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문제 정의
- 따라서 항온·항습이 유지되는 최적 보존환경 조성 조건에서 환경인자를 수집하여, 공간 내 환경 변화 분석 및 균주 활성도와의 연관성을 유추하고자 한다.
- 이에 본 연구에서는 유전학적 동정기술을 적용하여 기록물 표면에 존재하는 미생물의 현황을 파악하고, ATP 생물 발광 반응 분석법을 적용하여 기록물 내 미생물 오염도를 객관적인 지표로 산정하고자 한다. 또한 서고 내 보존환경을 분석하여 향후 미생물의 생육가능성을 파악하고자 한다. 이를 근거로 향후 합리적이고 경제적인 소독처리 기준마련의 기초자료를 제공하고자 한다.
- 본 연구를 통해 미소독 기록물 및 보존서고에 존재하는 미생물 현황을 파악하였으며, 미생물량에 따른 미생물 활성도 변화의 정량적 평가가 수행되었다.
- 또한 서고 내 보존환경을 분석하여 향후 미생물의 생육가능성을 파악하고자 한다. 이를 근거로 향후 합리적이고 경제적인 소독처리 기준마련의 기초자료를 제공하고자 한다.
- 이러한 공간은 보존서고와 달리 최적의 항온 · 항습 시설이 구축되어 있지 않으며, 가변적으로 냉난방기의 가동이 진행 중인 공간을 의미한다. 이를 통해 공간 내 환경 변화 분석 및 균주 활성도와의 연관성을 유추하고자 한다. 국가기록원 내 보존서고 이외의 공간이면서 기록물의 이동이 가능한 공간인 열람실, 마이크로필름실, 스캐닝실에서 환경데이터를 수집하였다.
- 이를 위해서는 현재 보관 중인 기록물에 존재하는 미생물 현황, 오염도 지표, 보존환경 분석 등 기초조사가 우선적으로 이루어져야 할 것이다. 이에 본 연구에서는 유전학적 동정기술을 적용하여 기록물 표면에 존재하는 미생물의 현황을 파악하고, ATP 생물 발광 반응 분석법을 적용하여 기록물 내 미생물 오염도를 객관적인 지표로 산정하고자 한다. 또한 서고 내 보존환경을 분석하여 향후 미생물의 생육가능성을 파악하고자 한다.
제안 방법
- 1차 배양 이후 군집의 형태를 기준으로 진균류와 세균류로 분류하였으며, 진균류의 경우 26±2℃, 세균류의 경우 38±2℃ 조건에서 2차 배양(단일군집분리)을 실시하였다.
- 포집한 미생물은 미생물 배양기에서 26±2℃의 조건으로 약 3-4일간 군집의 형태가 발생될 때까지 1차 배양을 진행하였다. 1차 배양 이후 발생된 군집을 계수하여 공간별 미생물량을 상대적으로 비교하였다. 미생물의 개체 수 측정은 집락형성 단위인 CFUs(colony forming units)를 적용하였으며, 배양된 미생물 군집(colony)은 진균류와 세균류로 분류하여 계수하였다.
- 1차 배양 이후 군집의 형태를 기준으로 진균류와 세균류로 분류하였으며, 진균류의 경우 26±2℃, 세균류의 경우 38±2℃ 조건에서 2차 배양(단일군집분리)을 실시하였다. 2차 배양된 진균류와 세균류는 단일 군집으로 분리될 때 까지 단일군집분리를 시행하였으며, 최종적으로 순수 분리된 미생물은 군집의 형태, 색상,크기 등의 차이를 기준으로 분류하였다.
- (Korea)에 sequencing을 의뢰하였다. Sequencing은 Perkin-Elmer(USA)에서 제작된 자동염기서열 결정기(automatic DNA sequencer)를 통하여 분석되었다. 이후 확보된 염기서열은 미국국립생물공학정보센터(National Center for Biotechnology Information Search database, 2018)의 데이터베이스를 활용하여 blast search 하였다.
