자연수계 수산생물의 전염병 모니터링은 자연수계 및 양식 수산생물의 질병 관련성 및 상관관계 구명은 질병 발생 예방 및 확산 방지에 매우 중요한 역할을 한다. 2018년 해구 64개소에서 어류 39종 977마리 및 갑각류 14종 287마리를 선정하여 총 1,264마리에 대하여 병원체 감염 여부를 조사하였다. 어류는 법정전염병 2종(VHS, RSIVD) 및 비법정전염병 3종(MABVD, HRVD, LCD)을 분석하고 갑각류는 법정전염병 6종(WSD, IHHN, TS, IMN, YHD, WTD)을 분석하였다. 조사한 모든 시료에서 전염병이 검출되지 않았지만, 우리나라에서 조사한 자연수계 수산생물이 무병하여 청정국 또는 청정지위 선언에 중요한 정보를 제공할 것이다.
자연수계 수산생물의 전염병 모니터링은 자연수계 및 양식 수산생물의 질병 관련성 및 상관관계 구명은 질병 발생 예방 및 확산 방지에 매우 중요한 역할을 한다. 2018년 해구 64개소에서 어류 39종 977마리 및 갑각류 14종 287마리를 선정하여 총 1,264마리에 대하여 병원체 감염 여부를 조사하였다. 어류는 법정전염병 2종(VHS, RSIVD) 및 비법정전염병 3종(MABVD, HRVD, LCD)을 분석하고 갑각류는 법정전염병 6종(WSD, IHHN, TS, IMN, YHD, WTD)을 분석하였다. 조사한 모든 시료에서 전염병이 검출되지 않았지만, 우리나라에서 조사한 자연수계 수산생물이 무병하여 청정국 또는 청정지위 선언에 중요한 정보를 제공할 것이다.
Disease monitoring in wild aquatic animals is necessary to obtain information about disease occurrence, disease agents, and the transmission of diseases between wild and cultured species. In this study, we monitored viral diseases in wild marine fish and crustacea caught by trawl in Korea in April a...
Disease monitoring in wild aquatic animals is necessary to obtain information about disease occurrence, disease agents, and the transmission of diseases between wild and cultured species. In this study, we monitored viral diseases in wild marine fish and crustacea caught by trawl in Korea in April and October 2018. We monitored the viral diseases in 977 fish from 39 different species and 287 crustacea from 14 different species. In fish, we collected kidney and spleen to detect viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV), red sea bream iridovirus (RSIV), marine birnavirus (MABV), hirame rhabdovirus (HRV), and lymphocystis disease virus (LCDV). In crustacea, we monitored white spot syndrome virus (WSSV), infectious hypodermal and hematopoietic necrosis virus (IHHNV), taura syndrome virus (TSV), infectious myonecrosis virus (IMNV), yellowhead disease virus (YHDV), and white tail disease virus (WTDV) using pleopods, pereiopods, gills, muscle, and hepatopancreases. Although none of the viral diseases tested in this study were detected in the samples, these results will help disease control between aquaculture species and wild aquatic animals.
Disease monitoring in wild aquatic animals is necessary to obtain information about disease occurrence, disease agents, and the transmission of diseases between wild and cultured species. In this study, we monitored viral diseases in wild marine fish and crustacea caught by trawl in Korea in April and October 2018. We monitored the viral diseases in 977 fish from 39 different species and 287 crustacea from 14 different species. In fish, we collected kidney and spleen to detect viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV), red sea bream iridovirus (RSIV), marine birnavirus (MABV), hirame rhabdovirus (HRV), and lymphocystis disease virus (LCDV). In crustacea, we monitored white spot syndrome virus (WSSV), infectious hypodermal and hematopoietic necrosis virus (IHHNV), taura syndrome virus (TSV), infectious myonecrosis virus (IMNV), yellowhead disease virus (YHDV), and white tail disease virus (WTDV) using pleopods, pereiopods, gills, muscle, and hepatopancreases. Although none of the viral diseases tested in this study were detected in the samples, these results will help disease control between aquaculture species and wild aquatic animals.
