$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

그렐린이 혈관성 치매 쥐의 기억 손상에 미치는 효과
Effect of Ghrelin on Memory Impairment in a Rat Model of Vascular Dementia 원문보기

Journal of Korean academy of nursing = 대한간호학회지, v.49 no.3, 2019년, pp.317 - 328  

박종민 (경희대학교 간호과학대학) ,  김연정 (경희대학교 간호과학대학)

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Purpose: The purpose of this study was to identify the effect of ghrelin on memory impairment in a rat model of vascular dementia induced by chronic cerebral hypoperfusion. Methods: Randomized controlled groups and the posttest design were used. We established the representative animal model of vasc...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • 이외에 외상성 뇌 손상에서 백색질의 별아교세포(astorcyte)를 감소시켜 염증반응을 경감시켰다[22]. 따라서 선행연구들을 바탕으로 VaD에서 그렐린의 투여가 백색질 및 해마의 손상을 감소시키고 혈관신생을 통한 학습과 기억을 증진시키는 중재로서의 가능성을 검토하고자 한다. 그렐린으로 인해 해마에서 혈관신생이 유도된다면 충분한 혈액 공급으로 인하여 시냅스 가소성과 신경재생이 더욱 활발하게 일어나 기억 증진 효과가 있을 것이며, 또한 그렐린이백색질의 말이집탈락(demyelination)을 감소시킨다면 기억을 포함한뇌의 통합기능 향상에 효과가 있을 것이다.
  • 본 연구는 BCCAO로 유발된 VaD 쥐에게 그렐린을 투여한 후 기억손상에 미치는 효과를 규명하기 위한 무작위 대조군 사후설계이다.
  • 본 연구는 그렐린이 선행 연구에서 밝혀진 시냅스 가소성 및 신경재생의 효과 외에 만성 대뇌 저관류로 인한 기억 손상에 혈관내피 성장인자 신호 전달체계의 활성화로 미세혈관의 회복을 유도하여 기억증진의 효과를 입증함으로써 이론적 기초를 제공할 수 있다. 그리고 간호교육 측면에서 치매노인을 돌보는 간호사를 위한 교육과정이나 보수교육 프로그램에 VaD의 병태생리 및 최신 연구내용을 보완을 위한 교육 자료로 활용될 수 있으며, 간호연구 측면에서 그렐린으로 유도된 혈관신생이 손상된 미세혈관의 회복에 미치는 효과는 VaD 이외의 다른 뇌혈관 질환에 그렐린을 적용하는 추후 연구의 가능성을 제시할 수 있다.
  • 본 연구는 무작위 대조군 순수 실험연구로 그렐린의 투여가 BCCAO로 유발된 VaD 쥐의 기억 손상에 미치는 영향을 확인하고자 시행되었으며, 행동 실험 및 뇌 조직을 통한 해마와 백색질의 변화를 분자생물학적 기법으로 측정하였다. 본연구의 결과 그렐린 투여 후 백색질 및 해마의 미세혈관 손상이 감소되었고 혈관신생이 증진되었는데, 이는 행동실험의 결과인 공간 학습과 기억의 증진으로 관찰되었다.
  • 본 연구의 목적은 VaD 쥐에게 그렐린을 4주간 복강 내 투여한 후 기억 손상에 미치는 효과를 행동학적, 분자생물학적으로 파악하기 위함이다.
  • 본 연구는 K대학교 동물실험윤리위원회의 승인(승인번호: KHUASP(SE)-16-046)을 받은 후 규정에 따라 실행하였다. 본 연구자는 실험동물 복지 및 윤리 교육과정을 이수하였으며, 동물 다루기, 마취제 투여, 통증 감소를 위한 교육을 받았다. 또한 실험동물의 3R원칙인 실험동물의 대체(replacement), 실험동물 수의 감소(reduction), 동물실험의 세련화(refinement)에 따라 동물 실험 방법을 준수하였다.
  • 이에 본 연구는 그렐린이 BCCAO로 유발된 VaD 쥐의 기억 손상에 미치는 효과를 행동학적, 분자생물학적 방법을 통해 확인하여 중재 개발을 위한 기초 자료로 활용하고자 하였다.
  • VaD는 AD와 달리 혈관성 위험인자를 조기에 조절하면 치매를 예방할 수 있고, 또한 발병 후에도 원활한 혈액공급이 이루어진다면 시냅스 가소성을 증가시켜서 기억 손상을 늦출 수 있다[26]. 이에 본 연구자들은 VaD에 적합한 간호 중재를 개발하기 위한 초석을 다지고자 기초실험 연구를 시행하였다. 그렐린은 내인성 호르몬으로 정확한 효과를 예측하기 위하여 본 연구에서는 복강 내 투여 방법을 사용하였지만, 추후 간호 중재 개발을 위하여 식이 제한(dietaryrestriction) 또는 간헐적 단식(intermittent fasting)과 같은 식이요법으로 연구를 확대할 예정이다.