- 측정된 결과는 기초통계분석을 수행하였으며, 이를 통해 최솟값 (min), 최댓값 (max), 평균값 (m), 표준편차(σ)의 통계수치를 제시하였다. 또한 보존서고별, 기록물 생산연도별, 기록물 재질별, 육안상 오염여부별로 구분하여 빈도분석을 수행하였다. 빈도분석의 범위는 1001-2000 RLU(relative light unit)이며, 계급구간은 9구간이다(0-100 RLU,101-200 RLU, 201-500 RLU, 501-1000 RLU, 1001-2000 RLU,2001-3000 RLU, 3001-400000 RLU, 4001-5000 RLU,5000 RLU 이상).
- 또한 실제 보존서고 내에서 보관 중인 미소독 기록물 1951점을 대상으로 미생물 활성도 분석을 수행함으로써 기록물 표면의 미생물 오염도 현황을 파악할 수 있었다. 미생물 활성도 분석 결과 대부분(93.
- 미소독 보존서고의 명칭은 임의적으로 보존서고 1–9로 명명하였다. 미생물 포집 지점은 보존서고 내 3곳이며, 20분 간격으로 각 지점별 1회 포집하였다. 포집방법 및 포집량은 환경부에서 제시한 실내공기질공정시험기준(Ministry of Environment, 2017)을적용하여, 5분간 50 L/min의 속도로 공기 중의 미생물이 배양배지를 충돌하는 방식을 적용하였다.
- 이후 각 희석배율의 표준균주를 대상으로 농도별 미생물 활성도 측정을 수행하였다. 미생물 활성도 분석에는 휴대용 ATP Bioluminometer(Clean-trace LM1, 3M, USA)를 적용하였으며, 제조회사에서 제시하는 안내사항에 따라 측정을 수행하였다. 측정기의 정확도는 0.
- 1차 배양 이후 발생된 군집을 계수하여 공간별 미생물량을 상대적으로 비교하였다. 미생물의 개체 수 측정은 집락형성 단위인 CFUs(colony forming units)를 적용하였으며, 배양된 미생물 군집(colony)은 진균류와 세균류로 분류하여 계수하였다. 1차 배양 이후 군집의 형태를 기준으로 진균류와 세균류로 분류하였으며, 진균류의 경우 26±2℃, 세균류의 경우 38±2℃ 조건에서 2차 배양(단일군집분리)을 실시하였다.
- 희석배율(dilution factor)은 1배에서 10,000배 (1X, 10-1, 10-2, 10-3, 10-4)이다. 이후 각 희석배율의 표준균주를 대상으로 농도별 미생물 활성도 측정을 수행하였다. 미생물 활성도 분석에는 휴대용 ATP Bioluminometer(Clean-trace LM1, 3M, USA)를 적용하였으며, 제조회사에서 제시하는 안내사항에 따라 측정을 수행하였다.
- 미생물 활성도 분석에는 휴대용 ATP Bioluminometer(Clean-trace LM1, 3M, USA)를 적용하였으며, 측정법은 측정하는 표면의 일정한 면적을 무작위로 채취하는 방법(random swab method)으로 진행하였다. 이후 세부적인 측정법은 제조회사에 제시하는 안내사항에 따라 측정을 수행하였다. 측정된 결과는 기초통계분석을 수행하였으며, 이를 통해 최솟값 (min), 최댓값 (max), 평균값 (m), 표준편차(σ)의 통계수치를 제시하였다.
- Sequencing은 Perkin-Elmer(USA)에서 제작된 자동염기서열 결정기(automatic DNA sequencer)를 통하여 분석되었다. 이후 확보된 염기서열은 미국국립생물공학정보센터(National Center for Biotechnology Information Search database, 2018)의 데이터베이스를 활용하여 blast search 하였다. 분석에 사용된 유전자 증폭 개시자(primer)의 정보와 유전자 증폭 조건(gene amplification condition)은 Table 3, 4와 같다.
- 포집된 미생물의 세포 내 DNA의 추출을 위하여 Intron Biotechnology(Korea)의 i–genomic BYF DNA Extraction Mini Kit을 이용하였다. 추출된 gDNA(genomic deoxyribonucleic acid), 유전자 증폭 개시자(primer),Takara Ex TaqTM 혼합물 50 uL 이용하여 18S와 16Sribosome DNA의 ITS(internal transcribed spacer) 영역을 증폭 증폭하였다. 증폭된 PCR product는 불순물을 정제한 후 XENOTECH Inc.
