[논문]식물종자의 액상오존처리에 의한 종자 발아 및 초기 성장 증진

양희경; 정윤아; 최원철; 배범한

doi:10.7857/jsge.2019.24.5.001

식물종자의 액상오존처리에 의한 종자 발아 및 초기 성장 증진
Enhanced Germination & Initial Seedling Development by Liquid Phase Ozonation of Plant Seeds 원문보기

지하수토양환경 = Journal of soil and groundwater environment, v.24 no.5, 2019년, pp.1 - 10

양희경 (가천대학교) , 정윤아 (가천대학교) , 최원철 (가천대학교) , 배범한 (가천대학교)

Abstract ▼ AI-Helper

The effects of liquid phase ozonation on seed dormant alleviation and subsequent seedling growth were studied using two plant seeds of Indian jointvetch (Aeschynomene indica L.) and Indian mallow (Abutilon avicennae Gaertn.). At a constant ozone concentration ($80g/m^3$), contact time varied from 10 to 60 min with 10 min interval. Germination rate, root length, and specific root length were compared after 3-day incubation on gel-medium. The germination rate increased significantly (p<0.05) in the 50 min treatment of Indian mallow by 30% compared to the control. Enhanced root elongation was observed in the seeds of 30 min treatment of Indian jointvetch and 30~50 min treatment of Indian mallow. Specific root length, an indicator of environmental change, did not show significant changes, suggesting the level of ozone treatment has no adverse effect on seedling development. The results indicate that liquid phase seed ozonation can be an effective on-site germination alleviation method in the application of phytoremediation.

주제어

표/그림 (8)

그림 Fig. 1. Procedure for the estimation of root length and volume during seedling root growth on agar-MS medium. Column (a) Aeschynomene indica, Column (b) Abutilion avicennae; Row (1) original photograph. Row (2) conversion of file format to RGB 24 bit by ImageJ software, Row (3) root length and volume estimation using SmartRoot software.
그림 Fig. 2. Germination of two plant seeds on agar-MS or Gelrite-MS medium after ozone treatment. (a) A. indica on agar-MS medium, (b) A. indica on Gelrite-MS medium. (c) A. avicennae on agar-MS medium, (d) A. avicennae on Gelrite-MS medium (*p<0.05).
표 Table 1. Percent germination of two plant seeds on each gel medium after 3 days of incubation in growth chamber (Standard deviation in parenthesis. Number of petri dish is six and each dish contains 11 seeds.)
그림 Fig. 3. Effects of gelling agent on the development of seedling root after 3 days of incubation. (a) A. indica on agar-MS medium, (b) A. indica on Gelrite-MS medium. (c) A. avicennae on agar-MS medium, (d) A. avicennae on Gelrite-MS medium.
표 Table 2. Average root length and corresponding coefficient of variation
표 Table 3. Differences in average root density of two plant seedlings grown on each gel medium (The values are based on randomly selected 15 root samples of respective plant.)
그림 Fig. 4. Effects of ozonation on root elongation of two plant seedlings (a) A. indica on agar-MS medium, (b) A. indica on Gelrite-MS medium. (c) A. avicennae on agar-MS medium, (d) A. avicennae on Gelrite-MS medium (*p<0.05).
그림 Fig. 5. Effects of ozonation on specific root length of two plant seedlings (a) A. indica on agar-MS medium, (b) A. indica on Gelrite-MS medium. (c) A. avicennae on agar-MS medium, (d) A. avicennae on Gelrite-MS medium (*p<0.05).

