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강도다리(Platichthys stellatus) 정자의 냉동보존에 미치는 희석액과 동해방지제의 영향
Effects of Diluents and Cryoprotectants on Sperm Cryopreservation in Starry Flounder (Platichthys stellatus) 원문보기

韓國養殖學會誌 = Journal of aquaculture, v.20 no.3, 2007년, pp.173 - 177  

임한규 (국립수산과학원 양식관리팀) ,  안철민 (국립수산과학원 자원회복사업단) ,  노경언 (부경대학교 수산생물학과) ,  민병화 (국립수산과학원 양식관리팀)

초록
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희석액과 동해방지제로 각각 ASP와 DMSO를 사용하여 1년 동안 냉동보존한 후 해동한 강도다리(Platichthys stellatus) 정자의 운동속도는 10% 농도에서 가장 빨랐다. Methanol의 경우 $10{\sim}20%$ 범위에서 유의한 차이를 보이지 않았지만 15%에서 가장 높은 값을 보였다. Glycerol을 동해방지제로 사용하였을 때는 첨가농도가 높아질수록 정자의 운동성과 운동속도가 낮아졌다. 희석액으로 SS를 사용한 경우도 ASP와 비슷한 결과를 보였다. 투과형전자현미경으로 관찰한 냉동하지 않은 신선한 강도다리 정자는 머리, 중편부 및 꼬리로 구성되어 있으며, 치밀한 핵질로 충만한 구형의 머리에는 첨체구조가 관찰되지 않았다. 동해방지제 없이 냉동보존한 경우, 대부분의 정자들이 머리가 찌그러지거나 부분적으로 수축되는 경우가 많았으며 머리의 원형질막이 이탈되고 염색질이 과립상으로 변하거나 균질화되지 않았다. 반면에 냉동보존을 위해 동해방지제를 사용한 경우 부분적으로 정자의 구조적 손상이 관찰되었으나 대부분의 정자는 냉동과 해동과정에서 손상을 입지 않았다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

An experiment was performed to obtain cryopreservation techniques of starry flounder (Platichthys stellatus) sperm. Milt obtained from 24 males were cryopreserved using two diluents, artificial seminal plasma (ASP) and Stein's solution (SS) with three cryoprotectants, dimethyl sulfoxide (DMSO), meth...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 해산어류의 양식이 활발하게 전개되고 있는 국내외 정황으로 볼 때, 기존의 어류정자 냉동보존 연구결과들을 바탕으로 양식 대상 유용어류를 포함한 다양한 어종에 대한 비교 연구가 필요하다. 따라서 본 연구에서는 해산어류의 인공 종묘생산시 활용할 수 있는 정자의 냉동보존 기술을 확보하고자, 산업적으로 유용한 어류인 강도다리(Platichthys stellatus)를 대상으로 정자의 냉동보존을 위한 적정 희석액과 동해방지제를 구명하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
정자의 냉동보존 효과에 영향을 미치는 주된 요인으로는 무엇이 있는가? 정자의 냉동보존 효과에 영향을 미치는 주된 요인으로는 희석액, 동해방지제, 평형시간, 냉동속도 및 해동온도 등이 있다(Jamieson, 1991). 냉동보존의 첫 과정은 적정 희석액의 선택이라 할 수 있으며, 어류정자의 보존을 위해 희석액이 갖추어야 할 조건은 희석시 삼투질농도 변화에 의해 정자가 활성화되는 것을 방지해야 한다.
어류의 정자를 살아있는 상태로 냉동보존하는 기술은 어떠한 문제를 해결할 수 있게 하는가? 어류의 정자를 살아있는 상태로 냉동보존하는 기술은 양식어류의 종묘생산에 있어 어미의 방란·방정 시기가 일치하지 않거나 성비가 고르지 못할 때 발생하는 문제를 해결할 수 있게 한다. 그리고 수컷 어미의 사육관리에 소요되는 노력과 경비를 절약할 수 있게 할 뿐만 아니라, 우량종의 선택교배를 가능하게 하고 우량종이나 재래종의 보존을 간편하게 한다(Lim, 1998).
정자의 냉동보존의 첫 과정은 무엇이라고 할 수 있는가? 정자의 냉동보존 효과에 영향을 미치는 주된 요인으로는 희석액, 동해방지제, 평형시간, 냉동속도 및 해동온도 등이 있다(Jamieson, 1991). 냉동보존의 첫 과정은 적정 희석액의 선택이라 할 수 있으며, 어류정자의 보존을 위해 희석액이 갖추어야 할 조건은 희석시 삼투질농도 변화에 의해 정자가 활성화되는 것을 방지해야 한다. 따라서 정장(seminal plasma)의 삼투질농도와 유사한 유기 화합물이나 염류를 첨가하는 것이 일반적이다.
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참고문헌 (16)

