$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

Prevotella nigrescens의 용혈특성에 관한 연구
A STUDY ON THE HEMOLYTIC PROPERTIES OF PREVOTELLA NIGRESCENS 원문보기

大韓齒科保存學會誌 = Journal of Korean Academy of Operative Dentistry, v.30 no.4, 2005년, pp.335 - 343  

곽주석 (원광대학교 치과대학 치과보존학교실) ,  장훈상 (원광대학교 치과대학 치과보존학교실) ,  장석우 (원광대학교 치과대학 치과보존학교실) ,  이수종 (원광대학교 치과대학 치과보존학교실) ,  유용욱 (원광대학교 치과대학 구강생화학교실) ,  민경산 (원광대학교 치과대학 치과보존학교실)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

세균의 용혈활성은 세균이 숙주 내에서 생존하기 위해 필요한 철을 획득하기 위한 특성이며 기능 면에서 볼 때 숙주에 대한 중요한 독력인자로 간주될 수 있다. 본 연구에서는 괴사치수 및 치근단 치주염으로 진단된 환자의 근관에서 분리한 Prevotella nigrescens의 용혈활성을 다양한 조건 하에서 측정하여 그 특성을 규명하는 것을 목적으로 한다. 1. 임상에서 분리한 P. nigrescens와 표준균주인 P. nigrescens ATCC 33563에서 모두 용혈활성이 나타났다. 2. 사람, 면양 및 말 세 가지 종에 대해 용혈활성을 비교한 결과 사람의 적혈구에서 가장 강한 용혈활성을 나타내었다. 3. 용혈소 억제제인 $NaN_3$와 dithiothreitol(DTT)는 농도의존적으로 P. nigrescens의 용혈활성을 감소시켰다 (p<0.05) 4. P. nigrescens가 최대 용혈활성을 나타내는 최적의 pH는 4이었으며, $50^{\circ}C$이하의 온도에서는 용혈활성을 보였으나 $95^{\circ}C$에서 급격히 감소하였다. 5.배양조건에 따른 P. nigrescens의 용혈활성을 비교한 결과 $10\%\;CO_2$배양기에 배양한 경우 혐기성 조건에서 배양한 것보다 더 높은 용혈활성을 보였다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Hemolytic property is a specific feature of bacteria to obtain iron which is essential for its survival in host tissues. Therefore, it is thought to be one of several factors of virulence. The purpose of this study was to investigate the hemolytic properties of Prevotella nigrescens isolated from th...

주제어

참고문헌 (29)

  1. Paster BJ, Boches SK, Galvin JL, Ericson RE, Lau CN, Levanos VA, Sahasrabudhe A, Dewhirst FE. Bacterial diversity in human subgingival plaque. J Bacteriol 183:3770-3783, 2001 

  2. Slots J, Kamma JJ. General health risk of periodontal disease. Int Dent J 51:417-427, 2001 

  3. Loesche WJ. Role of anaerobic bacteria in periodontal disease. Ann Otol Rhinol Laryngol Suppl 154:43-45, 1991 

  4. Daly CG, Seymour GJ, Kieser JB. Bacterial endotoxin: a role in chronic inflammatory periodontal disease? J Oral Pathol 9:1-15, 1980 

  5. Daly C, Fitzgerald GF, Davis R. Biotechnology of lactic acid bacteria with special reference to bacteriophage resistance. Antonie Van Leeuwenhoek 70:99-110, 1996 

  6. Daly C, Mitchell D, Grossberg D, Highfield J, Stewart D. Bacteraemia caused by periodontal probing. Aust Dent J 42:77-80, 1997 

  7. Shah HN, Gharbia SE. Biochemical and chemical studies on strains designated Prevotella intermedia and proposal of a new pigmented species. Prevotella nigrescens sp. nov. Int J Syst Bacteriol 42:542-546, 1992 

  8. Takahashi N, Yamada T. Glucose metabolism by Prevotella intermedia and Prevotella nigrescens. Oral Microbiol Immunol 15:188-195, 2000 

  9. Amano A, Kuboniwa M, Kataoka K, Tazaki K, Inoshita E, Nagata H, Tamagawa H, Shizukuishi S. Binding of hemoglobin by Porphyromonas gingivalis. FEMS Microbiol Lett 134:63-67, 1995 

  10. Chattopadhyay K, Bhattacharyya D, Banerjee KK. Vibrio cholerae hemolysin. Eur J Biochem 269:4351, 2002 

  11. Eberhard TH, Sledjeski DD, Boyle MD. Mouse skin passage of a Streptococcus pyogenes Tn917 mutant of sagA/pel restores virulence, beta-hemolysis and sagN/pel expression without altering the position or sequence of the transposon. BMC Microbiol 1:33, 2001 

