[논문]식물추출물의 식물병원성 곰팡이 포자에 대한 발아억제 활성

박상조; 류영현; 배수곤; 서동환

doi:10.7732/kjpr.2017.30.4.343

식물추출물의 식물병원성 곰팡이 포자에 대한 발아억제 활성
Screening of Antifungal Activities of Plant Extracts against Phytopathogenic Fungi 원문보기

韓國資源植物學會誌 = Korean journal of plant resources, v.30 no.4, 2017년, pp.343 - 351

박상조 (경북농업기술원) , 류영현 (경북농업기술원 유기농업연구소) , 배수곤 (경북농업기술원 유기농업연구소) , 서동환 (경북농업기술원)

초록
AI-Helper

401종의 식물에서 얻은 메탄올 추출물 662개를 식물 병원성 곰팡이[딸기잿빛곰팡이병균(Botrytis sp.), 고추탄저병균(Colletotrichum sp.), 작약점무늬병균(Alternaria sp.) 및 작약검은뿌리썩음병균(Cylindrocarpon sp.)]에 대한 분생포자의 발아억제 활성을 microdilution assay로 측정하였다. 검정에 사용한 추출물 중에서 36종의 추출물이 1종 이상의 곰팡이에 대하여 억제활성을 보였다. 짚신나물, 고본, 족도리풀, 일천궁, 백선 및 목향의 뿌리, 능소화의 잎가지, 감초의 지상부, 뽕나무의 가지 추출물은 식물의 지상부 조직에서 발병하는 균(Botrytis sp., Colletotrichum sp. 그리고 Alternaria sp.)과 뿌리에 발병하는 균(Cylindrocarpon sp.)의 포자발아를 모두 억제하는 항균활성을 보여 주어 이들 추출물의 항균범위가 넓은 것으로 나타났다. 각각의 곰팡이 대한 추출물의 억제활성을 보면, 뽕나무의 가지와 고삼의 뿌리 추출물은 1,250 mg/L에서 딸기잿빛곰팡이병균의 포자발아를 완전히 억제하였다. 고추탄저병균의 포자발아억제에 가장 강한 추출물은 홀아비꽃대의 뿌리였으며, $1,250{\mu}g/ml$에서 완전히 억제하였다. 작약점무늬병균에 가장 강한 억제활성을 나타낸 추출물은 감초의 지상부였으며, $625{\mu}g/ml$에서 포자의 발아를 100% 억제하였고, 새모래덩굴의 뿌리와 뽕나무 가지 추출물은 $1,250{\mu}g/ml$에서 억제하였다. 작약검은뿌리썩음병균에 가장 강한 억제활성을 나타낸 추출물은 감초의 지상부와 목향의 뿌리였으며, $1,250{\mu}g/ml$에서 포자발아를 억제하였다.

Abstract ▼ AI-Helper

Plant extracts were screened for antifungal activity against major plant pathogens, Botrytis sp., Collectotrichum sp., Alternaria sp. and Cylindrocarpon sp. using 96-well microdilution method. Among the 662 methanol extracts from 401 plant species, 36 extracts showed complete inhibition of spore germination against at least one of four pathogenic fungi. Extracts of Morus alba twig and Sophora flavescens root showed minimum inhibition concentration (MIC) at $1,250{\mu}g/ml$ against Botrytis sp.. Extracts of Chloranthus japonicus root showed MIC at $1,250{\mu}g/ml$ against Collectotrichum sp.. Extracts of Glycyrrhiza uralensis aerial part, Inula helenium root and Menispermum dauricum root showed MIC between 625 and $1,250{\mu}g/ml$ against Alternaria sp.. G. uralensis aerial part and I. helenium root showed MIC at $1,250{\mu}g/ml$ against Cylindrocarpon sp.. Specifically, the extracts of Agrimonia pilosa root, Angelica tenuissima root, Asarum sieboldii root, Campsis grandifolia leaf and twig, Cnidium officinale root, Dictamnus dasycarpus root, G. uralensis aerial part, I. helenium root and M. alba twig completely inhibited spore germination at lower than $5,000{\mu}g/ml$ against all of four pathogenic fungi. Two methanol extracts from G. uralensis aerial part and M. alba twig may used as a candidate to develop into effective disease management materials in plant cultivation.