AI 본문요약
AI-Helper

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제안 방법

SmartRoot 프로그램으로 변환된 이미지를 읽고 축척에 해당하는 픽셀수와 뿌리 시작점을 ρroot 지정해 주면, 음영에 따라 픽셀단위로 식물을 인식하고 뿌리 발달방향으로 뿌리 축과 타원크기를 자동 판독하여 길이와 부피를 산정하였다(Fig. 1 row 3).
, 2017). 각각의 응고제를 포함한 MS배지는 고압멸균한 다음, 주사기 필터로 멸균한 항생제 streptomycin과 항진균제 fenbendazole을최종농도 20 mg/L가 되도록 각각 주입하였다. 이후, 2cm 크기의 격자 눈금이 있는 4각 페트리 디시(125 ×125 × 20 mm)에 배지 두께 1 cm로 넣고 식힌 다음 종자발아 배지로 사용하였다.
대조군(control) 종자는 표면 살균 후, 거름종이로 물을 제거하고 준비한 고체배지(agar-MS 및 Gelrite-MS 배지)에 파종하였다. 종자는 4각 페트리 접시의 2/3 지점에 1cm 간격으로 11개를 일렬로 배치하였다.
또한 사진 분석에서 종자에서 유근 길이가 1 mm 이상 발달하면 발아한것으로 간주하였다(KS&VS, 2017). 동시에 배지에서 성장한 각 식물체 뿌리를 15개체씩 60^oC에서 3일간 건조하여 건조 중량을 측정하고, SmartRoot로 평가한 뿌리부피와 건조중량으로 밀도를 산정한 다음, 식 (1)에 의해 SRL(specific root length)을 계산하였다(Eissenstat, 1991). 실험 결과는 대조군과 처리군으로 구분하여 95% 신뢰수준의 t-검정(이분산 가정)을 실시하였다.
또한agar와 Gelrite를 각각 사용하여, 두 배지에서의 발아율과유식물 성장 차이를 비교·분석하였다.
모든 실험은 3배수로 하였고, 2주 간격을 두고 재반복 실험을 실시하여 총 6배수로실험하였다. 모든 과정에서 사용하는 도구는 Autoclave를 통해 멸균된 것을 사용하고, 파종 작업은 모두 멸균작업대 내에서 실시하였다.
, Korea)에 87도 각도로 세워 25^oC에서 4일 동안 암배양하였다. 모든 실험은 3배수로 하였고, 2주 간격을 두고 재반복 실험을 실시하여 총 6배수로실험하였다. 모든 과정에서 사용하는 도구는 Autoclave를 통해 멸균된 것을 사용하고, 파종 작업은 모두 멸균작업대 내에서 실시하였다.
배양 3일째에 실험을 종료하고, 일정 조건에서 페트리디시의 사진을 촬영하고 사진 분석프로그램으로 발아, 뿌리 길이 및 부피를 산정하였다. 사진은 Canon G7 XMark II로 해상도 3648×2432 DPI로 촬영하였고, ImageJ(Schneider er al.
배지에 오존처리한 종자를 식재하고 24시간 간격으로 사진을 촬영하면서, 발아 및 유식물 뿌리 성장을 관찰하였다. 대부분 3일 배양 후에는 식물의 뿌리가 충분히 생장하여 3일차 사진으로 발아 여부를 판독하고, 뿌리 길이 및 부피를 산정하였다.
본 연구에서는 콩과식물인 자귀풀(Aeschynomene indicaL.)과 아욱과 식물인 어저귀(Abutilon avicennae Gaertn.)종자를 물에 넣고 일정 농도의 오존으로 폭기한 다음 인공배지에서 배양하여, 오존 폭기 시간이 종자 발아와 유식물 성장에 미치는 영향을 발아율, 뿌리 성장 및 고유뿌리길이(specific root length, SRL)로 비교하였다. 또한agar와 Gelrite를 각각 사용하여, 두 배지에서의 발아율과유식물 성장 차이를 비교·분석하였다.
사진은 Canon G7 XMark II로 해상도 3648×2432 DPI로 촬영하였고, ImageJ(Schneider er al., 2012) 프로그램으로 24 비트 RGB로 포맷을 전환하여 SmartRoot(Lobet et al., 2011) 프로그램으로 뿌리길이 및 부피를 분석하였다.