- 포집된 미생물의 세포 내 DNA의 추출을 위하여 Intron Biotechnology(Korea)의 i–genomic BYF DNA Extraction Mini Kit을 이용하였다.
- 포집된 미생물의 유전학적 동정을 위하여 염기서열 분석을 수행하였다. 포집된 미생물의 세포 내 DNA의 추출을 위하여 Intron Biotechnology(Korea)의 i–genomic BYF DNA Extraction Mini Kit을 이용하였다.
대상 데이터
- 공기 중 부유미생물은 30~120LPM의 flow range(accuracy ±5%) 갖는 공기포집기(B30120,Bio-Culture™, USA)를 사용하였다.
- 이를 통해 공간 내 환경 변화 분석 및 균주 활성도와의 연관성을 유추하고자 한다. 국가기록원 내 보존서고 이외의 공간이면서 기록물의 이동이 가능한 공간인 열람실, 마이크로필름실, 스캐닝실에서 환경데이터를 수집하였다. 데이터 수집기간은 2018년 7월 2일부터 8월 24일까지이며, 수집항목은 각 공간 내 온도 및 상대습도이다.
- 기록물 표면 부착 미생물(surface attached microbes)은 2017년 국가기록원에서 기 분석한 육안조사 결과서(국가기록원 내부자료 참조, 비공개)를 바탕으로 선정하였다. 선정기준은 육안 상으로 확인되는 심각한 미생물 오염이 발생한 기록물(16점) 및 분석이 허용된 기록물(35점) 총 51점이다(Table 2).
- 선정기준은 육안 상으로 확인되는 심각한 미생물 오염이 발생한 기록물(16점) 및 분석이 허용된 기록물(35점) 총 51점이다(Table 2). 기록물 표면에 부착된 미생물의 포집을 위하여 면균봉(sterilized cotton swab)을 이용하였다. 멸균봉은 감마선(gamma ray)으로 멸균된 상태이며, 길이 10 cm 정도의 면봉(cotton swab)형태이다.
- 국가기록원 내 보존서고 이외의 공간이면서 기록물의 이동이 가능한 공간인 열람실, 마이크로필름실, 스캐닝실에서 환경데이터를 수집하였다. 데이터 수집기간은 2018년 7월 2일부터 8월 24일까지이며, 수집항목은 각 공간 내 온도 및 상대습도이다.
- 미소독 기록물의 미생물 활성도 분석을 위하여 국가기록원 내 미소독 보존서고 8개실에 보관 중인 1,951점의 기록물을 선정하였다. 표본 선정방식은 국가기록원에서 허용된 기록물을 대상으로 서고별 무작위적 선별방식을 채택하였다.
- 미소독 보존서고 9개실과 서고 복도 1지점, 외부 1지점을 대상으로 서고 내 공기 중에 분포하는 미생물(air-borne microbes)을 포집하였다. 공기 중 부유미생물은 30~120LPM의 flow range(accuracy ±5%) 갖는 공기포집기(B30120,Bio-Culture™, USA)를 사용하였다.
- 생물량에 따른 미생물 활성도 변화 분석을 위하여 Escherichia coli, Staphylococcus aureus를 선정하였다. 표준균주(E.
- 기록물 표면 부착 미생물(surface attached microbes)은 2017년 국가기록원에서 기 분석한 육안조사 결과서(국가기록원 내부자료 참조, 비공개)를 바탕으로 선정하였다. 선정기준은 육안 상으로 확인되는 심각한 미생물 오염이 발생한 기록물(16점) 및 분석이 허용된 기록물(35점) 총 51점이다(Table 2). 기록물 표면에 부착된 미생물의 포집을 위하여 면균봉(sterilized cotton swab)을 이용하였다.
- 연구의 대상은 대량 기록물 보관처(행정안전부 국가기록원) 내 미소독 보존서고 9개실과 미소독 기록물 1,951점이다. 미소독 기록물은 기록물 입고 후 소독을 수행하지 않은 기록물을 의미하며, 미소독 보존서고는 미소독 기록물만을 보관하는 공간을 의미한다.
