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Jeju Crossbred Horses 정액 생산 시 Pentoxifylline 농도가 정자 성상에 미치는 영향
Effect of Pentoxifylline Concentration on Sperm Quality in Jeju Crossbred Horses 원문보기

Journal of embryo transfer = 한국수정란이식학회지, v.33 no.1, 2018년, pp.17 - 22  

박설화 (농촌진흥청 국립축산과학원) ,  신상민 (농촌진흥청 국립축산과학원) ,  양병철 (농촌진흥청 국립축산과학원) ,  김남영 (농촌진흥청 국립축산과학원) ,  우제훈 (농촌진흥청 국립축산과학원) ,  신문철 (농촌진흥청 국립축산과학원) ,  유지현 (농촌진흥청 국립축산과학원) ,  손준규 (농촌진흥청 국립축산과학원)

초록
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본 연구에서는 제주산마의 액상정액 및 동결정액의 성상 개선을 위하여 펜톡시필린 수준을 설정하여 정자의 운동성, 생존율, 정자막 온전성을 평가하였다. 말 동결-융해 정액의 30분 경과 후 정액성상 비교 결과 펜톡시필린 4mM(T1)처리구와 8mM(T2)처리구에서 Progressive Motility(PM)가 $53.25{\pm}2.87$, $50.28{\pm}2.14$$40.09{\pm}5.15$$41.27{\pm}2.82$인 대조구와 16mM(T3)에 유의적으로 높게 나타났으며(p<0.05), Progressive Fast Motility(PFM)도 펜톡시필린 4mM(T1)처리구와 8mM(T2)처리구가 각각 $22.44{\pm}1.62$$ 22.74{\pm}3.07$로 대조구와 16mM(T3) 처리구의 $13.47{\pm}1.48$$14.66{\pm}3.68$ 보다 유의적으로 높게 나타났다(p<0.05). 말 동결-융해 정액의 30분 경과 후 정액성상 비교 결과에서는 총 운동성(Total Motility)에서 T1와 T2가 $68.96{\pm}1.64$$67.90{\pm}6.72$$53.48{\pm}4.84$$58.14{\pm}2.65$인 대조구와 T3에 비해 유의적으로 높은 운동성을 보였다(p<0.05). 이상의 결과를 종합해 볼 때 펜톡시필린 4mM와 8mM를 처리했을 때 대조구보다 정자의 운동성을 증진시키는 효과가 있었으며, 펜톡시필린 16mM 이상의 처리에서는 정자 성상에 좋지 않은 영향을 미치는 것을 확인할 수 있었다. 이러한 결과는 활성산소를 억제하는 효과가 액상정액 보존 과정에서 발생하는 ROS로부터 정자를 안정적으로 보호하는 것으로 판단되며, 동결-융해 정액의 펜톡시필린 처리구 4mM 첨가구에서 다른 처리구보다 융해 후 1시간 동안 총운동성이 약 10%가량 높은 경향을 나타내었다. 펜톡시필린 처리가 동결-융해 후 정자의 운동성을 10% 이상 개선시킨다는 Taylor 등(2013)의 보고와도 비슷한 경향을 보였으며, 펜톡시필린이 동결-융해 후 정자 운동성 향상 등 정자 성상을 개선하는 것으로 판단된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