  1. Billard, R., J. Cosson and L. W. Crim, 1993. Motility of fresh and aged halibut sperm. Aquat. Living Resour., 6, 67-75 

  2. Blaxter, J. H. S., 1953. Sperm storage and cross fertilization of spring and autumn spawning herring. Nature, 172, 1189-1190 

  3. Chang, Y. J., H. K. Lim, Y. J. Chang and H. S. Kim, 1999a. Sperm cryopreservation and fertility of post-thaw sperm in river puffer, Takifugu obscrus. J. Aquaculture, 12, 1-5. (in Korean) 

  4. Chang, Y. J., Y. H. Chang, H. K. Lim and K. H. Kho, 1999b. Cold storage and cryopreservation of grey mullet (Mugil cephalus) sperm. J. Aquaculture, 12, 57-62. (in Korean) 

  5. Chang, Y. J. and Y. J. Chang, 2002. Milt properties of four flatfish species and fine structure of their cryopreserved spermatozoa. J. Fish. Sci. Tech., 5, 87-96 

  6. Chao, N. H. and I. C. Liao, 2001. Cryopreservation of finfish and shellfish gametes and embryos. Aquaculture, 197, 161-189 

  7. Chereguini, O., R. M. Cal, C. Dreanno, B. O. Baulny, M. Suquet and G. Maisse, 1997. Short-term storage and cryopreservation of turbot (Scophthalmus maximus) sperm. Aquat. Living Resour., 10, 251-255 

  8. Dreanno, C., M. Suquet, L. Quemener, J. Cosson, F. Fierville, Y. Normant and R. Billard, 1997. Cryopreservation of turbot (Scophthalmus maximus) spermatozoa. Theriogenology, 48, 589-603 

  9. Gwo, J. C., 1994. Cryopreservation of yellowfin seabream (Acanthopagrus latus) spermatozoa. Theriogenology, 41, 989-1004 

  10. Gwo, J. C. and C. R. Arnold, 1992. Cryopreservation of Atlantic croaker spermatozoa: Evaluation of morphological changes. J. Exp. Zool., 264, 444-453 

  11. Gwo, J. C., H. Kurokura and R. Hirano, 1993. Cryopreservation of spermatozoa from rainbow trout, common carp, and marine puffer. Nippon Suisan Gakkaishi, 59, 777-782 

  12. Jamieson, B. G. M., 1991. Fish evolution and systematics : Evidence from spermatozoa. Cambridge University Press, New York, 319 pp 

  13. Kusuda, S., 2004. Current status and perspective of cryopreservation of sperm and blastomeres in fish. Fish Genetics and Breeding Science, 34, 1-25. (in Japanese) 

  14. Lim, H. K., 1998. Physiological properties of sperm and gamete preservation in black seabream, Acanthopagrus schlegeli. Ph.D. Thesis, Pukyong National University, Busan, Korea, 130 pp. (in Korean) 

  15. Lim, H. K., C. M. An, M. H. Son, M. W. Park, E. O. Kim and S. G. Byun, 2006. Effects of diluents and temperature on sperm storage in starry flounder (Platichthys stellatus). J. Aquaculture, 19, 47-51. (in Korean) 

  16. Suquet, M., C. Dreanno, B. Petton, Y. Normant, M. H. Omnes and R. Billard, 1998. Long-term effects of the cryopreservation of turbot (Psetta maxima) spermatozoa. Aquat. Living Resour., 11, 45-48 

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