$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

구두충(Longicollum pagrosomi)에 감염된 참돔(Pagrus major)의 Heat Shock Protein 70 (Hsp70) 발현
Expression of a Heat Shock Protein 70 (Hsp70) in Red Seabream Pagrus major Infected with Longicollum pagrosomi 원문보기

한국수산과학회지 = Korean journal of fisheries and aquatic sciences, v.51 no.2, 2018년, pp.163 - 169  

박형준 (국립수산과학원 양식관리과) ,  민병화 (동해수산연구소 양식산업과)

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

This study examined the expression of heat shock protein 70 (Hsp70) in red seabream Pagrus major infected by the, acanthocephalan parasites Longicollum pagrosomi. We cloned the full-length Hsp70 cDNA from the liver of the red seabream. The full-length cDNA had a 1,950 bp open reading frame (ORF) tha...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

문제 정의

  • , 2012). 따라서, 본 연구에서는 참돔으로부터 분리된 Hsp70의 분자생물학적 특성과 발현분석을 통해 질병 및 스트레스로 인한 폐사를 막기 위한 기초적인 생체방어메커니즘을 조사하고자 한다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
참돔(Pagrus major)의 특징은 무엇인가? 참돔(Pagrus major)은 한국의 주요 해산양식어류로써 고급어종으로 분류되고 있으며, 수요가 점점 증가되고 있을 뿐만 아니라, 활선어로서 수출되어 외화획득에도 상당한 몫을 차지하고 있다(Pyen and Jo, 1982). 주로 한국의 남해안에서 해상가두리 양식을 통해 생산량이 증가하고 있지만, 참돔 양식에 있어 종종 고수온, 밀식, 외상, 저산소(Hypoxia), 어병 세균 및 바이러스의 감염을 통한 스트레스로 인해 심각한 폐사를 유발하기도 하여 양식어가 소득에 많은 영향을 미치고 있다(Kader et al.
Heat shock protein (Hsp)이란 무엇인가? Heat shock protein (Hsp)은 모든 생물에서 계통발생학적으로 잘 보존되어 있고, 온도뿐만 아니라 염분, 중금속, 활성산소 및 미생물의 감염을 비롯한 여러가지 스트레스 요인에 의해 높은 발현을 보이는 스트레스 단백질로 알려져 있다(Beckmann et al., 1990).
Hsps중 Hps70의 특징은 무엇인가? , 2002). 이 중, Hsp70은 Hsp family 중 가장 널리 알려져 있는 단백질 중 하나로, 인간(Homo sapiens)뿐만 아니라 제브라피쉬(Danio rerio), 무지개송어(Oncorhynchus mykiss), humphead snapper Lutjanus sanguineus 등 여러 경골 어류에서 보고되어진 바 있으며, 환경조건의 변화나 미생물의 감염으로 인해 손상된 세포나 단백질의 회복을 돕는다(Hutchison et al., 1994; Graser et al.
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (31)

  1. Alava JJ and Aguirre WE. 2005. Scanning electron microscopy of Neoechinorhynchus sp. (Acanthocephala: Neoechinorhynchidae), a possible new species of intestinal parasite of the tallfin croaker Micropogoni asaltipinnis (Gunther, 1864). Parasitol Latinoam 60, 48-53. http://dx.doi.org/10.4067/S0717-77122005000100007. 

  2. Alexander JB and Ingram GA. 1992. Noncellular nonspecific defense mechanisms of fish. In: Faisal M, Hetrick FM (Eds), Ann Rev Fish Dis 2, 249-279. https://doi.org/10.1016/0959- 8030(92)90066-7. 

  3. Basu S, Binder RJ, Ramalingam T and Srivastava PK. 2001. CD91 is a common receptor for heat shock proteins gp96, hsp90, hsp70, and calreticulin. Immunity 14, 303-313. https://doi.org/10.1016/S1074-7613(01)00111-X. 

  4. Basu N, Todgham, AE, Ackerman PA, Bibeau MR, Nakano K, Schulte PM and Iwama K. 2002. Heat shock protein genes and their functional significance in fish. Gene 295, 173-183. https://doi.org/10.1016/S0378-1119(02)00687-X. 

  5. Beckmann RP, Mizzen LE and Welch WJ. 1990. Interaction of HSP70 with newly synthesized proteins: implications for protein folding and assembly. Science 248, 850-854. 

  6. Chaicharn A and Bullock WL. 1967. The histopathology of acanthocephalan infections in suckers with observations on the intestinal histology of two species of catostomid fishes. Acta Zool 48, 19-42. https://doi.org/10.1111/j.1463-6395.1967.tb00130.x. 

  7. Dalmo RA, Ingebrigtsen K and Bogwald J. 1997. Non-specific defence mechanisms in fish, with particular reference to the reticuloendothelial system (RES). J Fish Dis 20, 241-273. https://doi.org/10.1046/j.1365-2761.1997.00302. 

  8. Ellis AE. 1990. Lysozyme assays. Tech Fish Immunol 1, Fl101-103. 

  9. Forsyth RB, Candido EPM, Babich SL and Iwama GK. 1997. Stress protein expression in coho salmon with bacterial kidney disease. J Aquat Anim Health 9, 8-25. 