This study was conducted to determine the effect of pentoxifylline levels on sperm motility, survival rate, sperm membrane integrity of frozen semen and fresh-extended equine semen in Jeju cross-bred horses. As a result of sperm characteristic comparison depending on pentoxifylline levles at 30 minu...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 하지만 Stanic 등(2002)의 연구에서는 동결 전 펜톡시필린 처리가 처리하지 않은 구에 비해 운동성저하와 LIN의 감소를 일으킨다고 보고하였다. 본 연구는 동결정액의 생존율 향상을 위한 기초 연구로서 국립축산과학원 난지축산연구소에서 한라마의 액상정액 및 동결정액의 성상 개선을 위하여 펜톡시필린처리 수준에 따른 정자의 운동성, 생존율, 정자막 온전성을 평가・분석하기 위해 수행하였다.
  • 본 연구에서는 제주산마의 액상정액 및 동결정액의 성상 개선을 위하여 펜톡시필린 수준을 설정하여 정자의 운동성, 생존율, 정자막 온전성을 평가하였다. 말 동결-융해 정액의 30분 경과 후 정액성상 비교 결과 펜톡시필린 4mM(T1)처리구와 8mM(T2)처리구에서 Progressive Motility(PM)가 53.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
말 정액 채취 시 정자의 성상에 영향을 미치는 것은? 말 정액 채취 시 원정액의 품질과 정액채취 방법, 원심분리 방법, 동결 속도 등 정자의 성상에 많은 영향을 미치는 것으로 보고되어지고 있다(Amann와 Pickett 1987, Ecot 등, 2000). 이처럼 말에서 정자의 이용 기술은 냉장 및 동결체계에 관한 여러 연구가 진행되고 있으며, 결과 또한 안정적으로 보고되고 있으나(Loomis and Graham, 2008, Backman 등, 2004), 국내의 경우 경주용(더러브렛종) 말은 자연종부에 의존하고 있어 인공번식에 필요한 정액 채취, 정자의 냉장 및 동결 기술 등 인공수정에 관한 연구는 미흡한 실정이다.
Phosphodiesterase란 무엇인가? Phosphodiesterase(PDE)는 정자 내 효소로써의 인산이에스테르 결합을 깨뜨리며 cAMP(cyclic Adenosine monophosphate)를 AMP로 변화시킨다. cAMP는 정자의 첨체반응과 정자 운동에 메신저 역할을 하며, PDE 억제제인 펜톡시필린 첨가시 cAMP의 인산화를 방지하여 세포막 사이의 cAMP농도가 높아지는 효과가 있다.
정자막 온전성 검사를 정자의 수정능 평가의 지표로 사용하는 이유는? CASA system을 이용한 운동성 검사와 정자세포의 생사검사, 정자막 온전성 검사를 수행하였다. 정자 세포막 온전성은 정자의 대사 뿐만 아니라 난자와의 수정, 정자의 수정능획득 및 첨체반응과도 밀접한 관계가 있어 정자의 수정능 평가에 유용한 지표로 사용되고 있다. 펜톡시필린 첨가는 조기 첨체반응을 방지하고 수정률을 높이며(Henkel 등, 2003), Zhang 등(2005)은 활성산소를 억제하는 효과가 있다고 보고하였다.
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참고문헌 (15)

  1. Amann RP and Pickett BW. 1987. Principles of cryopreservation and a review of cryopreservation of stallion spermatozoa. J. Equine Vet. Sci. 7:145-173. 

  2. Aurich C. 2008. Recent advances in cooled semen technology. Animal Reproduction Science : 107:268e75. 

  3. Backman T, Bruemmer JE, Graham JK and Squires EL. 2004. Pregnancy rates of mares inseminated with semen cooled for 18 hours and then frozen. American Society of Animal Science. 82: 690-694. 

  4. Ecot P, Vidament M, deMornac A, Perigault K, Clement F and Palmer E. 2000. Freezing of stallion semen: interactions among cooling treatments, semen extenders and stallions. J. Reprod. Fertil. 56:141-150. 

  5. Gradil CM and Ball BA. 2000. The use of pentoxifylline to improve motility of cryopreserved equine spermatazoa. Theriogenology 54: 1041-7. 

  6. Hassanpour H, Mirshokraei P, Tajik P and Haghparast A. 2010. In vitro effects of pentoxifylline on kinematics parameters, capacitation, and acrosome reaction of ram epididymal sperm. Comparative. Clinical Pathology. 19: 377-81. 

  7. Henkel, R.R, Schill and W.B, 2003. Sperm preparation for ART. Reproductive Biology and Endocrinology 1, 108. 

  8. Loomis PR and Graham JK. 2008. Commercial semen freezing: individual male variation in cryosurvival and the response of stallion sperm to customized freezing protocols. Animal reproduction science 105: 119-128. 

  9. Marques A, Arruda RP, Celeghini ECC, Gobesso AAO and Neves Neto JR. 2002. Effects of ascorbic acid and pentoxifylline on equine cryopreserved semen submitted to in vitro incubation. Theriogenology 58: 257-60. 

  10. Nie GJ and Wenzel JGW. 2001. Adaptation of the hypo-osmotic swelling test to assess functional integrity of stallion spermatozoal plasma membranes. Theriogenology 55:1005-18. 

  11. Ortgies F, Klewitz J, Gorgens A, Martinsson G and Sieme H. 2012. Effect of procaine, pentoxifylline and trolox on capacitation and hyperactivation of stallion spermatozoa. Andrologia 44:130-8. 

  12. Stanic P, Sonicki Z and Suchanek E. 2002. Effect of pentoxifylline on motility and membrane integrity of cryopreserved human spermatozoa. International Journal of Andrology 25:186-90. 

  13. Taylor D, Ryan M, Julia L, Lulu Cheng, Anne C, Cheryl A and Rebecca K. 2013. Effects of Pentoxifylline, Caffeine, and Taurine on Post-Thaw Motility and Longevity of Equine Frozen Semen. Journal of Equine Veterinary Science. 33: 615-621.\ 

  14. Vidament M. 2005. French field results(1985-2005) on factors affecting fertility of frozen stallion semen. Anim. Reprod. Sci. 89:115-136. 

  15. Zhang, X, Sharma, R.K, Agarwal, A and Falcone, T, 2005. Effect of pentoxifylline in reducing oxidative stress-induced embryotoxicity. Journal of Assisted Reproduction and Genetics 22, 415-417. 

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