실험에 사용한 종자는 오존 처리를 하지 않은 대조군(control)과 10분 간격으로 총 60분까지 오존으로 처리한실험군으로 구분하였다. 오존처리는 pyrex 유리 재질의 오존 반응조(1.
2 L)에 1L의 인산염 완충용액(10 mM, pH7)과 종자를 넣은 다음, 오존을 주입하여 유리산기관으로 폭기하면서 10분 간격으로 종자를 건져 사용하였다. 오존발생기(PC57-20, Ozonetech, Korea)에서 발생된 오존(80g-O3/m³)은 질량유량계(mass flow controller, TeledyneTechnologies, USA)로 유량을 1.5 L/min으로 조절하여 주입하였는데, 사전에 기상 오존농도측정기(OM-1500B,Ozonetech, Korea)로 기체상 오존 농도를 일정하게 조절하였다. 반응조에서 배출된 배오존은 활성탄으로 충진된 칼럼을 통과시켜 모두 제거하였다.
오존으로 처리한 자귀풀 및 어저귀를 실험실 배지에서 배양하면서, 오존처리가 종자 발아율, 유식물의 초기 길이성장 및 고유뿌리길이(SRL)의 변화를 비교분석하였다. 연구 결과, 오존처리는 발아율, 뿌리생장에 긍정적 영향을 주었으나.
실험에 사용한 종자는 오존 처리를 하지 않은 대조군(control)과 10분 간격으로 총 60분까지 오존으로 처리한실험군으로 구분하였다. 오존처리는 pyrex 유리 재질의 오존 반응조(1.2 L)에 1L의 인산염 완충용액(10 mM, pH7)과 종자를 넣은 다음, 오존을 주입하여 유리산기관으로 폭기하면서 10분 간격으로 종자를 건져 사용하였다. 오존발생기(PC57-20, Ozonetech, Korea)에서 발생된 오존(80g-O3/m³)은 질량유량계(mass flow controller, TeledyneTechnologies, USA)로 유량을 1.
25배 MS 배지(Murashige andSkoog, 1962)를 사용하였다. 이때, 응고제(젤)로는 agar와Gelrite를 각각 사용하여 식물성장 차이를 비교하였다.Agar는 1.
어저귀 종자는 껍질이 거칠고 표면에 요철이 있어 차아염소산과 접촉이 원활하지 않았다. 이에 세척종자를 80% 에탄올 100mL에 5분간 교반하여 표면을 적신 후, 0.5% 차아염소산100 mL에 넣고 5분간 교반하면서 부유 종자를 제거하고 마지막으로 잔류 차아염소산 제거를 위해 0.01 N HCl100 mL에 넣고 10분간 교반하였다(Abdul-Baki, 1974;Sauer and Burroughs, 1986). 잔류 살균제는 각 단계마다 멸균된 탈이온수로 3회 이상 세척하여 제거하였고, 종자살균 및 세척은 모두 멸균작업대 내에서 실시하였다.
종자의 표면살균은 종자 특성에 맞추어 변경하였다. 자귀풀은 종자 겉껍질이 매끈하고 두꺼워 차아염소산과 접촉이 원활하기에 4% NaOCl에 넣고 20분간 교반하면서 부유 종자를 계속 제거하고 수거한 다음, 80% 에탄올100 mL에 5분간 침지하여 표면 살균하였다. 어저귀 종자는 껍질이 거칠고 표면에 요철이 있어 차아염소산과 접촉이 원활하지 않았다.
01 N HCl100 mL에 넣고 10분간 교반하였다(Abdul-Baki, 1974;Sauer and Burroughs, 1986). 잔류 살균제는 각 단계마다 멸균된 탈이온수로 3회 이상 세척하여 제거하였고, 종자살균 및 세척은 모두 멸균작업대 내에서 실시하였다.
종자의 표면살균은 종자 특성에 맞추어 변경하였다. 자귀풀은 종자 겉껍질이 매끈하고 두꺼워 차아염소산과 접촉이 원활하기에 4% NaOCl에 넣고 20분간 교반하면서 부유 종자를 계속 제거하고 수거한 다음, 80% 에탄올100 mL에 5분간 침지하여 표면 살균하였다.

