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초록
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본 연구의 목적은 인공수정 기법을 이용한 한국 재래흑염소 계통별 인공수정 수태율을 알아보고자 정액의 성상, 수태율 및 분만율을 조사하고, 임신진단을 위한 소의 임신진단 키트의 활용 가능성을 알아보는 것이다. 재래흑염소에서 전기자극을 통해 정액을 채취하여 3계통(당진, 장수, 통영)별 정액분석과 발정동기화 된 암컷에 인공수정을 실시하여 계통별 번식능력을 조사하였다. 인공수정된 암컷에서는 소의 임신진단 키트(IDEXX Rapid Visual Pregnancy Test kit)와 초음파진단으로 임신을 확인하였다. 그 결과 개통별 정액채취량은 1~1.5 ml 내외였으며, 정액농도는 $18{\sim}25{\times}10^8/ml$, 정액 채취 직후 정자활력은 97% 이상 높게 나타났다. 그리고 임신진단의 결과에서 소의 임신진단 키트와 초음파진단 모두 동일한 결과를 보였으며, 계통별 인공수정 수태율의 효율은 20~44%로, 통영계통이 44%로 가장 높게 나타났고 장수계통이 20%로 인공수정 수태율이 낮게 나타났다. 본 연구 결과를 통해 한국 재래흑염소의 계통별 인공수정 효율을 알 수 있었고, 조기 임신진단을 위한 소 임신진단 키트의 활용가능성을 확인할 수 있었다. 본 연구 결과는 재래흑염소 증식과 개량에 기여할 수 있을 것으로 사료된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

This study investigated the application of artificial insemination and pregnancy diagnosis kit for Korean native black goats. Semen was collected by electrical ejaculation, followed by semen analysis and artificial insemination in three goat strains (Dangjin, Jangsu and Tongyoung). Pregnancy was con...

주제어

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AI 본문요약
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문제 정의

  • 따라서 본 연구에서는 인공수정 기법을 이용한 재래흑염소의 계통별 증식효율을 알아보고자 재래흑염소 수컷의 정액을 채취하여 계통별 정액성상, 수태율 및 분만율을 조사하고, 소의 임신진단 키트를 재래흑염소에 적용하여 활용성 및 정확성을 알아보는 것이다.
  • 본 연구에서 한국 재래흑염소의 계통별 인공수정 효율에 관해 조사하였으며, 조기 임신진단을 위한 소 임신진단 키트의 활용가능성을 확인할 수 있었다. 추가적인 연구가 필요하겠지만 본 연구 결과는 일반 염소 사육농가 뿐만 아니라 연구기관에서 재래흑염소 증식과 개량을 위한 기초자료로 활용 될 수 있을 것으로 사료된다.
  • 이전의 연구를 통해 염소에서 임신관련 당단백질(PAGs)에 관해 조사되었으나[17-19], 염소의 번식생리의 이해를 위한 기초적인 연구였다. 본 연구에서는 소에서 임신관련 당단백질(PAGs)을 활용한 조기임신진단 키트를 이용하여 염소에서의 활용가능성과 정확도를 알아보고자 하였으며, 이 결과는 활용가능성을 보여주는 결과라 할 수 있다.
  • 조기 임신진단을 위해 소에서 이용되는 아이덱스사의임신진단 키트(IDEXX Rapid Visual Pregnancy Test kit, USA)를 제조사의 지침에 따라 이용하였다. 이 키트는 인공수정 30일 후 인공수정된 개체의 혈액샘플을 채취하여 혈청내 임신관련 당단백질(Pregnancy AssociatedGlycoproteins, PAGs)을 효소면역분석법(ELISA)으로 검출하는 것으로 재래흑염소의 활용가능성을 알아보기 위해 조사하였다. 키트를 통해 임신으로 추정된 개체는 초음파진단기(Draminski 4Vet mini, Poland)를 이용하여 직장을 통한 초음파 검사를 통해 임신낭을 관찰하여 임신 확인 및 산자수 조사하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
순수 재래흑염소가 사라지는 이유는? org/)에 등록되었으나 이들 계통들에 대한 분자생물학적인 특성평가 연구는 거의전무한 상태이다[6]. 재래흑염소는 소형종으로 육량 생산량이 낮아 수익성이 없어 대부분 사육농가에서는 육량증대를 위해 외래종 육용 염소와의 무계획적인 난교잡을 함으로써 고기 생산능력과 균일도가 저하되고 있다[7].
염소고기의 소비형태는? 2019년 농림축산식품부 농업경영체 등록정보에 따르면 566,887두가 사육되고 있다. 염소고기의 소비형태도 약용에서 육용으로, 건강 기능성 식품을 선호하는소비자의 요구에 따라 소비 형태도 변화되고 있어[4-5] 수입 물량과 국내도축 물량도 지속적으로 증가하는 추세에 있다.
가축에 가장 널리 활용되는 번식 기술은? 가축의 인공수정은 전 세계적으로 가장 널리 활용되고있는 번식 기술 중 하나이며 인공수정 효율에 관련된 다양한 요인들을 분석하고 이를 바탕으로 개선된 기술개발이 전 세계적으로 지속적으로 연구되고 있다. 염소의 인공수정 효율에 미치는 주요한 요인으로는 발정 상태의 정확한 판단, 적절한 인공수정 시기, 정액의 상태와 품질,염소 생식기 내의 정액주입 부위, 발정동기화 처리방법 및 염소의 산차수 등 다양한 환경적인 요인에 의해 영향을 받는다[8-14].
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참고문헌 (19)