- 미소독 기록물의 미생물 활성도 분석을 위하여 국가기록원 내 미소독 보존서고 8개실에 보관 중인 1,951점의 기록물을 선정하였다. 표본 선정방식은 국가기록원에서 허용된 기록물을 대상으로 서고별 무작위적 선별방식을 채택하였다. 미생물 활성도 분석에는 휴대용 ATP Bioluminometer(Clean-trace LM1, 3M, USA)를 적용하였으며, 측정법은 측정하는 표면의 일정한 면적을 무작위로 채취하는 방법(random swab method)으로 진행하였다.
- 생물량에 따른 미생물 활성도 변화 분석을 위하여 Escherichia coli, Staphylococcus aureus를 선정하였다. 표준균주(E. coli; KCTC 1682, S. aureus; KCTC 3881)는 한국생명공학연구원으로부터 동결 건조된 상태(inactivate)로 분양받아 사용하였다. 앰플 형태의 균주는 멸균증류수 0.
- 환경인자 수집에는 시간대별 자동기록이 가능한 온 · 습도계(Testo 174H, TESTO, Germany)활용하였다. 환경데이터 수집장소는 국가기록원에서 측정이 허용된 공간인 미소독 보존서고 9개실과 서고 복도 1지점이며, 데이터 수집기간은 2018년 7월 2일부터 2018년 7월 31일까지이다. 환경인자 데이터 수집항목은 각 공간 내 온도 및 상대습도이다.
데이터처리
- 측정된 결과는 기초통계분석을 수행하였으며, 이를 통해 최솟값 (min), 최댓값 (max), 평균값 (m), 표준편차 (σ)의 통계수치를 제시하였다.
- 측정된 결과는 기초통계분석을 수행하였으며, 이를 통해 최솟값 (min), 최댓값 (max), 평균값 (m), 표준편차(σ)의 통계수치를 제시하였다.
이론/모형
- 이후 38±2℃ 조건에서 24시간 배양하였다. 미생물 활성도 분석에는 배양배지 상에 발생한 단일콜로니를 십진희석법으로 희석하여 정량화된 미생물을 사용하였다. 희석배율(dilution factor)은 1배에서 10,000배 (1X, 10-1, 10-2, 10-3, 10-4)이다.
- 표본 선정방식은 국가기록원에서 허용된 기록물을 대상으로 서고별 무작위적 선별방식을 채택하였다. 미생물 활성도 분석에는 휴대용 ATP Bioluminometer(Clean-trace LM1, 3M, USA)를 적용하였으며, 측정법은 측정하는 표면의 일정한 면적을 무작위로 채취하는 방법(random swab method)으로 진행하였다. 이후 세부적인 측정법은 제조회사에 제시하는 안내사항에 따라 측정을 수행하였다.
- 미생물 포집 지점은 보존서고 내 3곳이며, 20분 간격으로 각 지점별 1회 포집하였다. 포집방법 및 포집량은 환경부에서 제시한 실내공기질공정시험기준(Ministry of Environment, 2017)을적용하여, 5분간 50 L/min의 속도로 공기 중의 미생물이 배양배지를 충돌하는 방식을 적용하였다. 공기 중 부유 미생물 포집을 위하여 사용된 배양배지는 PDA(potato dextrose agar)와 NA(nutrient agar)이다.
- 환경인자 수집에는 시간대별 자동기록이 가능한 온 · 습도계(Testo 174H, TESTO, Germany)활용하였다.
성능/효과
- 국가기록원 보존서고의 보존환경 분석 결과 연중 22±2℃, 50±5%가 유지되는 공간에서 기록물을 보관하고 있어 미생물의 생육이 상당히 저해될 것으로 판단되었다.
- 단일군집으로 분리된 보존서고 내 공기 중 부유 미생물(진균류 26종, 세균류 41종)과 부착미생물(진균류 12종, 세균류 39종)을 대상으로 군집의 색상, 생장환의 형태학적 특징을 기준으로 중복되는 균주를 제외하였다. 그 결과, 최종적으로 부유 미생물에서는 진균류 16종, 세균류 27종(Figure 2), 부착미생물에서는 진균류 8종, 세균류 9종(Figure 3)이선별되었다.