대상 데이터

발아실험에는 2011년 실외에서 재배하여 수확한 어저귀와 자귀풀 종자를 사용하였다. 두 식물은 화약물질을 흡수/분해할 수 있는 식물로(Bae et al.
배지 준비에는syringe filter(0.22 um PVDF, Millex-GV, Millipore Co.)와 사각 petri dish(SPL Co.)를, 배지 제작 및 세척에는탈이온수(18.3 MΩ-cm)를 사용하였다.
실험에 사용한 화학약품은 ACS 급으로 agar(대정화학),Gelrite(MB cell, USA)이며, streptomycin, fenbendazole및 MS medium(Sigma-Aldrich), NaOCl(SHC, Korea),HPLC급 에틸알코올(덕산화학)이었다. 배지 준비에는syringe filter(0.
종자발아실험에는 0.25배 MS 배지(Murashige andSkoog, 1962)를 사용하였다. 이때, 응고제(젤)로는 agar와Gelrite를 각각 사용하여 식물성장 차이를 비교하였다.

데이터처리

동시에 배지에서 성장한 각 식물체 뿌리를 15개체씩 60^oC에서 3일간 건조하여 건조 중량을 측정하고, SmartRoot로 평가한 뿌리부피와 건조중량으로 밀도를 산정한 다음, 식 (1)에 의해 SRL(specific root length)을 계산하였다(Eissenstat, 1991). 실험 결과는 대조군과 처리군으로 구분하여 95% 신뢰수준의 t-검정(이분산 가정)을 실시하였다.