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문제 정의
그 일환으로 질병 모니터링은 질병의 발 생을 감시하고 자국 내 특정 질병에 대해 무병하다는 청정국 또는 청정지역 선언에 기초자료로 활용될 수 있다. 본 연구에서는 국내 연근해의 어류를 대상으로 법정전염병 2종(바이러스성출혈성패혈증(VHS), 참돔이리도바이러스병(Red sea bream iridoviral disease; RSIVD)) 및 비법정전 염병 3종(마린버나바이러스병(Marine birnavirus disease; MABVD), 히라메랍도바이러스병(Hiramerhabdovirus disease; HRVD), 림포시스티스병(Lymphocystics disease;LCD))과 갑각류를 대상으로 법정전염병 6종(흰반점병 (WSD), 전염성피하및조혈기괴사증(Infectious hypodermal and haematopoietic necrosis; IHHN), 타우라증후군 (Taura syndrome; TS), 전염성근괴사증(Infectious myonecrosis; IMN), 노랑머리병(Yellowhead disease; YHD), 흰꼬리병(White tail disease; WTD))의 보유 또는 감염 상황에 대한 정보를 제공하고자 한다.
본 연구에서는 국내 연근해에서 채취된 수산생물에 대하여 PCR법으로 법정전염병 및 비법정전염병 감염 보유 유무를 조사하였다. VHS와 RSIVD는 해산어류에 많은 피해를 유발하는 질병으로 우리나라에서는 수산생물질병관리법 상 전염병으로 지정하여 관리하고 있다.
제안 방법
1에 나타내었으며 조사에서 채취된 시료는 -60°C에 보관하고 조사완료 후 실험실로 운반하여 -80°C에 보관하였다. 채취된 수산 생물은 크기를 측정하고 체표 및 해부 후 내부 장기를 관찰하여 전염병 감염여부에 대한 임상증상을 확인하였다. 어류는 해부하여 신장, 비장, 뇌를 적출하고 갑각류는 부속지, 근육, 아가미, 간췌장을 적출하였다.
어류는 해부하여 신장, 비장, 뇌를 적출하고 갑각류는 부속지, 근육, 아가미, 간췌장을 적출하였다. PCR 검사를 위하여 각 5마리씩 pooling하여 전염병 감염 또는 보유 유무를 분석하였다.
적출된 조직은 Biomek NXP (Beckman Coulter, USA)을 이용하여 제조사의 프로토콜에 따라 핵산을 추출하고 어류는 VHS, RSIVD, MABVD, HRVD, LCD를, 갑각류는 WSD, IHHN, TS, IMN, YHD, WTD에 대하여 PCR을 실시하였다. PCR mixture 조성 및 PCR 조건은, 법정전염병(VHS, RSIVD, WSD, IHHN, TS, IMN, YHD, WTD)의 경우 「수산생물병성감정지침서」에 따라 분석하였으며, 비법정전염병(MABVD, HRVD, LCD)은 이전에 보고된 논문의 방법에 따라 분석을 실시하였으며 세부사항은 Table 2와 같다.
2018년 해구 64개소에서 어류 39종 977마리 및 갑각류 14종 287마리를 선정하여 총 1,264마리에 대하여 병원체 감염 여부를 조사하였다. 어류는 법정전염병 2종(VHS, RSIVD) 및 비법정전염병 3종(MABVD, HRVD, LCD)을 분석하고 갑각류는 법정전염병 6종(WSD, IHHN, TS, IMN, YHD, WTD)을 분석하였다. 조사한 모든 시료에서 전염병이 검출되지 않았지만, 우리나라에서 조사한 자연수계 수산생물이 무병하여 청정국 또는 청정지위 선언에 중요한 정보를 제공할 것이다.
