$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

배지에서 당근검은잎마름병균의 포자 형성에 영향을 미치는 요인
Factors Affecting Spore Formation of Carrot Leaf Blight Caused by Alternaria dauci In Vitro 원문보기

Research in plant disease = 식물병연구, v.29 no.3, 2023년, pp.251 - 257  

윤세나 (충북대학교 농업생명환경대학 식물의학과) ,  민지영 (충북대학교 농업생명환경대학 식물의학과) ,  김흥태 (충북대학교 농업생명환경대학 식물의학과)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

당근 검은잎마름병을 일으키는 Alternaria dauci의 병원성 검정을 위해서는 양과 질이 우수한 포자를 형성할 수 있는 조건의 표준화가 필요하다. 따라서 본 실험에서는 배지의 종류, 통기 처리, UV 처리 등이 A. dauci KACC42997의 포자 형성에 미치는 효과를 조사하였다. A. dauci KACC42997은 25℃, 암 상태의 PDA 배지에서 7일간 전배양하였다. 배지 상에 나타난 병원균의 공중 균사를 제거하고, 20℃에서 통기 처리와 12시간 주기의 UV 처리를 동시에 실시하며 5일간 배양하였을 때, 가장 많은 포자를 형성하였다. 확립 포자 형성 조건에서 평창, 구미, 제주 등 당근의 주요 재배지역에서 분리한 170개의 다양한 A. dauci 균주가 포자를 형성하는지의 여부를 확인한 결과, 20개 균주가 포자를 형성하지 못하였고, 88.2%의 균주는 포자를 형성하였다. 또한 지역 균주 집단 간의 포자 형성량에는 차이가 있었지만, 당근에 대한 병원성에는 차이가 없었다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

In order to examine the pathogenicity of Alternaria dauci, the causal agent of carrot leaf blight, it is necessary to standardize sporulation conditions to ensure the optimal quantity and quality of spore inoculum. Therefore, in this study, the effects of the growth medium, aeration treatment, and U...

주제어

표/그림 (7)

참고문헌 (24)

  1. Bounds, R. S., Podolsky, R. H. and Hausbeck, M. K. 2007. Integrating?disease thresholds with TOM-CAST for carrot foliar blight management. Plant Dis. 91: 798-804. 

  2. Campbell, M. A., Medd, R. W. and Brown, J. B. 2003. Optimizing conditions for growth and sporulation of Pyrenophora semeniperda.?Plant Pathol. 52: 448-454. 

  3. Douglas, D. R. 1972. The effect of light and temperature on the?sporulation of different isolates of Alternaria solani. Can. J. Bot.?50: 629-634. 

  4. Dugdale, L. J., Mortimer, A. M., Isaac, S. and Collin, H. A. 2000. Disease response of carrot and carrot somaclones to Alternaria?dauci. Plant Pathol. 49: 57-67. 

  5. Farrar, J. J., Pryor, B. M. and Davis, R. M. 2004. Alternaria diseases of?carrot. Plant Dis. 88: 776-784. 

  6. Fourtouni, A., Manetas, Y. and Christias, C. 1998. Effect of UV-B radiation on growth, pigmentation, and spore production in the?phytopathogenic fungus Alternaria solani. Can. J. Bot. 76: 2093-2099. 

  7. Grogan, R. G., Kimble, K. A. and Misaghi, I. 1975. A stem canker disease of tomato caused by Alternaria alternata f. sp. lycopersici.?Phytopathology 65: 880-886. 

  8. Houston, B. R. and Oswald, J. W. 1946. The effect of light and temperature on conidium production by Helminthosporium gramineum in culture. Phytopathology 36: 1049-1055. 

  9. Jimenez, M. F. and Miller, R C. 1966. Effect of light on the sporulation of Alternaria tenuis. Phytopathology 56: 883. 

  10. Kwon, M. Ryu, K. Y., Kim, J. S. and Shin, G. Y. 2007. Occurrence pattern of pests in carrot fields and effect of plant debris removal?after harvest at hightland area. Korean J. Hortic. Sci. Techonol. 25:?316-321. (In Korean) 

  11. Langenberg, W. J., Sutton, J. C. and Gillespie, T. J. 1977. Relation of?weather variables and periodicities of airborne spores of Alternaria dauci. Phytopathology 67: 879-883. 

  12. Latham, A. J. 1974. Effect of moisture on conidiophore morphology?of Cristulariella pyramidalis. Phytopathology 64: 1255-1257. 

  13. Li, C., Sachs, M. S. and Schmidhauser, T. J. 1997. Developmental?and photoregulation of three Neurospora crassa caratenogenic?genes during conidiation induced by dessication. Fungal Genet.?Biol. 21: 101-108. 

  14. Lukens, R. J. and Horsfall, J. G. 1973. Processes of sporulation in Alternaria solani and their response to metabolic inhibitors. Phytopathology 63: 176-182. 

  15. Miller, P. M. 1955. V-8 juice agar as a general purpose medium for?fungi and bacteria. Phytopathology 45: 461-462. 

  16. Park, K. H., Yun, H. J., Ryu, K. Y., Yun, J. C., Kim, S. R., Kim, W. I. et al. 2011. Influence of environmental factors on conidial germination of Alternaria dauci. Res. Plant Dis. 17: 381-385. (In Korean) 

  17. Pruss, S., Fetzner, R., Seither, K., Herr, A., Pfeiffer, E., Metzler, M. et al. 2014. Role of the Alternaria alternata blue-light receptor LreA?(white collar 1) in spore formation and secondary metabolism.?Appl. Environ. Microbiol. 80: 2582-2591. 

  18. Pryor, B. M., Strandberg, J. O., Davis, R. M., Nunez, J. J. and Gilbertson, R. L. 2002. Survival and persistence of Alternaria dauci in?carrot cropping systems. Plant Dis. 86: 1115-1122. 

  19. Rodrigues, T. T. M. S., Maffia, L. A., Dhingra, O. D. and Mizubuti, E. S.?G. 2010. In vitro production of conidia of Alternaria solani. Trop.?Plant Pathol. 35: 203-212. 

  20. Schouten, H. J., van Tongeren, C. A. M. and van den Bulk, R. W. 2002.?Fitness effects of Alternaria dauci on wild carrot in The Netherlands. Environ. Biosafety Res. 1: 39-47. 

  21. Shahin, E. A. and Shepard, J. F. 1979. An efficient technique for?inducing profuse sporulation of Alternaria species. Phytopathology 69: 618-620. 

  22. Soteros, J. J. 1979. Pathogenicity and control of Alternaria radicina?and A. dauci from imported carrot seed in New Zealand. N. Z. J.?Agric. Res. 22: 191-196. 

  23. Strandberg, J. O. 1983. Infection and colonization of inflorescences?and mericarps of carrot by Alternaria dauci. Plant Dis. 67: 1351-1353. 

  24. Vargas, J. M. and Wilcoxson, R. D. 1969. Some effects of temperature?and radiation on sporulation by Helminthosporium dictyoides?on agar media. Phytopathology 59: 1706-1712. 

저자의 다른 논문 :

섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로