성능/효과

두 식물 종자를 agar배지에서 배양한 경우 오존처리로 인한 SRL의 유의적 변화는 관측되지 않았다.Gelrite배지에서 생장하였을 때 자귀풀은 30분 오존처리한경우 SRL이 유의적으로 감소하였고(p=0.027), 어저귀는50분 처리한 경우 SRL이 유의적으로 증가하였다(p=0.038). 그러나 Gelrite배지에서 성장한 유식물 뿌리길이의 CV값이 너무 크고 SRL 값은 뿌리길이에 정비례하므로,뿌리길이 오차가 SRL에 그대로 전달될 가능성이 높다.
만약 아직 생장하지 않은 어저귀 뿌리가 생장시작에 실험기간(3일) 이상의 시간이 필요하다면, 뿌리생장을 관측하지 못하였을 것으로 추론할 수 있다. 그러므로 Gelrite배지 결과해석은 유보하는 것이 타당할 것으로 판단된다.
0501 g/cm³이었다. 두 식물 모두agar배지에서 생장했을 때 밀도가 높았는데, 자귀풀은 약 11% 밀도가 높았고, 어저귀는 23% 높았다.
오존처리조건(농도 80 g-O3/m³, 유량 1,5 L/min)에서 장기간(60분) 오존처리한 실험군보다 20~50분간 처리하는 것이 발아와 유식물 성장 증진에 더욱 효과적이었는데, 처리시간의 최적값이 존재하는 볼록 곡선의 형태를 가지고 있다는 점을 의미한다. 또한 고유뿌리길이(SRL)로 비교한 결과, 뿌리생장에 악영향을 주지 않았다. 이상의 실험 결과는 활성산소종(ROS)이 세포성장조절작용, 병원균 방어 및 세포 산화환원상태를 조절함으로써 종자 발아와 유식물 성장 및 식물 성장 및 발달에 긍정적인 역할을 한다는 기존 연구 결과를 재확인해 주었다.
0%(Gelrite배지)에 비해 상대적으로 높은 발아율을 보였다(Table 1).또한 전반적으로 agar 배지에서의 발아율이 Gelrite 배지보다 약간 높았으나, 유의적이지 않았다(Fig. 2). 두 식물종자를 오존 처리한 경우 일부 처리군에서 발아율이 증가하였다.
(2007)의 연구에 의하면 SRL은 인공시비,알루미늄 스트레스에 비례하여 크게 감소하고, 낮은 입사광, 온도 및 이산화탄소 농도 증가에 반비례하기에, 환경인자 변화지표가 된다고 하였다. 본 연구에서 오존으로 처리한 다음 agar배지에서 생장한 두 식물뿌리의 SRL이 감소하지 않은 것은 오존처리가 뿌리생장 및 유식물 초기생장에 해로운 영향을 주지 않았다는 것을 의미한다.
실험에 사용한 응고제(젤)에 따라 유근 성장이 매우 상반되는 결과를 보였다. 전반적으로 agar배지에서는 발아한 종자에서의 유근 성장이 균일하였으나, Gelrite배지에서는유근 발달이 고르지 않았다.
실험에 사용한 종자는 냉장고에서 약 10년간 보관하였음에도 자귀풀 발아율은 agar-MS배지(이후 agar 배지)에서 89.8%, Gelrite-MS배지(이후 Gelrite 배지)에서 85.7%로, 어저귀 발아율 53.7%(agar 배지) 및 47.0%(Gelrite배지)에 비해 상대적으로 높은 발아율을 보였다(Table 1).또한 전반적으로 agar 배지에서의 발아율이 Gelrite 배지보다 약간 높았으나, 유의적이지 않았다(Fig.
오존으로 처리한 자귀풀 및 어저귀를 실험실 배지에서 배양하면서, 오존처리가 종자 발아율, 유식물의 초기 길이성장 및 고유뿌리길이(SRL)의 변화를 비교분석하였다. 연구 결과, 오존처리는 발아율, 뿌리생장에 긍정적 영향을 주었으나. 오존처리조건(농도 80 g-O3/m³, 유량 1,5 L/min)에서 장기간(60분) 오존처리한 실험군보다 20~50분간 처리하는 것이 발아와 유식물 성장 증진에 더욱 효과적이었는데, 처리시간의 최적값이 존재하는 볼록 곡선의 형태를 가지고 있다는 점을 의미한다.
연구 결과, 오존처리는 발아율, 뿌리생장에 긍정적 영향을 주었으나. 오존처리조건(농도 80 g-O3/m³, 유량 1,5 L/min)에서 장기간(60분) 오존처리한 실험군보다 20~50분간 처리하는 것이 발아와 유식물 성장 증진에 더욱 효과적이었는데, 처리시간의 최적값이 존재하는 볼록 곡선의 형태를 가지고 있다는 점을 의미한다. 또한 고유뿌리길이(SRL)로 비교한 결과, 뿌리생장에 악영향을 주지 않았다.
, 2017). 옥수수 알을 오존으로 처리하고 초기 유식물 성장을 관찰한 결과,오존농도 30 mg/L의 오존수에 60~90분간 침지하였을 때 초기 유식물의 성장이 가장 활발하였고. 침지 시간이 120분으로 길거나, 오존 농도가 30 mg/L 미만인 경우에는 유식물 성장이 오히려 저해되었다(Mazimiano et al.
또한 고유뿌리길이(SRL)로 비교한 결과, 뿌리생장에 악영향을 주지 않았다. 이상의 실험 결과는 활성산소종(ROS)이 세포성장조절작용, 병원균 방어 및 세포 산화환원상태를 조절함으로써 종자 발아와 유식물 성장 및 식물 성장 및 발달에 긍정적인 역할을 한다는 기존 연구 결과를 재확인해 주었다.
이상의 연구결과는 적정수준의 오존처리는 발아 및 유식물 성장에 유익하다는 일관성을 보이고 있다. 반면, 연질 소맥 씨앗 80 g을 1.
자귀풀의 SRL은 agar배지 및 Gelrite배지에서 각각 1,825 ± 113및 2,072 ± 183 cm/g으로 Gelrite배지에서 약 12% 높았다.