- 기록물 생산연도별 미생물 활성도 분석에서는 기록물 생산이 오래된 기록물일수록 평균 미생물 활성도가 높아지는 경향성이 확인되었으며, 특히 1900-1940년대 일제강점기에 생산된 기록물이 다른 생산연도에 비해 높은 미생물활성도를 나타냈다(Table 9). 미생물 활성도 빈도분석 결과 모든 생산연도의 기록물에서 100 RLU 미만의 값이 절대적으로 많이 측정되었다(Table 10).
- 기록물 재질별 미생물 활성도 분석 결과 섬유로 제작된도면류에서 미생물 활성도 평균값이 높았다. 또한 육안상 기록물 표면에서 미생물의 생장흔적이 확인되는 기록물을 대상으로 미생물 활성도 분석을 수행한 결과, 오염여부가 확인되는 기록물에서 평균 미생물 활성도와 최대 미생물활성도 수치가 높은 것으로 확인되었다(Table 9).
- 기록물 재질별 미생물 활성도 분석 결과 섬유로 제작된도면류에서 미생물 활성도 평균값이 높았다. 또한 육안상 기록물 표면에서 미생물의 생장흔적이 확인되는 기록물을 대상으로 미생물 활성도 분석을 수행한 결과, 오염여부가 확인되는 기록물에서 평균 미생물 활성도와 최대 미생물활성도 수치가 높은 것으로 확인되었다(Table 9). 다만, 표본으로 추출된 섬유로 제작된 도면의 수는 총 1951점의 기록물 중 단 2점, 육안으로 미생물 오염이 확인되는 기록물 수는 단 22점에 그쳐 보다 정확한 통계적 분석을 위해서는 더 많은 표본이 필요할 것으로 판단된다.
- 또한 실제 보존서고 내에서 보관 중인 미소독 기록물 1951점을 대상으로 미생물 활성도 분석을 수행함으로써 기록물 표면의 미생물 오염도 현황을 파악할 수 있었다. 미생물 활성도 분석 결과 대부분(93.8%)의 기록물에서 미생물 활성도가 100 RLU 이하를 나타내었다. 이는 국가기록원으로 이관되기 이전에 오염도가 심각하지 않은 기록물이 대부분을 차지하고 있거나, 기록물 표면에 일부 미생물이 존재하더라도 연중 항온 항습이 유지되는 공간인 보존서고에 보관되는 과정에서 생육조건이 불리하게 작용한 것으로 판단된다(Cochrane, 1958).
- 미생물 활성도 최댓값(5171 RLU)을 나타낸 기록물 재질은 양지이며, 도면(섬유), 도면(지류)에서 1000 RLU가 초과하는 기록물이 확인되었다. 미생물 활성도 빈도분석 결과 모든 기록물에서 100 RLU 미만의 값이 절대적으로 많이 측정되었음을 확인할 수 있었다(Table 10).
- 기록물 생산연도별 미생물 활성도 분석에서는 기록물 생산이 오래된 기록물일수록 평균 미생물 활성도가 높아지는 경향성이 확인되었으며, 특히 1900-1940년대 일제강점기에 생산된 기록물이 다른 생산연도에 비해 높은 미생물활성도를 나타냈다(Table 9). 미생물 활성도 빈도분석 결과 모든 생산연도의 기록물에서 100 RLU 미만의 값이 절대적으로 많이 측정되었다(Table 10).
- 8%)의 기록물에서 미생물 활성도는 100 RLU 이하를 나타냈다(Table 9). 미생물 활성도 빈도분석을 결과에서도 모든 보존서고의 기록물에서 100 RLU 미만의 값이 약 86-98%를 차지하고 있었으며, 500 RLU를 초과하는 기록물은 약 0.46%(9점)만이 존재하였다(Table 10).
- 다만, 표본으로 추출된 섬유로 제작된 도면의 수는 총 1951점의 기록물 중 단 2점, 육안으로 미생물 오염이 확인되는 기록물 수는 단 22점에 그쳐 보다 정확한 통계적 분석을 위해서는 더 많은 표본이 필요할 것으로 판단된다. 미생물 활성도 최댓값(5171 RLU)을 나타낸 기록물 재질은 양지이며, 도면(섬유), 도면(지류)에서 1000 RLU가 초과하는 기록물이 확인되었다. 미생물 활성도 빈도분석 결과 모든 기록물에서 100 RLU 미만의 값이 절대적으로 많이 측정되었음을 확인할 수 있었다(Table 10).