가설 설정

  • 1) 가설 1. 그렐린 투여군은 비투여군보다 공간 학습과 기억 능력이 향상될 것이다.
  • 2) 가설 2. 그렐린 투여군은 비투여군보다 백색질의 말이집 손상이 더 적을 것이다.
  • ② 부가설 2. 그렐린 투여군은 비투여군보다 해마의 VEGFR2 발현량이 더 많을 것이다.
  • ③ 부가설 3. 그렐린 투여군은 비투여군보다 해마의 phospho-Akt발현량이 더 많을 것이다.
  • ③ 부가설 3. 그렐린 투여군은 비투여군보다 해마의 미세혈관의길이가 더 길 것이다.
  • ② 부가설 2. 그렐린 투여군은 비투여군보다 해마의 미세혈관의수가 더 적을 것이다.
  • 3) 가설 3. 그렐린 투여군은 비투여군보다 해마의 신경세포와 미세혈관의 손상 정도가 더 적을 것이다.
  • ① 부가설 1. 그렐린 투여군은 비투여군보다 해마의 신경세포의수가 더 많을 것이다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
저산소증으로 유발된 산화 스트레스는 어떤 현상을 유발하는 가? VaD를 일으키는 병리적 기전은 아직 명확히 밝혀지지 않았으나, AD와는 달리 만성 대뇌 저관류로 유도된 저산소증으로 인하여 산화 스트레스, 염증, 혈관 및 혈액-뇌 장벽의 손상이 동반된다고 알려져 있다[2]. 현재까지의 연구 결과를 살펴보면 저산소증으로 유발된 산화 스트레스는 미토콘드리아의 기능 이상을 유발하며, 체내의 활성산소를 증가시켜서 혈관과 신경세포에 손상을 일으킨다[3]. 혈류 감소로 인한 저산소증은 또한 미세혈관의 형태 및 기능 이상을 일으켜 내피세포의 기능 장애, 혈액-뇌 장벽의 붕괴 및 염증을 유발한다[4].
그렐린의 투여가 BCCAO로 유발된 VaD 쥐의 기억 손상에 미치는 영향은? 본 연구는 무작위 대조군 순수 실험연구로 그렐린의 투여가 BCCAO로 유발된 VaD 쥐의 기억 손상에 미치는 영향을 확인하고자 시행되었으며, 행동 실험 및 뇌 조직을 통한 해마와 백색질의 변화를 분자생물학적 기법으로 측정하였다. 본연구의 결과 그렐린 투여 후 백색질 및 해마의 미세혈관 손상이 감소되었고 혈관신생이 증진되었는데, 이는 행동실험의 결과인 공간 학습과 기억의 증진으로 관찰되었다.
혈관성 치매(vascular dementia [VaD])는 어떤 질환인가? 혈관성 치매(vascular dementia [VaD])는 혈관의 폐색이나 혈관질환으로 발생한 만성 대뇌 저관류(chronic cerebral hypoperfusion)로 인하여 뇌의 혈류량이 감소하면서 점진적으로 기억력의 저하, 문제해결능력의 감퇴 및 사고 장애 등의 증상이 나타나는 질환으로 전체 치매 중 알츠하이머성 치매(Alzheimer’s disease [AD]) 다음으로 가장 큰 비율을 차지하고 있다[1]. VaD를 일으키는 병리적 기전은 아직 명확히 밝혀지지 않았으나, AD와는 달리 만성 대뇌 저관류로 유도된 저산소증으로 인하여 산화 스트레스, 염증, 혈관 및 혈액-뇌 장벽의 손상이 동반된다고 알려져 있다[2].
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (45)