후속연구

다만, 적용하는 식물에 따라 오존농도(C)와 접촉시간(T)에 대한 다양한 연구가 선행되어야 할 것이며, 본 연구에서 다양하게 실시하지 못한 발아실험을 위한 배지 선정및 응고제(젤)의 영향에 대한 연구도 동시에 진행되어야할 것으로 판단된다. 이와 같은 실험에서 식물의 물리적특성(뿌리길이 및 부피) 측정에, 본 연구에서 사용한SmartRoot와 같은 사진 분석프로그램을 사용하면, 많은실험 자료를 보다 신속 정확하게 처리할 수 있을 것으로 판단된다.
두 연구 공히 장기간의 오존처리는 식물생장에 유해하다고 보고하였다. 따라서 오존처리에 의한 식물생장 증진은 처리시간 및 농도에 최적값을 가지는 볼록 곡선일 것이며,각 종자마다 다를 수 있기에 사전 실험으로 최적조건을 구하는 것이 필요할 것이라 판단된다.
이에 비해 종자의 오존처리는 현장에서 간편하게 실시할 수 있으며, 고온처리 등에 필요한 설비가 필요하지 않고 폐황산과 같은 폐기물을 배출하지 않아 친환경적이라 할 수 있다. 또한 휴면타파 외에도 종자표면살균도 가능하기 때문에, 파종법으로 식물정화공법을 실시할경우 유용한 현장 휴면타파법으로 적용할 수 있을 것이라 판단된다.
1 row 3). 본 연구에서는 SmartRoot에 대한 검증은 실시하지 않았으므로, 발표된 참고문헌을 참조하면 될 것이다(Lobet et al., 2011).
, 1999).본 연구에서도 Gelrite배지의 강도가 낮아 뿌리 발달에 더욱 유리할 것이다. 또한 낮은 뿌리밀도는 식물 생장율이높은 경우 관측되는 특성이다(Kramer-Walter et al.
그러나 어저귀는 오히려 강도가 높은 agar 배지에서 뿌리가 더 잘 자랐기에 기존 연구결과와 배치되며,Gelrite에서 뿌리길이 편차가 심한 것은 배지 강도로 설명하기 어렵다. 식물 뿌리생장에 미치는 응고제의 영향은 식물종마다 다를 수 있으며, 향후 후속 연구가 필요할 것이라 사료된다.
이 실험에서는 소맥을 포장실험과 유사하게 수분 80%의 모래로 채운 용기에 1 cm 간격으로 심고 20 ± 1oC 7일간 배양하여 발아율을 측정하였기 때문에 다른 실험과동일 조건이라고 할 수 없으며, 오존에 의한 영향을 파악하기 위해서는 객관적이고 효율적인 식물발아법을 적용해야 함을 보이고 있다.
다만, 적용하는 식물에 따라 오존농도(C)와 접촉시간(T)에 대한 다양한 연구가 선행되어야 할 것이며, 본 연구에서 다양하게 실시하지 못한 발아실험을 위한 배지 선정및 응고제(젤)의 영향에 대한 연구도 동시에 진행되어야할 것으로 판단된다. 이와 같은 실험에서 식물의 물리적특성(뿌리길이 및 부피) 측정에, 본 연구에서 사용한SmartRoot와 같은 사진 분석프로그램을 사용하면, 많은실험 자료를 보다 신속 정확하게 처리할 수 있을 것으로 판단된다.
오염토양에 정화식물을 식재하는 방법으로 유식물을 옮겨 심는 식물정식법 혹은 종자를 살포하는 파종법을 사용하는데, 오염범위가 넓은 지역에서는 식물정식 인건비가 높기 때문에 파종법이 경제적이다. 정화식물은 일반 작물과 달리 종자를 쉽게 구할 수 없는 경우가많으므로 파종한 종자 발아율을 높이고 유식물 성장을 증진할 수 있다면, 보다 경제적이고 효율적인 식물정화를 달성할 수 있을 것이다.

질의응답

핵심어	질문	논문에서 추출한 답변
	식물상 정화공법의 특징은?	식물상 정화공법은 경제적이고 친환경적 토양정화공법이며, 부가적으로 오염지역을 식피하여 오염토양이동과 인체접촉을 저감함으로써 위해도도 감소시킬 수 있다(Rock, 2003). 오염토양에 정화식물을 식재하는 방법으로 유식물을 옮겨 심는 식물정식법 혹은 종자를 살포하는 파종법을 사용하는데, 오염범위가 넓은 지역에서는 식물정식 인건비가 높기 때문에 파종법이 경제적이다.
	오존에 의한 휴면타파 연구 결과 토마토씨를 어떻게 처리하는 경우 발아율이 가장 높은가?	Sudhakar et al.(2011)은 토마토씨를 오존으로 처리한 결과, 고농도로 오래 처리하는 것 보다는 종자 1g 당 0.01 g-O3의 농도로 20분간 처리할 경우 발아율이 가장 높았으며, 휴면타파는 토마토씨 내부 ABA 농도 감소에 기인하는 것으로 보고하였다. 부채선인장( Opuntia) 종자를 치사용량 이하의 오존으로 처리한 실험에서는 발아율이 17.
	종자 발아는 무엇의 농도와 민감도에 의해 조절되는가?	종자 발아는 휴면호르몬 abscisic acid(ABA)과 성장호르몬 gibberellin(GA) 농도와 이에 대한 민감도에 의해 조절된다(Koornneef et al., 2002; Finkelstein et al.