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

따라서 본 연구에서는 이러한 병원균을 대상으로 농작물의 병해 방제에 활용 가능한 식물성 소재를 발굴하고자 하였으며, 위의 4종 식물병원성 곰팡이에 대한 식물추출물의 포자 발아 억제활성과 식물추출물의 제조에 필요한 원료의 확보 용이성을 검토하여 식물병해의 방제용 재료로 가능한 추출물을 선발하였다.

제안 방법

접종된 plate를 배양기에 넣고 25℃에서 배양한 다음 5일 후에 역상현미경(Nikon Eclipse TS100, Japan)으로 포자의 발아 정도를 측정하였다. 3반복으로 실시하였으며, 분생포자의 발아를 100% 억제한 추출물의 최소농도를 MIC (minimum inhibition concentration, ㎍/㎖)로 하였다.
401종의 식물에서 얻은 메탄올 추출물 662개를 식물 병원성 곰팡이[딸기잿빛곰팡이병균(Botrytis sp.), 고추탄저병균(Colletotrichum sp.), 작약점무늬병균(Alternaria sp.) 및 작약검은뿌리썩음병균(Cylindrocarpon sp.)]에 대한 분생포자의 발아억제 활성을 microdilution assay로 측정하였다. 검정에 사용한 추출물 중에서 36종의 추출물이 1종 이상의 곰팡이에 대하여 억제활성을 보였다.
Hemocytometer를 이용하여 포자현탁액의 포자수를 측정한 다음 멸균 증류수로 포자의 농도가 1×106 conidia/㎖가 되도록 조정하였다.
추출물은 미리 만들어 놓은 저장액(100 ㎎/㎖)을 멸균증류수로 희석하여 최종 농도가 5000, 2500, 1250, 625, 313, 156, 78, 39 ㎍/㎖가 되도록 100 ㎕씩을 microplate well에 넣었고, 곰팡이의 포자현탁액은 포자농도가 10⁵ conidia/㎖가 되도록 potato dextrosebroth (PDB, Difco, USA) 배지로 희석하여 100 ㎕를 넣었다. 무처리는 멸균증류수 100 ㎕와 포자현탁액 100 ㎕를 혼합처리하였다. 접종된 plate를 배양기에 넣고 25℃에서 배양한 다음 5일 후에 역상현미경(Nikon Eclipse TS100, Japan)으로 포자의 발아 정도를 측정하였다.
식물병원성 곰팡이인 딸기잿빛곰팡이병균(Botrytis sp.), 고추탄저병균(Colletotrichum sp.), 작약점무늬병균(Alternaria sp.) 및 작약검은뿌리썩음병균(Cylindrocarpon sp.)을 대상으로 401종의 식물에서 얻은 추출물 662개(Table 1)의 항균활성을 측정하였다. 시험에 사용한 곰팡이 중에서 한 종류 이상에서 분생포자의 발아억제 활성을 보인 것은 창포의 뿌리(Acorus calamus var.
는 작약 잎에서, Cylindrocarpon sp.은 작약의 뿌리에서 채취한 각 균의 포자를 potato dextrose agar(PDA, Difco, USA) 배지에 접종하여 배지상의 균사 형태와 현미경학적 관찰로 순수 분리하였다. 순수 분리한 곰팡이는 지름 90 ㎜ PDA 배지에서 계대배양하면서 활성검정에 사용하였다.
무처리는 멸균증류수 100 ㎕와 포자현탁액 100 ㎕를 혼합처리하였다. 접종된 plate를 배양기에 넣고 25℃에서 배양한 다음 5일 후에 역상현미경(Nikon Eclipse TS100, Japan)으로 포자의 발아 정도를 측정하였다. 3반복으로 실시하였으며, 분생포자의 발아를 100% 억제한 추출물의 최소농도를 MIC (minimum inhibition concentration, ㎍/㎖)로 하였다.
2, Sigma Aldrich, USA)로 여과하여 회수하였으며, 메탄올 추출을 3회 실시하여 모은 추출액을 1L 농축플라스크에 넣고 40℃에서 회전식 감압농축기(Eyela N1000, Japan)로 추출용매를 제거하여 완전히 건조하였다. 추출물은 DMSO (Sigma Aldrich, USA)에 녹여 저장액(100 ㎎/㎖)을 만들고 상온에서 보관하면서 활성검정에 이용하였다.
추출물의 항균활성 검정은 96-well microtiter plate assay를 응용하여 실시하였다(Wedge and Kuhajek, 1998). 추출물은 미리 만들어 놓은 저장액(100 ㎎/㎖)을 멸균증류수로 희석하여 최종 농도가 5000, 2500, 1250, 625, 313, 156, 78, 39 ㎍/㎖가 되도록 100 ㎕씩을 microplate well에 넣었고, 곰팡이의 포자현탁액은 포자농도가 10⁵ conidia/㎖가 되도록 potato dextrosebroth (PDB, Difco, USA) 배지로 희석하여 100 ㎕를 넣었다. 무처리는 멸균증류수 100 ㎕와 포자현탁액 100 ㎕를 혼합처리하였다.
추출물의 항균활성 검정은 96-well microtiter plate assay를 응용하여 실시하였다(Wedge and Kuhajek, 1998). 추출물은 미리 만들어 놓은 저장액(100 ㎎/㎖)을 멸균증류수로 희석하여 최종 농도가 5000, 2500, 1250, 625, 313, 156, 78, 39 ㎍/㎖가 되도록 100 ㎕씩을 microplate well에 넣었고, 곰팡이의 포자현탁액은 포자농도가 10⁵ conidia/㎖가 되도록 potato dextrosebroth (PDB, Difco, USA) 배지로 희석하여 100 ㎕를 넣었다.