  1. Iadecola C. The pathobiology of vascular dementia. Neuron. 2013;80(4):844-866. https://doi.org/10.1016/j.neuron.2013.10.008 

  2. Kalaria RN. The pathology and pathophysiology of vascular dementia. Neuropharmacology. 2018;134(B):226-239. https://doi.org/10.1016/j.neuropharm.2017.12.030 

  3. Ma X, Sun Z, Liu Y, Jia Y, Zhang B, Zhang J. Resveratrol improves cognition and reduces oxidative stress in rats with vascular dementia. Neural Regeneration Research. 2013;8(22):2050-2059. https://doi.org/10.3969/j.issn.1673-5374.2013.22.004 

  4. Candelario-Jalil E, Thompson J, Taheri S, Grossetete M, Adair JC, Edmonds E, et al. Matrix metalloproteinases are associated with increased blood-brain barrier opening in vascular cognitive impairment. Stroke. 2011;42(5):1345-1350. https://doi.org/10.1161/strokeaha.110.600825 

  5. Chen J, Cui X, Zacharek A, Cui Y, Roberts C, Chopp M. White matter damage and the effect of matrix metalloproteinases in type 2 diabetic mice after stroke. Stroke. 2011;42(2):445-452. https://doi.org/10.1161/strokeaha.110.596486 

  6. Simpson JE, Fernando MS, Clark L, Ince PG, Matthews F, Forster G, et al. White matter lesions in an unselected cohort of the elderly: Astrocytic, microglial and oligodendrocyte precursor cell responses. Neuropathology and Applied Neurobiology. 2007;33(4):410-419. https://doi.org/10.1111/j.1365-2990.2007.00828.x 

  7. Park HR, Park M, Choi J, Park KY, Chung HY, Lee J. A high-fat diet impairs neurogenesis: Involvement of lipid peroxidation and brain-derived neurotrophic factor. Neuroscience Letters. 2010;482(3):235-239. https://doi.org/10.1016/j.neulet.2010.07.046 

  8. O'Brien JT, Thomas A. Vascular dementia. The Lancet. 2015;386(10004):1698-1706. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(15)00463-8 

  9. Jiwa NS, Garrard P, Hainsworth AH. Experimental models of vascular dementia and vascular cognitive impairment: A systematic review. Journal of Neurochemistry. 2010;115(4):814-828. https://doi.org/10.1111/j.1471-4159.2010.06958.x 

  10. Baskys A, Hou AC. Vascular dementia: Pharmacological treatment approaches and perspectives. Clinical Interventions in Aging. 2007;2(3):327-335. 

  11. Olazaran J, Reisberg B, Clare L, Cruz I, Pena-Casanova J, del Ser T, et al. Nonpharmacological therapies in Alzheimer's disease: A systematic review of efficacy. Dementia and Geriatric Cognitive Disorders. 2010;30(2):161-178. https://doi.org/10.1159/000316119 

  12. Andrews ZB. The extra-hypothalamic actions of ghrelin on neuronal function. Trends in Neurosciences. 2011;34(1):31-40. https://doi.org/10.1016/j.tins.2010.10.001 

  13. Park S. Ghrelin. Endocrinology and Metabolism. 2010; 25(4):258-263. https://doi.org/10.3803/enm.2010.25.4.258 

  14. Kojima M, Hosoda H, Date Y, Nakazato M, Matsuo H, Kangawa K. Ghrelin is a growth-hormone-releasing acylated peptide from stomach. Nature. 1999;402(6762):656-660. https://doi.org/10.1038/45230 

  15. Moon M, Kim S, Hwang L, Park S. Ghrelin regulates hippocampal neurogenesis in adult mice. Endocrine Journal. 2009;56(3):525-531. https://doi.org/10.1507/endocrj.K09E-089 

