C, Cerri F, Backus C, Hong Y, Feldman EL. Diabetes regulates mitochondrial biogenesis and fission in mouse neurons. Diabetologia 53: 160-169 (2010) 

  27. Luo C, Yang H, Tang C, Yao G, Kong L, He H, Zhou Y. Kaempferol alleviates insulin resistance via hepatic IKK/NF- ${\kappa}B$ signal in type 2 diabetic rats. Int. Immunopharmacol. 28: 744-750 (2015) 

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