를 첨가하고 양성대조구는 국립수산과학원에서 제작한 양성표준물질을 사용하였다. PCR 산물은 QIAxcel (Qiagen, Germany)을 이용하여 전기영동을 실시하였다.
대상 데이터
국립수산과학원은 국내 해역의 자원량 조사를 위하여 근해어업조사를 연 2회 실시하고 있다. 2018년 4월과 10월에 탐구 20호, 21호, 22호의 저층트롤로 채취한 근해어업 조사 시료 중 각 해구에서 채취된 어류와 갑각류 중 채집 비율이 높은 품종을 전염병 모니터링 대상 생물로 선정하였다(Table 1). 시료가 채취된 해구는 Fig.
2018년 4월에는 해구 44개소에서 어류 29종 582마리 및 갑각류 11종 127마리를 모니터링 대상품종으로 선정하여 총 709마리를 분석하였고 2018년 10월에는 해구 40개소에서 어류 24종 395마리 및 갑각류 7종 160마리를 모니터링 대상품종으로 선정하여 총 555마리를 분석하였다. 종합적으로 살펴보면, 2018년 해구 64개소에서 어류 39종 977마리 및 갑각류 14종 287마리를 선정하여 총 1,264마리에 대하여 병원체 감염 여부를 조사하였다. 어류에서는 전갱이 139마리(11.
RNA 바이러스의 경우 iScript cDNA synthesis kit (Bio-Rad, USA) 또는 superscript IV revers transcriptase (Thermo Fisher Scientific, USA)를 이용하여 cDNA 합성 후 PCR을 실시하였다. 각 PCR은 3번 반복 수행하였으며 음성대조구는 D.W.를 첨가하고 양성대조구는 국립수산과학원에서 제작한 양성표준물질을 사용하였다. PCR 산물은 QIAxcel (Qiagen, Germany)을 이용하여 전기영동을 실시하였다.
2018년 4월에는 해구 44개소에서 어류 29종 582마리 및 갑각류 11종 127마리를 모니터링 대상품종으로 선정하여 총 709마리를 분석하였고 2018년 10월에는 해구 40개소에서 어류 24종 395마리 및 갑각류 7종 160마리를 모니터링 대상품종으로 선정하여 총 555마리를 분석하였다. 종합적으로 살펴보면, 2018년 해구 64개소에서 어류 39종 977마리 및 갑각류 14종 287마리를 선정하여 총 1,264마리에 대하여 병원체 감염 여부를 조사하였다.
이론/모형
(Beckman Coulter, USA)을 이용하여 제조사의 프로토콜에 따라 핵산을 추출하고 어류는 VHS, RSIVD, MABVD, HRVD, LCD를, 갑각류는 WSD, IHHN, TS, IMN, YHD, WTD에 대하여 PCR을 실시하였다. PCR mixture 조성 및 PCR 조건은, 법정전염병(VHS, RSIVD, WSD, IHHN, TS, IMN, YHD, WTD)의 경우 「수산생물병성감정지침서」에 따라 분석하였으며, 비법정전염병(MABVD, HRVD, LCD)은 이전에 보고된 논문의 방법에 따라 분석을 실시하였으며 세부사항은 Table 2와 같다. RNA 바이러스의 경우 iScript cDNA synthesis kit (Bio-Rad, USA) 또는 superscript IV revers transcriptase (Thermo Fisher Scientific, USA)를 이용하여 cDNA 합성 후 PCR을 실시하였다.
성능/효과
2018년 4월에는 해구 44개소에서 어류 29종 582마리 및 갑각류 11종 127마리를 모니터링 대상품종으로 선정하여 총 709마리를 분석하였고 2018년 10월에는 해구 40개소에서 어류 24종 395마리 및 갑각류 7종 160마리를 모니터링 대상품종으로 선정하여 총 555마리를 분석하였다. 종합적으로 살펴보면, 2018년 해구 64개소에서 어류 39종 977마리 및 갑각류 14종 287마리를 선정하여 총 1,264마리에 대하여 병원체 감염 여부를 조사하였다. 어류에서는 전갱이 139마리(11.