대상 데이터

은 작약의 뿌리에서 채취한 각 균의 포자를 potato dextrose agar(PDA, Difco, USA) 배지에 접종하여 배지상의 균사 형태와 현미경학적 관찰로 순수 분리하였다. 순수 분리한 곰팡이는 지름 90 ㎜ PDA 배지에서 계대배양하면서 활성검정에 사용하였다. 포자현탁액은 각각의 곰팡이를 25℃에서 2주간 배양한 다음 멸균증류수 5 ㎖를 배양접시에 넣고 L형 유리막대로 배지 표면을 가볍게 문질러서 분생포자를 회수하는 방법으로 준비하였다.
연구에 사용한 추출물은 2004년부터 2008년까지 유기농업연구소 유전자원보존포장과 국내 자생지에서 채집한 식물체에서 얻었다. 지상부 재료는 6월에서 8월 사이에, 지하부는 수확기에 채취하였고, 채취한 재료는 흙 등의 이물질을 제거한 후에 약 1 ㎝ 길이로 잘라서 40℃에서 열풍건조기로 5일간 건조하였다.
연구에 사용한 추출물은 2004년부터 2008년까지 유기농업연구소 유전자원보존포장과 국내 자생지에서 채집한 식물체에서 얻었다. 지상부 재료는 6월에서 8월 사이에, 지하부는 수확기에 채취하였고, 채취한 재료는 흙 등의 이물질을 제거한 후에 약 1 ㎝ 길이로 잘라서 40℃에서 열풍건조기로 5일간 건조하였다. 건조한 재료 50 g을 유리용기에 넣고 잠길 정도로 추출용매(100% 메탄올)를 부어 상온에서 침지하였다.