참고문헌 (31)

Abdul-Baki, A.A., 1974, Pitfalls in using sodium hypochlorite as a seed disinfectant in 14C incorporation studies, Plant Physiol., 53, 768-771.

상세보기
Arthur, G.D., Stirk, W.A., and van Staden, J., 2004, Screening of aqueous extracts from gelling agents (Agar and Gelrite) for rootstimulating activity, S. Afr. J. Bot., 70(4), 595-601.

상세보기
Bae, B., Kim, S.Y., Lee, I.S., and Chang, Y.Y., 2002, Kinetics of uptake and phyto-transformation of 2,4,6-trinitrotoluene by indigenous grasses in hydroponic cultures, Kor. Chem. Eng. Res., 24, 675-687.
Bailly, C., 2004, Active oxygen species and antioxidants in seed biology, Seed Sci. Res., 14(2), 93-107.

상세보기
Buah, J.N., Kawamitsu, Y., Sato, S., and Murayama, S., 1999, Effects of different types and concentrations of gelling agents on the physical and chemical properites of media and the growth of banana (Musa spp.) in vitro, Plant Prod. Sci., 2(2), 138-145.

상세보기
Carl Roth GmbH Co., 2017, Gellan Gum for Microbial Applications: User Manual.
Eissenstat, D.M., 1991, On the relationship between specific root length and the rate of root proliferation : A field study using citrus rootstocks, New Phytol., 118, 63-68.

상세보기
El-Maarouf-Bouteau, H. and Bailly, C., 2008, Oxidative signaling in seed germination and dormancy, Plant Signaling Behav., 3(3), 175-182.

상세보기
Finkelstein, R., Reeves, W., Ariizumi, T., and Steber, C., 2008, Molecular aspects of seed dormancy, Annu. Rev. Plant Biol, 59, 387-415.

상세보기
Ichi, T., Koda, T., Asai, I., Hatanaka, A., and Sekiya, J., 1986, Effects of gelling agents on in vitro culture of plant tissues, Agric. Biol. Chem., 50(9), 2397-2399.
Klimaszewska, K., Bernier-Cardou, M., Cyr, D.R., and Sutton, B.C.S., 2000, Influence of gelling agents on culture medium gel strength, water availability, tissue water potential, and maturation response in embryogenic cultures of Pinus strobus L., In Vitro Cell. Dev. Biol.-Plant, 36, 279-286.
Koornneef, M., Bentsink, L., and Hilhorst, H., 2002, Seed dormancy and germination, Curr. Opin. Plant Biol., 5, 33-36.

상세보기
Korea Seed & Variety Service (KS&VS), 2017, Seed Inspection Guideline, 2017-3.
Kramer-Walter, K.R., Bellingham, P.J., Millar, T.R., Smissen, R.D., Richardson, S.J., and Laughlin, D.C., 2016, Root traits are multidimensional: specific root length is independent from root tissue density and the plant economic spectrum, J. Ecol., 104, 1299-1310.

상세보기
Lazukin, A., Seerdukov, Y., Pinchuk, M., Stepanova, O., Krivov, S., and Lyubushkina, I., 2018, Treatment of spring wheat seeds by ozone generated from humid air and dry oxygen, Res. Agr. Eng., 64(1), 34-40.