  1. M. A. Zeder, B. Hesse, "The initial domestication of goats (Capra hircus ) in the Zagros mountains 10,000 years ago", Science, 287:2254-2257, 2000. DOI: https://doi.org/10.1126/science.287.5461.2254 

  2. H. B. Soon, "Effects of the Grazing and Barn Feeding System on Growth Performance and Carcass Characteristics in Korean Black Goats", Journal of Agriculture & Life Science, 48:123-131, 2014. DOI: https://doi.org/10.14397/jals.2014.48.2.123 

  3. S. S. Lee, S. W. Kim, K. W. Kim, H. Y. Cho, C. Y. Cho, S. H. Yeon, T. J. Choi, "Growth Curve Parameters for Body Weight by Sex in Korean Native Goat", Annals of Animal Resource Sciences, 27:152-158, 2016. DOI: https://doi.org/10.12718/AARS.2015.26.2.110 

  4. H. B. Song, I. H. Jo, M. J. Jun, Y. K. Park, K. C. Hong, N. C. Park, J. C. Do, H. S. Lim, "Study on the increasing method of income in the goat farmers", Daegu Univ. Press, 47-50, 1999. 

  5. B. K. Kim, J. H. Lee, D. J. Jung, K. H. Cho, E. G. Hwang, M. S. Kim, "Effects of Feeding Herb Resources Powder on Meat Quality and Sensory Properties in Korean Native Black Goat", Food Science of Animal Resources, 30:811-818, 2010. DOI: https://doi.org/10.5851/kosfa.2010.30.5.811 

  6. J. H. Kim, M. J. Byun, Y. G. Ko, S. W. Kim, S. W. Kim, Y. J. Do, M. J. Kim, S. H. Yoon, S. B. Choi, "Phylogenetic Analysis of Korean Native Goats Based on the Mitochondrial Cytochrome b Gene", Journal of Animal Science and Technology, 54:241-246, 2012. DOI: https://doi.org/10.5187/JAST.2012.54.4.241 