성능/효과

)의 포자발아를 모두 억제하는 항균활성을 보여 주어 이들 추출물의 항균범위가 넓은 것으로 나타났다. 각각의 곰팡이 대한 추출물의 억제활성을 보면, 뽕나무의 가지와 고삼의 뿌리 추출물은 1,250 ㎎/L에서 딸기잿빛곰팡이병균의 포자발아를 완전히 억제하였다. 고추탄저병균의 포자발아억제에 가장 강한 추출물은 홀아비꽃대의 뿌리였으며, 1,250 ㎍/㎖에서 완전히 억제하였다.
)]에 대한 분생포자의 발아억제 활성을 microdilution assay로 측정하였다. 검정에 사용한 추출물 중에서 36종의 추출물이 1종 이상의 곰팡이에 대하여 억제활성을 보였다. 짚신나물, 고본, 족도리풀, 일천궁, 백선 및 목향의 뿌리, 능소화의 잎가지, 감초의 지상부, 뽕나무의 가지 추출물은 식물의 지상부 조직에서 발병하는 균(Botrytis sp.
, 2009) 뿐만이 아니라 넓은 범위의 식물병원균의 억제에 활용 가능성이 있을 것으로 판단된다. 고추탄저병균(Colletotrichum sp.)의 포자발아억제에 가장 강한 추출물은 홀아비꽃대의 뿌리 추출물이었으며, 1,250 ㎍/㎖에서 완전히 억제하였다. 홀아비꽃대의 뿌리 추출물은 벼도열병 등의 방제에도 효과가 있는 것으로 보고된 바 있다(Park et al.
각각의 곰팡이 대한 추출물의 억제활성을 보면, 뽕나무의 가지와 고삼의 뿌리 추출물은 1,250 ㎎/L에서 딸기잿빛곰팡이병균의 포자발아를 완전히 억제하였다. 고추탄저병균의 포자발아억제에 가장 강한 추출물은 홀아비꽃대의 뿌리였으며, 1,250 ㎍/㎖에서 완전히 억제하였다. 작약점무늬병균에 가장 강한 억제활성을 나타낸 추출물은 감초의 지상부였으며, 625㎍/㎖에서 포자의 발아를 100% 억제하였고, 새모래덩굴의 뿌리와 뽕나무 가지 추출물은 1,250 ㎍/㎖에서 억제하였다.
딸기잿빛곰팡이병균(Botrytis sp.)의 포자발아를 가장 낮은 농도에서 억제한 추출물은 뽕나무의 가지와 고삼의 뿌리 추출물이었으며, 1,250 ㎍/㎖에서 100% 억제활성을 보여 주었다. 고삼과 동일 속인 S.
)의 포자발아를 모두 억제하는 항균활성을 보여 주어 이들 추출물의 항균범위가 넓은 것으로 나타났다. 반면에 매자나무의 잎과 줄기에서 얻은 추출물은 뿌리에 발병하는 균(Cylindrocarpon sp.)의 포자발아 억제에만 활성이 있었고, 창포, 산마늘, 마늘, 쥐방울덩굴, 삼지구엽초, 소엽맥문동, 왜란, 꿩의다리, 타임 및 백리향의 추출물은 지상부 조직에 발병하는 균에만 포자발아 억제활성을 보여주었다.
이 검정에서 사용한 추출물 시료 중에서 지상부와 지하부 모두에서 항균활성을 나타낸 것은 석창포, 소엽맥문동, 왜란, 수호초 및 대황이었다. 소엽맥문동, 왜란 및 수호초는 추출 부위에 따라 약간의 억제활성 농도의 차이는 있었으나 지하부와 지상부가 동일한 항균범위를 보여 주었고, 석창포와 대황은 추출부위에 따라 곰팡이 포자의 발아억제 반응에 차이를 보여 주었다. 짚신나물, 고본, 족도리풀, 일천궁, 백선 및 목향의 뿌리, 능소화의 잎가지, 감초의 지상부, 뽕나무의 가지 추출물은 식물의 지상부 조직에서 발병하는 3종류의 식물병원균(Botrytis sp.
식물체 부산물을 재활용하여 추출물의 제조에 필요한 원료의 생산비 절감 측면에서 보면, 이 연구에서 공시한 4종의 식물병원성 곰팡이에 대한 포자발아억제 활성을 보여주고 있는 감초와 뽕나무가 식물병 방제의 식물추출물의 원료로 활용 가능성이 비교적 큰 것으로 나타났다.