후속연구
연근해 및 양식 수산생물의 질병 발생에 대한 관련성 및 상관관계 구명은 질병 발생 예방 및 확산 방지에 매우 중요한 역할을 한다. 그 일환으로 질병 모니터링은 질병의 발 생을 감시하고 자국 내 특정 질병에 대해 무병하다는 청정국 또는 청정지역 선언에 기초자료로 활용될 수 있다. 본 연구에서는 국내 연근해의 어류를 대상으로 법정전염병 2종(바이러스성출혈성패혈증(VHS), 참돔이리도바이러스병(Red sea bream iridoviral disease; RSIVD)) 및 비법정전 염병 3종(마린버나바이러스병(Marine birnavirus disease; MABVD), 히라메랍도바이러스병(Hiramerhabdovirus disease; HRVD), 림포시스티스병(Lymphocystics disease;LCD))과 갑각류를 대상으로 법정전염병 6종(흰반점병 (WSD), 전염성피하및조혈기괴사증(Infectious hypodermal and haematopoietic necrosis; IHHN), 타우라증후군 (Taura syndrome; TS), 전염성근괴사증(Infectious myonecrosis; IMN), 노랑머리병(Yellowhead disease; YHD), 흰꼬리병(White tail disease; WTD))의 보유 또는 감염 상황에 대한 정보를 제공하고자 한다.
특히 국내에서는 새우를 외부환경에 노출된 방법으로 주로 양식하고 있어 새우 양식장에서 서식하는 생물이 WSD에 감염되어 타 양식장 및 자연수계로 이동 후 WSD를 전파할 가능성이 있다. 이에 따른 양식장 침입 경로 차단을 통한 전파 및 확산 방지를 위하여 자연수계의 갑각류뿐만 아니라 양식장 주변 서식생물에 대한 지속적인 모니터링 연구 및 정책이 필요하겠다.
역사적으로 발생보고가 없는 경우 및 과거 10년 이내에 발생이 있었거나 질병 발생 상황을 모르는 경우에는 자연수계 수산생물(야생동물집단)에서 질병이 확인되지 않아야 한다. 국내 연근해에서 수산생물을 채취하여 법정전염병 및 비법정전염병의 보유 유무를 조사한 결과, 비록 모든 시료에서 전염병이 검출되지 않았지만 수산생물전염병 청정국 또는 청정지역 지위의 국제 인정에 매우 귀중한 정보를 제공하여 국내 수산방역 체계의 국제 위상을 제고할 것이다.
어류는 법정전염병 2종(VHS, RSIVD) 및 비법정전염병 3종(MABVD, HRVD, LCD)을 분석하고 갑각류는 법정전염병 6종(WSD, IHHN, TS, IMN, YHD, WTD)을 분석하였다. 조사한 모든 시료에서 전염병이 검출되지 않았지만, 우리나라에서 조사한 자연수계 수산생물이 무병하여 청정국 또는 청정지위 선언에 중요한 정보를 제공할 것이다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
수생태계에 지구온난화에 따른 기후변화로 인해 발생되는 것은?
지구온난화에 따른 기후변화는 수온, 염분, 해수면 등의 환경을 지속적으로 변화시켜 수산생물질병 발생을 증가 시키는 중요한 요인이 되며 병원체 및 생물의 특성변화, 질병 발생 동태 또는 숙주 범위 확대 등을 유발할 수 있다. 또한 수산물 교역 등을 통하여 해외 악성 전염병이 국내에 유입되어 정착하게 되면, 그 이후에는 치료 또는 박멸에 많은 어려움이 발생한다.
해산어류에 피해를 유발하는 질병인 RSIVD는 어디서 최초 발생하였고 어떤 특징이 있는가?