  16. Diano S, Farr SA, Benoit SC, McNay EC, da Silva I, Horvath B, et al. Ghrelin controls hippocampal spine synapse density and memory performance. Nature Neuroscience. 2006;9(3):381-388. https://doi.org/10.1038/nn1656 

  17. Carlini VP, Varas MM, Cragnolini AB, Schioth HB, Scimonelli TN, de Barioglio SR. Differential role of the hippocampus, amygdala, and dorsal raphe nucleus in regulating feeding, memory, and anxiety-like behavioral responses to ghrelin. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2004;313(3):635-641. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2003.11.150 

  18. Liu Y, Chen L, Xu X, Vicaut E, Sercombe R. Both ischemic preconditioning and ghrelin administration protect hippocampus from ischemia/reperfusion and upregulate uncoupling protein-2. BMC Physiology. 2009;9:17. https://doi.org/10.1186/1472-6793-9-17 

  19. Miao Y, Xia Q, Hou Z, Zheng Y, Pan H, Zhu S. Ghrelin protects cortical neuron against focal ischemia/reperfusion in rats. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2007;359(3):795-800. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2007.05.192 

  20. Liu Y, Wang PS, Xie D, Liu K, Chen L. Ghrelin reduces injury of hippocampal neurons in a rat model of cerebral ischemia/reperfusion. Chinese Journal of Physiology. 2006;49(5):244-250. 

  21. Wang P, Xie ZH, Guo YJ, Zhao CP, Jiang H, Song Y, et al. VEGF-induced angiogenesis ameliorates the memory impairment in APP transgenic mouse model of Alzheimer's disease. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2011;411(3):620-626. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2011.07.003 

  22. Lopez NE, Krzyzaniak MJ, Blow C, Putnam J, Ortiz-Pomales Y, Hageny AM, et al. Ghrelin prevents disruption of the blood-brain barrier after traumatic brain injury. Journal of Neurotrauma. 2012;29(2):385-393. https://doi.org/10.1089/neu.2011.2053 

  23. Mead R. The design of experiments: Statistical principles for practical applications. Cambridge: Cambridge University Press; 1990. p. 7-8. 

  24. Spence KW, Lippitt R. An experimental test of the sign-gestalt theory of trial and error learning. Journal of Experimental Psychology. 1946;36(6):491-502. https://doi.org/10.1037/h0062419 

  25. Morris RGM, Garrud P, Rawlins JNP, O'Keefe J. Place navigation impaired in rats with hippocampal lesions. Nature. 1982;297(5868):681-683. https://doi.org/10.1038/297681a0 

  26. Venkat P, Chopp M, Chen J. Models and mechanisms of vascular dementia. Experimental Neurology. 2015;272:97-108. https://doi.org/10.1016/j.expneurol.2015.05.006 

  27. Kim Y, Kim S, Kim C, Sato T, Kojima M, Park S. Ghrelin is required for dietary restriction-induced enhancement of hippocampal neurogenesis: Lessons from ghrelin knockout mice. Endocrine Journal. 2015;62(3):269-275. https://doi.org/10.1507/endocrj.EJ14-0436 

  28. Hansen TK, Dall R, Hosoda H, Kojima M, Kangawa K, Christiansen JS, et al. Weight loss increases circulating levels of ghrelin in human obesity. Clinical Endocrinology. 2002;56(2):203-206. https://doi.org/10.1046/j.0300-0664.2001.01456.x 

  29. Harvey J. Leptin regulation of neuronal morphology and hippocampal synaptic function. Frontiers in Synaptic Neuroscience. 2013;5:3. https://doi.org/10.3389/fnsyn.2013.00003 

  30. Irving AJ, Harvey J. Leptin regulation of hippocampal synaptic function in health and disease. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences. 2014;369(1633):20130155. https://doi.org/10.1098/rstb.2013.0155 

  31. Li E, Kim Y, Kim S, Park S. Ghrelin-induced hippocampal neurogenesis and enhancement of cognitive function are mediated independently of GH/IGF-1 axis: Lessons from the spontaneous dwarf rats. Endocrine Journal. 2013;60(9):1065-1075. https://doi.org/10.1507/endocrj.ej13-0045 

  32. Chen L, Xing T, Wang M, Miao Y, Tang M, Chen J, et al. Local infusion of ghrelin enhanced hippocampal synaptic plasticity and spatial memory through activation of phosphoinositide 3­kinase in the dentate gyrus of adult rats. European Journal of Neuroscience. 2011;33(2):266-275. https://doi.org/10.1111/j.1460-9568.2010.07491.x 

  33. Innocenti GM. General organization of callosal connections in the cerebral cortex. In: Jones EG, Peters A, editors. Sensory-Motor Areas and Aspects of Cortical Connectivity. Boston (MA): Springer US; 1986. p. 291-353. 