- 생물량에 따른 미생물 활성도 수치는 세포수에 비례하여 증가하는 경향을 나타냈다(Table 8). 미생물량의 증가량에 따라 미생물 활성도는 초기 급격하게 증가하나, 점차 증가율이 둔화된다는 것을 확인할 수 있었다(Figure 4, 5).
- 보존서고 2, 보존서고 4, 보존서고 9에서 보관 중인 일부 기록물에서 1000 RLU를 초과하는 미생물 활성도가 확인되었다. 특히 보존서고 9에서는 최고 미생물 활성도 수치인 5071 RLU가 확인되기도 하였다.
- 외부 대비 보존서고 내 미생물량은 약 30%정도 수준으로 확인되었으며, 복도와 보존서고 내의 차이는 미미하였다. 보존서고의 층수가 높을수록 대체적으로 미생물량이 감소하는 경향을 나타냈다(Table 5). 다만, 보존서고의 특성상 출입인원의 변동, 출입문의 개방여부 등에 따라 추후 측정시마다 다른 결과를 나타낼 수 있을 것으로 예상되었다.
- 상대습도의 경우 모든 서고에서 45-55% 범위 내에서 변화가 나타나고 있었으며, 시간에 따른 편차는 5-10% 사이에서 발생되고 있었다(Figure 7). 복도의 경우 보존서고보다 약 2℃정도 낮은 19.5-20℃ 범위에서 변화가 나타나고 있었으며, 상대습도가 보존서고에 비해 월등히 높은 75-80%를 유지하고 있음이 확인되었다. 특히 일정기간동안 습도가 점차 낮아지거나 증가하는 경향을 보이기도 하였다(Figure 6, 7).
- 생물량에 따른 ATP는 세포수의 증가에 따라 비례하여 증가하는 양상을 나타냈으며, 일정 이상의 세포수가 증가되었을 때 미생물 활성도의 증가율이 둔화되는 것으로 확인되었다. 이는 ATP 측정 probe 내의 효소활성이 포화되었거나 높은 밀도로 존재하는 세포 간 자가사멸(apoptosis) 등이 원인으로 판단된다(Zamaraeva et al.
- 6×108 CFUs/mL을 확보하였다. 생물량에 따른 미생물 활성도 수치는 세포수에 비례하여 증가하는 경향을 나타냈다(Table 8). 미생물량의 증가량에 따라 미생물 활성도는 초기 급격하게 증가하나, 점차 증가율이 둔화된다는 것을 확인할 수 있었다(Figure 4, 5).
- 포집된 미생물은 대조군인 외부가 가장 높았으며, 공간체적 대비 미생물량은 보존서고 B, 보존서고 E, 보존서고 A 등의 순으로 높았다. 외부 대비 보존서고 내 미생물량은 약 30%정도 수준으로 확인되었으며, 복도와 보존서고 내의 차이는 미미하였다. 보존서고의 층수가 높을수록 대체적으로 미생물량이 감소하는 경향을 나타냈다(Table 5).
- 총 51점의 선정된 기록물 표본에서 미생물을 포집한 후 배양한 결과 진균류 보다 세균류의 양이 절대적으로 많음을 확인하였다. 포집된 미생물을 단일군집으로 분리하여 기록물 표면에 존재하는 진균류 12종, 세균류 39종을 분리하였다.
- 미소독 보존서고 9개실과 복도 1지점, 건물 외부 1곳에서 각 3회에 걸쳐 공기 중 부유 미생물물을 포집한 결과 다양한 진균류 및 세균류가 포집되었다(Figure 1). 포집된 미생물은 대조군인 외부가 가장 높았으며, 공간체적 대비 미생물량은 보존서고 B, 보존서고 E, 보존서고 A 등의 순으로 높았다. 외부 대비 보존서고 내 미생물량은 약 30%정도 수준으로 확인되었으며, 복도와 보존서고 내의 차이는 미미하였다.