RSIVD는 일본 시코쿠 지역 양식 참돔에서 최초 발생하여 현재 일본, 동아시아, 동남아시아 등의 국가에서 광범위 한 숙주에 비장비대 등의 특징을 보이며 수온 25°C 이상일 때 많은 폐사를 유발한다. 국내에서는 1998년 이후 해산 양식 어류인 돌돔(Oplegnathus fasciatus), 조피볼락(Sebastes schlegelii), 참돔(Pagrus major), 넙치뿐만 아니라 담수산 양 식 쏘가리(Siniperca scherzeri)에도 감염되어 많은 피해를 유발하였다( Jeong et al.
양식 수산생물뿐만 아니라 자연 수계 수산생물에 대하여 질병 모니터링 연구가 활발히 진행되는 이유는?
질병에 감염된 자연수계의 수산생물 또는 물에 포함된 병원체가 양식장내로 유입되어 해당 생물에 질병을 전파 될 가능성이 높다. 이와 반대로 질병에 감염된 양식생물 및 오염된 사육수가 자연수계로 배출됨에 따라 자연수계 수산생물에 질병을 전파할 수 있는 가능성이 있다. 그러므로 양식 수산생물뿐만 아니라 자연수계 수산생물에 대하 여 국내외적으로 많은 질병 모니터링 연구가 활발히 진행 되고 있다(Lee et al.
참고문헌 (39)
Baumgartner WA, JP Hawke, K Bowles, PW Varner and KW Hasson. 2009. Primary diagnosis and surveillance of white spot syndrome virus in wild and farmed crawfish (Procambarus clarkii, P. zonangulus) in Louisiana, USA. Dis. Aquat. Org. 85:15-22.
Cho MY, HY Kim, BY Jee, MS Kim, JS Seo, MG Kwon, YS Im, DC Lee, YK Oh, SH Park, JW Kim and MA Park. 2008. Disease in wild marine fish caught from Korea coastal offshore water. J. Fish Pathol. 21:259-270.
Cho MY, BY Jee, GH Park, CH Lee, DC Lee, JW Kim, MS Park and MA Park. 2009. Monitoring of fish pathogens in wild marine fish of Korean costal offshore water in 2008. J. Fish Pathol. 22:75-83.
Do JW, SJ Cha, NS Lee, YC Kim, JW Kim, JD Kim and JW Park. 2006. Taura syndrome virus from Penaeus vannamei shrimp cultured in Korea. Dis. Aquat. Org. 70:171-174.
Jeong JB, LJ Jun, KH Park, KH Kim, JK Chung, JL Komisar and HD Jeong. 2006. Asymptomatic iridovirus infection in various marine fishes detected by a 2-step PCR method. Aquaculture 255:30-38.
Jeong JB, LJ Jun, MH Yoo, MS Kim, JL Komisar and HD Jeong. 2003. Characterization of the DNA nucleotide sequences in the genome of red sea bream iridoviruses isolated in Korea. Aquaculture 220:119-133.
Jin JW, YK Kim, S Hong, YC Kim, WJ Kwon and HD Jeong. 2018. Identification and characterization of Megalocytivirus type 3 infection with low mortality in starry flounder, Platichthys stellatus, in Korea. J. World Aquacult. Soc. 49:229-239.
Kim JH, CH Chroresca Jr, SP Shin, JE Han, JW Jun, SY Han and SC Park. 2011. Detection of infectious hypodermal and hematopoietic necrosis virus (IHHNV) in Litopenaeus vannamei shrimp cultured in South Korea. Aquaculture 313:161-164.
Kim JW, MY Cho, GH Park, KM Won, HS Choi, MS Kim and MA Park. 2010. Statistical data on infectious disease of cultured olive flounder Paralichthys olivaceus from 2005 to 2007. J. Fish Pathol. 23:369-377.
Kim JW, SH Jung, MA Park, JW Do, DL Choi, BY Jee, MY Cho, MS Kim, HS Choi, YC Kim, JS Lee, CH Lee, JD Bang, MS Park and JS Seo. 2006. Monitoring of pathogen in cultured fish of Korea for the summer period from 2000 to 2006. J. Fish Pathol. 19:207-214.