이 검정에서 사용한 추출물 시료 중에서 지상부와 지하부 모두에서 항균활성을 나타낸 것은 석창포, 소엽맥문동, 왜란, 수호초 및 대황이었다. 소엽맥문동, 왜란 및 수호초는 추출 부위에 따라 약간의 억제활성 농도의 차이는 있었으나 지하부와 지상부가 동일한 항균범위를 보여 주었고, 석창포와 대황은 추출부위에 따라 곰팡이 포자의 발아억제 반응에 차이를 보여 주었다.
의 포자발아를 억제하였다. 작약검은뿌리썩음병균(Cylindrocarpon sp.)에 대하여 가장 강한 억제활성을 나타낸 추출물은 감초의 지상부와 목향의 뿌리였으며 이 들은 모두 1,250 ㎍/㎖에서 포자발아를 완전히 억제하였다(Table 2).
작약점무늬병균에 가장 강한 억제활성을 나타낸 추출물은 감초의 지상부였으며, 625㎍/㎖에서 포자의 발아를 100% 억제하였고, 새모래덩굴의 뿌리와 뽕나무 가지 추출물은 1,250 ㎍/㎖에서 억제하였다. 작약검은뿌리썩음병균에 가장 강한 억제활성을 나타낸 추출물은 감초의 지상부와 목향의 뿌리였으며, 1,250 ㎍/㎖에서 포자발아를 억제하였다.
, 2004). 작약점무늬병균(Alternaria sp.) 포자발아에 가장 강한 억제활성을 나타낸 추출물은 감초의 지상부로, 625 ㎍/㎖에서 포자의 발아를 100% 억제하였다. 새모래덩굴의 뿌리와 뽕나무의 가지 추출물은 1,250㎍/㎖에서 Alternaria sp.
고추탄저병균의 포자발아억제에 가장 강한 추출물은 홀아비꽃대의 뿌리였으며, 1,250 ㎍/㎖에서 완전히 억제하였다. 작약점무늬병균에 가장 강한 억제활성을 나타낸 추출물은 감초의 지상부였으며, 625㎍/㎖에서 포자의 발아를 100% 억제하였고, 새모래덩굴의 뿌리와 뽕나무 가지 추출물은 1,250 ㎍/㎖에서 억제하였다. 작약검은뿌리썩음병균에 가장 강한 억제활성을 나타낸 추출물은 감초의 지상부와 목향의 뿌리였으며, 1,250 ㎍/㎖에서 포자발아를 억제하였다.
소엽맥문동, 왜란 및 수호초는 추출 부위에 따라 약간의 억제활성 농도의 차이는 있었으나 지하부와 지상부가 동일한 항균범위를 보여 주었고, 석창포와 대황은 추출부위에 따라 곰팡이 포자의 발아억제 반응에 차이를 보여 주었다. 짚신나물, 고본, 족도리풀, 일천궁, 백선 및 목향의 뿌리, 능소화의 잎가지, 감초의 지상부, 뽕나무의 가지 추출물은 식물의 지상부 조직에서 발병하는 3종류의 식물병원균(Botrytis sp.,Colletotrichum sp., Alternaria sp.)과 뿌리에 발병하는 식물병원균(Cylindrocarpon sp.)의 포자발아를 모두 억제하는 항균활성을 보여 주어 이들 추출물의 항균범위가 넓은 것으로 나타났다. 반면에 매자나무의 잎과 줄기에서 얻은 추출물은 뿌리에 발병하는 균(Cylindrocarpon sp.
검정에 사용한 추출물 중에서 36종의 추출물이 1종 이상의 곰팡이에 대하여 억제활성을 보였다. 짚신나물, 고본, 족도리풀, 일천궁, 백선 및 목향의 뿌리, 능소화의 잎가지, 감초의 지상부, 뽕나무의 가지 추출물은 식물의 지상부 조직에서 발병하는 균(Botrytis sp., Colletotrichum sp. 그리고 Alternaria sp.)과 뿌리에 발병하는 균(Cylindrocarpon sp.)의 포자발아를 모두 억제하는 항균활성을 보여 주어 이들 추출물의 항균범위가 넓은 것으로 나타났다. 각각의 곰팡이 대한 추출물의 억제활성을 보면, 뽕나무의 가지와 고삼의 뿌리 추출물은 1,250 ㎎/L에서 딸기잿빛곰팡이병균의 포자발아를 완전히 억제하였다.
항균활성 검정에 사용한 식물병원성 곰팡이는 잿빛곰팡이균(Botrytis sp.), 탄저병균(Colletotrichum sp.), 점무늬병균(Alternaria sp.) 및 검은뿌리썩음병균(Cylindrocarpon sp.)이었다. Botrytis sp.