- 총 51점의 선정된 기록물 표본에서 미생물을 포집한 후 배양한 결과 진균류 보다 세균류의 양이 절대적으로 많음을 확인하였다. 포집된 미생물을 단일군집으로 분리하여 기록물 표면에 존재하는 진균류 12종, 세균류 39종을 분리하였다.
후속연구
- 보존서고의 층수가 높을수록 대체적으로 미생물량이 감소하는 경향을 나타냈다(Table 5). 다만, 보존서고의 특성상 출입인원의 변동, 출입문의 개방여부 등에 따라 추후 측정시마다 다른 결과를 나타낼 수 있을 것으로 예상되었다.
- 또한 육안상 기록물 표면에서 미생물의 생장흔적이 확인되는 기록물을 대상으로 미생물 활성도 분석을 수행한 결과, 오염여부가 확인되는 기록물에서 평균 미생물 활성도와 최대 미생물활성도 수치가 높은 것으로 확인되었다(Table 9). 다만, 표본으로 추출된 섬유로 제작된 도면의 수는 총 1951점의 기록물 중 단 2점, 육안으로 미생물 오염이 확인되는 기록물 수는 단 22점에 그쳐 보다 정확한 통계적 분석을 위해서는 더 많은 표본이 필요할 것으로 판단된다. 미생물 활성도 최댓값(5171 RLU)을 나타낸 기록물 재질은 양지이며, 도면(섬유), 도면(지류)에서 1000 RLU가 초과하는 기록물이 확인되었다.
- , 1989). 따라서 기록물 오염도 탐색을 위한 ATP 생물 발광 반응 분석법의 적극적 활용과 최적 보존환경 조성 및 모니터링을 통해 선별적 소독처리 체제를 구축해야 할 것이다.
- 따라서 현재의 전수소독 체제에서 선별적 소독처리 체제로 전환할 수 있는 가능성이 매우 높다. 따라서 추후 균주에 의한 재질 가해 위험도 평가, 우점균주의 발현 조건 분석 등 추가적인 분석 및 조사를 수행하고, 이를 통한 선별적 소독을 위한 세부판단기준을 구축하여, 예산 및 소요인력의 절감해야 한다. 모든 기록물에 일괄된 단일 기준의 설정 보다는 기록물의 중요도, 오염도 등 세부기준을 선정하여 소독빈도를 정하는 것이 현실적인 대안이 될 것으로 사료된다(National Archives of Korea, 2013).
- 본 연구 결과가 향후 합리적이고 경제적인 소독처리방안 및 세부기준수립의 기반자료로 활용되기를 기대한다.
- 현재 공공 기록물을 대상으로 수행되어지는 전수소독체제에서 선별적 소독으로의 전환을 위해서는 종합적인 진단체계 및 세부적인 평가기준이 마련되어야 한다. 이를 위해서는 현재 보관 중인 기록물에 존재하는 미생물 현황, 오염도 지표, 보존환경 분석 등 기초조사가 우선적으로 이루어져야 할 것이다. 이에 본 연구에서는 유전학적 동정기술을 적용하여 기록물 표면에 존재하는 미생물의 현황을 파악하고, ATP 생물 발광 반응 분석법을 적용하여 기록물 내 미생물 오염도를 객관적인 지표로 산정하고자 한다.
- 모든 기록물에 일괄된 단일 기준의 설정 보다는 기록물의 중요도, 오염도 등 세부기준을 선정하여 소독빈도를 정하는 것이 현실적인 대안이 될 것으로 사료된다(National Archives of Korea, 2013). 이에 대한 구체적인 방안으로는 현재 국가기록원에서 보유하고 있는 기록물을 중요기록물(고기록물 포함)과 일반기록물로 등급을 구분하고, 중요기록물 및 고기록물의 경우 현재와 동일한 주기적 소독처리를 원칙으로 하며, 일반기록물의 경우 처리 빈도를 낮추거나 미생물 등 문제 발생 시 소독처리를 실시하는 이원화하는 합리적 방안을 도입해야 한다. 단, 일반기록물을 대상으로 하는 선별적 소독처리체제는 소독처리의 빈도를 줄이거나 소독처리를 선택적으로 수행하기 때문에 반드시 항온항습이 유지되는 공간에서 보관하고, 주기적으로 미생물 오염도를 모니터링 해야 한다.
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