Kim KI, SD Hwang, MY Cho, SH Jung, YC Kim and HD Jeong. 2018. A natural infection by the red sea bream iridovirus type Megalocytivirus in the golden mandarin fish Siniperca scherzeri. J. Fish Dis. 41:1229-1233.
Kim KS, SY Park, IR Lee, YK Nam and IC Bang. 2009. Prevalence of white spot syndrome virus (WSSV) in marine organisms around the shrimp farm and polychaete worm-mediated transmission of WSSV to Fenneropenaeus chinensis. J. Fish Pathol. 22:15-21.
Kim SM, JI Lee, MJ Hong, HS Park and SI Park. 2003. Genetic relationship of the VHSV (viral hemorrhagic septicemia virus) isolated from cultured olive flounder, Paralichthys olivaceus in Korea. J. Fish Pathol. 16:1-12.
Kim WS, SJ Jung, JO Kim, DW Kim, JH Kim and MJ Oh. 2011. Genetic positioning of Korean viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV) from cultured and wild marine fishes. J. Fish Pathol. 24:1-9.
Kim WS, SR Kim, D Kim, JO Kim, MA Park, SI Kitamura, HY Kim, DH Kim, HJ Han, SJ Jung and MJ Oh. 2009. An outbreak of VHSV (viral hemorrhagic septicemia virus) infection in farmed olive flounder Paralichthys olivaceus in Korea. Aquaculture 296:165-168.
Kurita J, K Nakajima, I Hirono and T Aoki. 1998. Polymerase chain reaction (PCR) amplification of DNA of red sea bream iridovirus (RSIV). Fish Pathol. 33:17-23.
Kwon MG, SM Kim, KW Shin, MY Cho, SD Hwang, JS Seo, JY Hwang and BY Jee. 2019. Epidemiological survey of infectious Myonecrosis in farmed white leg shrimps (Litopenaeus vannamei) in Korea. J. Kor. Soc. Fish. Mar. Edu. 31:94-99.
Lee DC, MY Cho, SJ Cha, SH Park, MA Park and JW Kim. 2006. Monitoring of disease in wild marine stocks collected in June 2006 by trawl in southern Korean water. J. Fish Pathol. 19:215-225.
Lee WL, SR Kim, HM Yun, SI Kitamura, SJ Jung and MJ Oh. 2007. Detection of red sea bream iridovirus (RSIV) from marin fish in the southern costal area and east China sea. J. Fish Pathol. 20:211-220.
Lo CF, JH Leu, CH Chen, SE Peng, YT Chen, CM Chou, PY Yeh, CJ Huang, HY Chou, CH Wang and GH Kou. 1996a. Detection of baculovirus associated with white spot syndrome (WSBV) in penaeid shrimps using polymerase chain reaction. Dis. Aquat. Org. 25:133-141.
Lo CF, CH Ho, SE Peng, CH Chen, HC Hsu, YL Chiu, CF Chang, KF Liu, MS Su, CH Wang and GH Kou. 1996b. White spot syndrome baculovirus (WSBV) detected in cultured and captured shrimp, crab and other arthropods. Dis. Aquat. Org. 27:215-225.
Mari J, BT Poulos, DV Lightner and JR Bonami. 2002. Shrimp Taura syndrome virus: genomic characterization and similarity with members of the genus Cricket paralysis-like viruses. J. Gen. Virol. 83:915-926.
Mohr PG, NJG Moody, J Hoad, LM Williams, RO Bowater, DM Cummins, JA Cowley and MSTJ Crane. 2015. New yellow head virus genotype (YHV7) in giant tiger shrimp Penaeus monodon indigenous to northern Australia. Dis. Aquat. Org. 115:263-268.
Mun SH, JW Hur, SJ Cha, SD Hwang, MH Son, JY Kwon and SR Kwon. 2018. Monitoring pathogen infection of freshwater cyprinid fish and crustacean in Soyang Lake in 2016. Korean J. fish. Aquat. Sci. 51:47-53.