상세보기
Liu, Y., Fang, J., Xu, F., CHu, J., Yan, C., Schlappi, M.R., Wang, Y., and Chu, C., 2014, Expression patterns of ABA and GA metabolism genes and hormone levels during rice seed development and imbibition: A comparison of dormant and non-dormant rice cultivars, J. Genet. Genomics, 41, 327-338.

상세보기
Lobet, G., Pages, L., and Draye, X., 2011, A novel image-analysis toolbox enabling quantitative analysis of root system architecture, Plant Physiol., 157, 29-39.

상세보기
Maximiano, C., Carmona, R., Souza, N.O.S., de Alencar, E.R., and Blum, L.E.B., 2018, Physiological and sanitary quality of maize seeds preconditioned in ozonated water, R. Bras. Eng. Agric. Ambiental, 22(5), 360-365.

상세보기
Murashige, T. and Skoog, F., 1962, A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures, Physiol. Plant., 15, 473-497.

상세보기
Oh, Y.Y., Lee, S.U., Kim, Y.J., Jeong, J.T., Ryu, J.H., Kim, S., Jung, J., Bae, H.S., Lee, S.H., Kim, Y.D., Hong, H.C., and Kim, S.L., 2015, Influence of seed germination by treatment of seed dormancy in Indian Jointvetch (Aeschynomene Indica L.) seed, J. Korean Soc. Int. Agric., 27(5), 663-666.

상세보기
O'Neill, M.A., Selvendran, R.R., and Morris, V.J., 1983, Structure of the acidic extracellular gelling polysaccharide produced by Pseudomonas elodea, Carbohydr. Res., 124(1), 123-133.

상세보기
Oracz, K., El-Maarouf Bouteau, H., Farrant, J.M., Cooper, K., Belghazi, M., Job, C., Job, D., Corbineau, F., and Bailly, C., 2007, ROS production and protein oxidation as a novel mechanism for seed dormancy alleviation, Plant J., 50, 452-465.

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Ostonen, I., Puttsepp, U., Biel, C., Alberton, O., Bakker, M.R., Lohmus, K., Majdi, H., Metcalfe, D., Olsthoorn, A.F.M., Pronk, A., Vanguelova, E., Weih, M., and Brunner, I., 2007, Specific root length as an indicator of environmental change, Plant Biosyst., 141(3), 426-442.

상세보기
Rock, S.A., 2003, Vegetative Covers for Waste Containment, In Phytoremediation, Scheper, T. and Tsao, D.T. eds., Adv. Biochem. Eng./Biotechnol., 78, 157-170.
Sauer, D.B. and Burroughs, R., 1986, Disinfection of seed surfaces with sodium hypochlorite, J. Phytopathol., 76(7), 745-749.

상세보기
Schneider, C.A., Rasband, W.S., and Eliceiri, K.W., 2012, NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis, Nat. Methods, 9(7), 671-675.

상세보기
Sudhakar, N., Nagendra-Prasad, D., Mohan, N., Hill, B., Gunasekaran, M., and Murugesan, K., 2011, Assessing influence of ozone in tomato seed dormancy alleviation, Am. J. Plant Sci., 2, 443-448.

상세보기
van den Dries, N., Gianni, S., Czerednik, A., Krens, F.A., and de Klerk, G.-J.M., 2013, Flooding of the apoplast is a key factor in the development of hyperhydricity, J. Exp. Bot., 64(16), 5221-5230.

상세보기
Vazquez, M.E.M., Pena-Valdivia, C.B., Garcia, J.R., Solano, E., Cmpos, H., and Garcia, E., 2017, Chemical scarification and ozone in seed dormancy alleviation of wild and domesticated Opuntia, Cactaceae, Ozone Sci. Eng., 39, 104-114.

상세보기
Violleau, F., Hadjeba, K., Albet, J., Cazalis, R., and Olivier S., 2008, Effect of oxadative treatment on corn seed germination kinetics, Ozone Sci. Eng., 30, 418-422.

상세보기
Whitaker, C., Beckett, R.P., Minibayeva, F.V., and Kranner, I., 2010, Alleviation of dormancy by reactive oxygen species in Bidens pilosa L. seeds, S. Afr. J. Bot., 76, 601-605.

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표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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