  12. Jurgens D, Ozel M, Takaisi-Kikuni NB. Production and characterization of Escherichia coli enterohemolysin and its effects on the structure of erythrocyte membranes. Cell Biol Int 26:175-186, 2002 

  13. Hertle R, Hilger M, Weingardt-Kocher S, Walev I. Cytotoxic action of Serratia marcescens hemolysin on human epithelial cells. Infect Immun 67:817-825, 1999 

  14. Ali-Vehmas T, Vikerpuur M, Pyorala S, Atroshi F. Characterization of hemolytic activity of Staphylococcus aureus strains isolated from bovine mastitic milk. Microbiol Res 155:339-344, 2001 

  15. Byrd W, Hooke AM. Immunization with temperature-sensitive mutants of Actinobacillus pleuropneumoniae induces protective hemolysin-neutralizing antibodies in mice. Curr Microbiol 34:149-154, 1997 

  16. Chu L, Bramanti TE, Ebersole JL, Holt SC. Hemolytic activity in the periodontopathogen Porphyromonas gingivalis: kinetics of enzyme release and localization. Infect Immun 59:1932-1940, 1991 

  17. Haque A, Sugimoto N, Horiguchi Y, Okabe T, Miyata T, Iwanaga S, Matsuda M. Production, purification, and characterization of botulinolysin, a thiol-activated hemolysin of Clostridium botulinum. Infect Immun 60:71-78, 1992 

  18. Glomski IJ, Gedde MM, Tsang AW, Swanson JA, Portnoy DA. The Listeria monocytogenes hemolysin has an acidic pH optimum to compartmentalize activity and prevent damage to infected host cells. J Cell Biol 156:1029-1038, 2002 

  19. Falkler WA Jr, Clayman EB, Shaefer DF. Haemolysis of human erythrocytes by the Fusobacterium nucleatum associated with periodontal disease. Arch Oral Biol 28:735-739, 1983 

  20. Okamoto M, Maeda N, Kondo K, Leung KP. Hemolytic and hemagglutinating activities of Prevotella intermedia and Prevotella nigrescens. FEMS Microbiol Lett 178:299-304, 1999 

  21. Sayers NM, James JA, Drucker DB, Blinkhorn AS. Possible potentiation of toxins from Prevotella in tennedia, Prevotella nigrescens, and Porphyromonas gingivalis by cotinin. J Periodontol 70:1269-1275, 1999 

  22. Gharbia SE, Haapasalo M, Shah HN, Kotiranta A, Lounatmaa K, Pearce MA, Devine DA. Characterization of Prevotella intermedia and Prevotella nigrescens isolates from periodontic and endodontic infections. J Periodontol 65:56-61, 1994 

  23. Bae KS, Baumgartner JC, Shearer TR, David LL. Occurrence of Prevotella nigrescens and Prevotella intermedia in infections of endodontic origin. J Endod 23:620-623, 1997 

  24. Scheffer J, Konig W, Braun V, Goebel W. Comparison of four hemolysin-producing organisms (Escherichia coli, Serratia marcescens, Aeromonas hydrophila, and Listeria monocytogenes) for release of inflammatory mediators from various cells. J Clin Microbiol 26:544-551, 1988 

  25. Beem JE, Nesbitt WE, Leung KP. Identification of hemolytic activity in Prevotella intermedia. Oral Microbiol Immunol 13:97-105, 1998 

  26. Gadeberg OV, Orskov I. In vitro cytotoxic effect of alphahemolytic Escherichia coli on human blood granulocytes. Infect Immun 45:255-260, 1984 

  27. Konig B, Konig W. Effect of growth factors on Escherichia coli alpha-hemolysin-induced mediator release from human inflammatory cells: involvement of the signal transduction pathway. Infect Immun 62:2085-2093, 1994 

  28. Krasilnikov OV, Merzlyak PG, Yuldasheva LN, Rodrigues CG, Bhakdi S, Valeva A. Electrophysiological evidence for heptameric stoichiometry of ion channels formed by Staphylococcus aureus alpha-toxin in planar lipid bilayers. Mol Microbiol 37:1372-1378, 2000 

  29. Mengaud J, Chenevert J, Geoffroy C, Gaillard JL, Cossart P. Identification of the structural gene encoding the SH-activated hemolysin of Listeria monocytogenes: listeriolysin O is homologous to streptolysin O and pneumolysin. Infect Immun 55:3225-3227, 1987 

저자의 다른 논문 :

관련 콘텐츠

저작권 관리 안내
섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로