초록 ▼

□ 당뇨치료에 소포를 적용하기 위해서 소포의 특성 규명이 전제되어야 함.
□ 본 연구에서는 배아줄기세포와 성체줄기세포에서 소포를 제작하여 각각의 소포가 포함하고 있는 물질을 자연유래 소포와 비교하여 소포의 특성을 규명하였음.
□ 본 연구팀에서 분리한 소포는 크기와 분포면에서 자연유래 소포와 유사하였음.
□ 소포가 포함하고 있는 내부 물질면에서는 자연유래 소포와 차별되는 특징을 보였음. 연구진이 개발한 소포는 세포 증식에 관여하는 인자를 발현하고 있으며, 소포내 물질들을 세포에 전달하는 능력을 가지고 있음을 확인할 수

□ 당뇨치료에 소포를 적용하기 위해서 소포의 특성 규명이 전제되어야 함.
□ 본 연구에서는 배아줄기세포와 성체줄기세포에서 소포를 제작하여 각각의 소포가 포함하고 있는 물질을 자연유래 소포와 비교하여 소포의 특성을 규명하였음.
□ 본 연구팀에서 분리한 소포는 크기와 분포면에서 자연유래 소포와 유사하였음.
□ 소포가 포함하고 있는 내부 물질면에서는 자연유래 소포와 차별되는 특징을 보였음. 연구진이 개발한 소포는 세포 증식에 관여하는 인자를 발현하고 있으며, 소포내 물질들을 세포에 전달하는 능력을 가지고 있음을 확인할 수 있었음.
□ 연구를 통하여 배아줄기세포 유래 소포와 구별되는 성체줄기세포 유래 소포의 생산 조건 또한 확립할 수 있었음.
□ 연구진이 개발한 소포를 췌도세포에 적용하여 소포의 췌도세포 보호 효과를 확인할 수 있었음. 췌도세포에 소포를 사전처리한 후, 대표적인 췌도세포 손상물질인 STZ로 손상을 주었을 때 소포를 처리하지 않은 군에 비하여 높은 생존율을 보였으며 인슐린 분비능도 잘 보존됨을 확인함.
□ STZ로 손상을 유도하지 않은 정상 췌도세포군에서도 소포를 처리하였을 때 소포를 처리하지 않은 정상세포군 보다 생존율이 높음을 확인할 수 있었음.
□ 소포를 당뇨모델 쥐의 미정맥에 투여하였을 때, 당뇨의 개선은 확인하지 못하였음. 그러나 이러한 결과는 IV로 투여된 소포가 target organ인 췌장까지 도달하는 동한 희석되어 당뇨개선 효과를 보이지 않았을 가능성과, 투여한 소포의 농도가 당뇨를 개선 할 만큼의 적정농도가 아닐 가능성을 배제할 수 없음.
□ 생체내 주입된 소포가 당뇨의 target organ인 췌장으로 도달하는지 여부를 확인하기 위하여 형광물질로 소포를 염색한 후 target organ인 췌장에 직접 투여하거나미정맥에 주사하고 형광 영상 분석 장비인 Optix 와 IVIS를 사용하여 생체내 주입된 소포의 분포를 분석한 결과 간, 췌장, 신장에서 주입된 소포의 형광영상을 확인할 수 있었음.
□ 소포를 처리하여 유도된 iPS 세포를 인슐린 분비성 세포로 분화시켜서 신생 beta 세포의 표지자인 C-peptide의 발현을 확인 할 수 있었음.
□ 소포를 치료목적으로 사용하기 위해서는 다량의 소포를 제작할 수 있는 대량 생산 시스템이 필요함. 본 연구를 통하여 기존의 미세필터 사출법에 의한 소포제작 방법에 비하여 동일 시간당 10배 이상의 소포를 제작할 수 있는 원심분리기를 기반으로 하는 개선된 소포제작 기술을 개발하였음.

Abstract ▼

The purpose of this study was to evaluate the effects of nanovesicles (NVs) on islet survival, insulin secretion, transplanted islet survival and engraftment.
■ We developed a novel and efficient method to generate artificial NVs and characterized the NVs.
■ These mimetic nanovesicles contain

The purpose of this study was to evaluate the effects of nanovesicles (NVs) on islet survival, insulin secretion, transplanted islet survival and engraftment.
■ We developed a novel and efficient method to generate artificial NVs and characterized the NVs.
■ These mimetic nanovesicles contain mRNAs, intracellular proteins and plasma membrane proteins, and are shaped like cell-secreted exosomes.
■ When recipient cells are exposed to nanovesicles from stem cells, mRNAs of Oct 3/4 and Nanog are transferred from embryonic stem cells to the target cells.
■ This result suggests that mimetic nanovesicles can be used as vehicles to deliver RNA.
■ This nanovesicle formation method is expected to be used in exosome research and to have applications in drug and RNA-delivery systems.
■ We evaluted the localization of NVs after in vivo injection (by IV injection vs local injection to pancreas).
■ We differentiated NV-induced iPS cells into insulin producing cells and confrimed the expression of C-peptide.
■ However, it shoud be continued to study the efficient method to differentiation.
■ We examined the protective effect of nanovesicles against the STZ-induced cellular damage in pancreatic islet.
■ The cell protective effect of NVs was assessed by the CCK-8 assay.
■ It was observed that NVs- treated islet expressed antiapototic gene Bcl-2.
■ These results suggest that NVs could be a new potential candidate for cytoprotection against STZ-induced damage.