  10. Frank SN, Godehardt S, Nachev M, Trubiroha A, Kolas W and Sures B. 2013. Influence of the cestode Ligula intestinalis and the acanthocephalan Polymorphus minutus on levels of heat shock proteins (HSP70) and metallothioneins in their fish and crustacean intermediate hosts. Environ Poll 180, 173-179. https://doi.org/10.1016/j.envpol.2013.05.014. 

  11. Graser RT, Malnar-Dragojevic D and Vincek V. 1996. Cloning and characterization of a 70 kd heat shock cognate (hsc70) gene from the zebrafish (Danio rerio). Genetica 98, 273-276. 

  12. Grinde B. 1989. Lysozyme from rainbow trout, Salmo gairdneri Richardson, as an antibacterial agent against fish pathogen. J Fish Dis 12, 95-104. https://doi.org/10.1111/j.1365-2761.1989.tb00281.x. 

  13. Hatai K, Horita Y and Kubota SS. 1987. A histological study of longicollosis in cultured red seabream, Pagrus major. Fish Pathol 33, 31-32. https://doi.org/10.3147/jsfp.22.31. 

  14. He S, Liang XF, Li RQ, Li GG, Wang L and Shen D. 2010. Molecular characterization of heat shock protein 70 genes in the liver of three warm freshwater fishes with differential tolerance to microcystin-LR. J Biochem Mol Toxicol 24, 293-302. https://doi.org/10.1002/jbt.20338. 

  15. Hutchison KA, Dittmar KD, Czar MJ and Pratt WB. 1994. Proof that hsp70 is required for assembly of the glucocorticoid receptor into a heterocomplex with hsp90. J Bio Chem 269, 5043-5049. 

  16. Iwama GK, Thomas PT, Forsyth RB and Vijayan MM. 1998. Heat shock protein expression in fish Rev Fish Biol Fisher 8, 35-36. 

  17. Kader MA, Bulbul M, Koshio S, Ishijkawa M, Yokoyama S, Nquyen BT and Komilus CF. 2012. Effect of complete replacement of fishmeal by dehulled soybean meal with crude attractants supplementation in diets for red seabream, Pagrus major. Aquaculture 20, 109-116. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2012.04.009. 

  18. Kim SR, Lee JS, Kim JH, Oh MJ, Kim CS, Park MA and Park JJ. 2011. Fine structure of Longicollum pagrosomi (Acanthocephala: Pomphorhynchidae) and intestinal histopathology of the red seabream, Pagrus major, infected with acanthocephalans. Parasitol Res 109, 175-184. 

  19. Mehlhorn H. 2008. Encyclopedia of parasitology. Springer, Berlin, Germany, 3-39. 

  20. Mehlhorn H. 2011. Encyclopedic reference of parasitology: Diseases In: Treatment, Therapy, 2nded. Springer, Berlin, Germany, 10-25. 

  21. Nickol BB and Crompton DWT. 1985. Biology of the Acanthocephala. Cambridge University Press, London, U.K., 330-340. 

  22. Ojima N, Yamashita M and Watabe S, 2005. Quantitative mRNA expression profiling of heat-shock protein families in rainbow trout cells. Biochem Biophys Res Commun 329, 51-57. https://doi.org/10.1016/j.bbrc. 2005.01.097. 

  23. Pyen CK and Jo JY. 1982. Seed production of red sea-bream, Chrysophrys major. J Kor Soc Fish Aqua Sci 15, 161-170. 

  24. Reite OB. 1997. Mast cells/eosinophilic granule cells of salmonids: staining properties and responses to noxious agents. Fish Shellfish Immunol 7, 567-584. https://doi.org/10.1006/fsim.1997.0108. 

  25. Roubal. 1993. Comparative histopathology of Longicollum (Acanthocephala: Pomphorhynchidae) infection in the alimentary tract and spleen of Acanthopagrusaustralis (Pisces: Sparidae). Int J Parasitol 23, 391-397. https://doi.org/10.1016/0020-7519(93)90015-Q. 

  26. Roux T, Saker A, Leroy C, Frantz C and Michel H. 1996. Low temperature nitriding mechanisms of austenitic stainless steels in N2. International J Fatigue 291-299. 

  27. Suzue K and Young RA. 1996. Adjuvant-free hsp70 fusion protein system elicits humoraland cellular immune responses to HIV-1 p24. J Immunol 156, 873-879. 

  28. Yoo JL and Janz DM. 2003. Tissue-specific HSP70 levels and reproductive physiological responses in fishes inhabiting a metal contaminated creek. Arch Environ Contam Toxicol 45, 110-120. 

  29. Zapata A. 1979. Ultrastructure study of the teleost fish kidney. Dev Comp Immunol 3, 55-65. https://doi/org/10.1016/S0145-305X(79)80006-3. 

  30. Zeng B and Wang W. 2007. Seasonal population dynamics of Pallisentis (Neosentis) celatus(Acanthocephala: Quadrigyridae) in the intestine of the rice-field eel Monopterus albus in China. J helminthol 81, 415-420. 

  31. Zhang X, Pang H P, Wu Z and Jian J. 2011. Molecular characterization of heat shock protein 70 gene transcripts during Vibrio harveyi infection of humphead snapper, Lutjanus sanguineus. Fish Physiol Biochem 37, 897-910. 

저자의 다른 논문 :

LOADING...

관련 콘텐츠

오픈액세스(OA) 유형

GOLD

오픈액세스 학술지에 출판된 논문

이 논문과 함께 이용한 콘텐츠

섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로