  34. Wu XP, Gao YJ, Yang JL, Xu M, Sun DH. Quantitative measurement to evaluate morphological changes of the corpus callosum in patients with subcortical ischemic vascular dementia. Acta Radiologica. 2015;56(2):214-218. https://doi.org/10.1177/0284185114520863 

  35. Lee JY, Oh TH, Yune TY. Ghrelin inhibits hydrogen peroxide-induced apoptotic cell death of oligodendrocytes via ERK and p38MAPK signaling. Endocrinology. 2011;152(6):2377-2386. https://doi.org/10.1210/en.2011-0090 

  36. Neto CJBF, Paganelli RA, Benetoli A, Lima KCM, Milani H. Permanent, 3-stage, 4-vessel occlusion as a model of chronic and progressive brain hypoperfusion in rats: A neurohistological and behavioral analysis. Behavioural Brain Research. 2005;160(2):312-322. https://doi.org/10.1016/j.bbr.2004.12.016 

  37. Jantaratnotai N, Ryu JK, Schwab C, McGeer PL, McLarnon JG. Comparison of vascular perturbations in an $A{\beta}$ -injected animal model and in AD brain. International Journal of Alzheimer's Disease. 2011;2011:918280. https://doi.org/10.4061/2011/918280 

  38. Carmeliet P, Jain RK. Angiogenesis in cancer and other diseases. Nature. 2000;407(6801):249-257. https://doi.org/10.1038/35025220 

  39. Plate KH. Mechanisms of angiogenesis in the brain. Journal of Neuropathology and Experimental Neurology. 1999;58(4):313-320. https://doi.org/10.1097/00005072-199904000-00001 

  40. Fan Y, Yang GY. Therapeutic angiogenesis for brain ischemia: A brief review. Journal of Neuroimmune Pharmacology. 2007;2(3):284-289. https://doi.org/10.1007/s11481-007-9073-3 

  41. Pillai A, Mahadik SP. Differential effects of haloperidol and olanzapine on levels of vascular endothelial growth factor and angiogenesis in rat hippocampus. Schizophrenia Research. 2006;87(1-3):48-59. https://doi.org/10.1016/j.schres.2006.06.017 

  42. Shiojima I, Walsh K. Role of Akt signaling in vascular homeostasis and angiogenesis. Circulation Research. 2002;90(12):1243-1250. https://doi.org/10.1161/01.res.0000022200.71892.9f 

  43. Wang L, Chen Q, Li G, Ke D. Ghrelin stimulates angiogenesis via GHSR1a-dependent MEK/ERK and PI3K/Akt signal pathways in rat cardiac microvascular endothelial cells. Peptides. 2012;33(1):92-100. https://doi.org/10.1016/j.peptides.2011.11.001 

  44. Chen X, Chen Q, Wang L, Li G. Ghrelin induces cell migration through GHSR1a-mediated PI3K/Akt/eNOS/NO signaling pathway in endothelial progenitor cells. Metabolism. 2013;62(5):743-752. https://doi.org/10.1016/j.metabol.2012.09.014 

  45. Rossi F, Castelli A, Bianco MJ, Bertone C, Brama M, Santiemma V. Ghrelin induces proliferation in human aortic endothelial cells via ERK1/2 and PI3K/Akt activation. Peptides. 2008;29(11):2046-2051. https://doi.org/10.1016/j.peptides.2008.07.002 

저자의 다른 논문 :

LOADING...

관련 콘텐츠

오픈액세스(OA) 유형

GOLD

오픈액세스 학술지에 출판된 논문

이 논문과 함께 이용한 콘텐츠

저작권 관리 안내
섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로