후속연구

에 대한 항균활성을 식물병 방제의 소재로 활용함으로써 식물체 지상부 부산물의 이용성을 증대시킬 수 있으리라 판단된다. Rollinger et al. (2006)에 의하여 뿌리껍질에서 사과의 검은별무늬병균(Venturia inaequalis)에 항균효과가 있는 화합물이 분리된 바 있는 뽕나무에서도 이번 연구에 사용한 4종류의 식물성 병원균에 대하여 항균활성을 가지는 성분의 추출이 가능한 것으로 보이고 있어서 누에 사육이나 가지치기에서 나오는 뽕나무의 가지를 추출물 재료로 활용한다면 식물병 관리용 추출물로 재활용이 가능할 것으로 여겨진다. 탄저병 억제활성 성분이 확인된 족도리풀(Lee et al.
)의 포자발아를 가장 낮은 농도에서 억제한 추출물은 뽕나무의 가지와 고삼의 뿌리 추출물이었으며, 1,250 ㎍/㎖에서 100% 억제활성을 보여 주었다. 고삼과 동일 속인 S. alopecuroides의 추출물이 Pythium, Fusarium, Alternaria, Botrytis, Phytophthora 및 Exserohilum의 균사 신장을 억제하는 활성이 있다는 보고(Li et al., 2006)가 있어서 고삼의 추출물은 살충(Dou et al., 2010; Kim et al., 2009) 뿐만이 아니라 넓은 범위의 식물병원균의 억제에 활용 가능성이 있을 것으로 판단된다. 고추탄저병균(Colletotrichum sp.
와 Cylindrocarpon sp.에 대한 항균활성을 식물병 방제의 소재로 활용함으로써 식물체 지상부 부산물의 이용성을 증대시킬 수 있으리라 판단된다. Rollinger et al.
이 시험의 결과로 보면, 감초, 뽕나무 등의 몇몇 식물체는 약용등의 주요 이용부위를 제외한 부산물을 식물 병해의 생물적 관리의 재료로 활용함으로써 이용가치를 증대할 수 있을 것으로 판단된다. 감초는 triterpene saponins, flavonoids, isoflavonoids 및glycyrrhizic acid 등을 함유하고 있고, 항염증, 항바이러스, 항균, 항산화 및 항암 등의 약리활성을 발휘하며(Nassiri and Hosseinzadeh, 2008), 식품의 보존관련 위해미생물의 억제 효과가 있는 것으로 보고되어 있을 뿐만 아니라(Kim et al.
(2006)에 의하여 뿌리껍질에서 사과의 검은별무늬병균(Venturia inaequalis)에 항균효과가 있는 화합물이 분리된 바 있는 뽕나무에서도 이번 연구에 사용한 4종류의 식물성 병원균에 대하여 항균활성을 가지는 성분의 추출이 가능한 것으로 보이고 있어서 누에 사육이나 가지치기에서 나오는 뽕나무의 가지를 추출물 재료로 활용한다면 식물병 관리용 추출물로 재활용이 가능할 것으로 여겨진다. 탄저병 억제활성 성분이 확인된 족도리풀(Lee et al., 2005)을 비롯한 고본, 천궁, 짚신나물, 백선 및 목향은 한약재로 이용되는 뿌리 조직에서 시험한 곰팡이에 대한 항균 성분이 추출되는 것으로 나타나서 위의 6종 식물체의 뿌리는 생약과 식물 병해의 생물적 관리의 소재로 겸용할 수 있을 것으로 판단된다.