Navarro SA, KFJ Tang and DV Lightner. 2009. An improved Taura syndrome virus (TSV) RT-PCR using newly designed primers. Aquaculture 293:290-292.
Nunan LM, BT Poulos and DV Lightner. 2000. Use of polymerase chain reaction (PCR) for the detection of infectious hypodermal and hematopoietic necrosis virus (IHHNV) in penaeid shrimp. Mar. Biotechnol. 2:319-328.
OIE. 2017. Disease information. Weekly Disease Information. World Organisation for Animal Health, Paris, France. https://www.oie.int/wahis_2/public/wahid.php/Diseaseinformation/WI/index/newlang/en.
Park MA, JW Do, MS Kim, SR Kim, MG Kwon, JS Seo, JY Song and HS Choi. 2012. Comparison of pathogen detection from wild and cultured olive flounder, red sea bream, black sea bream and black rockfish in the costal area of Korea in 2010. J. Fish Pathol. 25:263-270.
Poulos BT and DV Lightner. 2006. Detection of infectious myonecrosis virus (IMNV) of penaeid shrimp by reverse-transcriptase polymerase chain reaction (RT-PCR). Dis. Aquat. Org. 73:69-72.
Skall HF, NJ Olesen and S Mellergaard. 2005. Viral haemorrhagic septicaemia virus in marine fish and its implications for fish farming - a review. J. Fish Dis. 28:509-529.
Snow M, N Bain, J Black, V Taupin, CO Cunningham, JA King, HF Skall and RS Raynard. 2004. Genetic population structure of marine viral haemorrhagic septicaemia virus (VHSV). Dis. Aquat. Org. 61:11-21.
Sri Widada J, S Durand, D Cambournac Qian, Z Shi, E Dejonghe, V Richard and JR Bonami. 2003. Genome-based detection methods of Macrobrachium rosenbergii nodavirus, a pathogen of the giant freshwater prawn, Macrobrachium rosenbergii: dot-blot, in situ hybridization and RT-PCR. J. Fish Dis. 26:583-590.
Stone DM, K Way and PF Dixon. 1997. Nucleotide sequence of the glycoprotein gene of viral haemorrhagic septicaemia (VHS) viruses from different geographic areas: a link between VHS in farmed fish species and viruses isolated from North Sea cod (Gadus morhua L.). J. Gen. Virol. 78:1319-1326.
Sudhakaran R, VP Ishaq Ahemed, P Haribabu, SC Mukherjee, J Sri Widada, JR Bonami and AS Sahul Hameed. 2007a. Experimental vertical transmission of Macrobrachium rosenbergii nodavirus (MrNV) and extra small virus (XSV) from brooders to progeny in Macrobrachium rosenbergii and Artemia. J. Fish Dis. 30:27-35.
Tang KFJ, SV Durand, BL White, RM Redman, CR Pantoja and DV Lightner. 2000. Postlarvae and juveniles of a selected line of Penaeus stylirostris are resistant to infectious hypodermal and hematopoietic necrosis virus infection. Aquaculture 190:203-210.
Tang KFJ, SA Navarro and DV Lightner. 2007. A PCR assay for discriminating between infectious hypodermal and hematopoietic necrosis virus (IHHNV) and the virus-related sequences in the genome of Penaeus monodon. Dis. Aquat. Org. 74:165-170.
Won KM, MY Cho, MA Park, BY Jee, JI Myeong and JW Kim. 2013. The first report of a megalocytivirus infection in farmed starry flounder, Platichthys stellatus, in Korea. Fish Aquat. Sci. 16:93-99.
Yoganandhan K, J Sri Widada, JR Bonami and AS Sahul Hameed. 2005. Simultaneous detection of Macrobrachium rosenbergii nodavirus and extra small virus by a single tube, one-step multiplex RT-PCR assay. J. Fish Dis. 28:1-5.
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