  7. S. W. Suh, M. J. Byun, Y. S. Kim, M. J. Kim, S. B. Choi, Y. G. Ko, D. H. Kim, H. T. Lim, J. H. Kim, "Analysis of Genetic Diversity and Relationships of Korean Native Goat Populations by Microsatellite Markers", Journal of Life Science, 22:1493-1499, 2012. DOI: https://doi.org/10.5352/JLS.2012.22.11.1493 

  8. M. Mellado, R. Valdez, L. M. Lara, J. E. Garcia, "Risk factors involved in conception, abortion, and kidding rates of goats under extensive conditions", Small Ruminant Research, 55:191-198, 2004. DOI: https://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2003.10.016 

  9. J. F. Nunes, C. C. M. Salgueiro, "Strategies to improve the reproductive efficiency of goats in Brazil", Small Ruminant Research, 98:176-184, 2011. DOI: 10.1016/j.smallrumres.2011.03.036 

  10. F. Arrebola, O. Gonzalez, R. Torres, J. Abecia, "Artificial insemination in Payoya goats: factors affecting fertility", Animal production science, 54:356-362, 2014. DOI: https://doi.org/10.1071/AN13138 

  11. G. Baril, B. Remy, B. Leboeuf, J. F. Beckers, J. Saumande, "Synchronization of estrus in goats: the relationship between eCG binding in plasma, time of occurrence of estrus and fertility following artificial insemination", Theriogenology, 45:1553-1559, 1996. DOI: https://doi.org/10.1016/0093-691X(96)00123-9 

  12. A. Fatet, M. T. Pellicer-Rubio, B. Leboeuf, "Reproductive cycle of goats", Animal Reproduction Science, 124:211-219, 2011. DOI: https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2010.08.029 

  13. J. F. Nunes, C. C. M. Salgueiro, "Strategies to improve the reproductive efficiency of goats in Brazil", Small Ruminant Research , 98:176-184, 2011. DOI: https://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2011.03.036 

  14. F. A. Arrebola, B. Pardo, M. Sanchez, M. D. Lopez, C. C. Perez-Marin, "Factors influencing the succes of an artificial insemination program in Florida goats", Spanish Journal of Agricultural Research, 10:338-344, 2012. DOI: https://doi.org/10.5424/sjar/2012102-223-11 

  15. I. V. .Engelanda, E. R. opstada, O. Andresena, L. O. Eikb, "Pregnancy diagnosis in dairy goats using progesterone assay kits and oestrous observation", Animal Reproduction Science, 47(3):237-243, 1997. DOI: https://doi.org/10.1016/S0378-4320(96)01632-6 

  16. Y. S. Park, H. S. Hwang, J. W. Woo, N. W. Kim, "Characteristics of semen and coat color distribution of offsprings produced by AI in Korean native striped cattle", Reprod. Dec. Biol., 31(1):43-48, 2007. 

  17. J. F. Beckers, P. V. Drion, J. M. Garbayo, Z. Perenyi, A. Zarrouk, J. Sulon, B. Remy, O. Szenci, "Pregnancy associated glycoproteins in ruminants: inactive members of the aspartic proteinase family", Acta. Vet. Hung., 47(4):461-9, 1999. DOI: https://doi.org/10.1556/AVet.47.1999.4.6 

  18. G. Haugejorden, S. Waage, E. Dahl, K. Karlberg, J. F. Beckers, E. Ropstad, "Pregnancy associated glycoproteins (PAG) in postpartum cows, ewes, goats and their offspring", Theriogenology, 66(8):1976-84, 2006. DOI: https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2006.05.016 

  19. U. Tandiya, V. Nagar, V. P. Yadav, I. Ali, M. Gupta, S. S. Dangi, I. Hyder, B. Yadav, M. Bhakat, V. S. Chouhan, F. A. Khan, V. P. Maurya, M. Sarkar, "Temporal changes in pregnancy-associated glycoproteins across different stages of gestation in the Barbari goat", Anim. Reprod. Sci., 142(3-4):141-8, 2013. DOI: https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2013.09.016 

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