질의응답

핵심어	질문	논문에서 추출한 답변
	식물추출물이 농작물의 병해충을 관리하는데 있어서 좋은 대안이 될 수 있는 이유는 무엇인가?	식물에서 추출한 성분을 농작물의 병해충 관리에 활용하는 방법은 조추출물 상태, 비활성 성분을 일부 제거하여 활성을 높인 활성분획(추출물) 또는 활성 성분만을 순수하게 분리한 것을 그대로 또는 희석하여 처리하는 것 등이 될 수 있다. 이러한 식물추출물은 농작물의 병해충을 관리하는데 있어서 좋은 대안이 될 수 있는데, 일부 식물추출물은 다수의 식물병원균에 대한 방제효능과 화학농약에 근접한 방제력을 지니고 있고(Schilder et al., 2002; Schmitt et al., 2002), 합성농약이나 생물농약과의 혼용처리로 농약의 사용량을 줄일 수 있고(Bardin et al., 2008;Jeandet et al., 2000), 또한 화학농약에 내성을 지닌 병해충에도 효과적인 방제용 원료가 될 수 있는 장점을 지니고 있다(Isman, 2006; Jacometti et al., 2010; Schmitt and Seddon, 2005).
	식물에서 추출한 성분을 농작물의 병해충 관리에 활용하는 방법은 무엇인가?	식물에서 추출한 성분을 농작물의 병해충 관리에 활용하는 방법은 조추출물 상태, 비활성 성분을 일부 제거하여 활성을 높인 활성분획(추출물) 또는 활성 성분만을 순수하게 분리한 것을 그대로 또는 희석하여 처리하는 것 등이 될 수 있다. 이러한 식물추출물은 농작물의 병해충을 관리하는데 있어서 좋은 대안이 될 수 있는데, 일부 식물추출물은 다수의 식물병원균에 대한 방제효능과 화학농약에 근접한 방제력을 지니고 있고(Schilder et al.
	상업적으로 성공한 병해충 관리에 도움이 되는 식물추출물이 많지 않은 이유는 무엇인가?	, 2010)을 많이 하여 왔지만 neem, pyrrethrum, essential oil 등과 같은 소수의 식물을 제외하면 상업적으로 성공한 식물성 재료는 그리 많지 않은 실정이다. 식물성 재료를 병해충 관리의 재료로 활용하기 위해서는 자연적인 생산량이 많거나 재배 또는 생물공학적인 수단에 의한 생산이 경제적으로 용이하여 원료를 지속적으로 공급할 수 있어야 하지만 대부분의 식물이 그렇지 못하기 때문이다(Isman, 2006; Jacobson, 1989).

참고문헌 (29)

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저자의 다른 논문 :

표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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