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부유 및 부착성장 미생물을 이용한 접촉안정형 영양염류처리 하이브리드 공정
Nutrient Removal Hybrid Process to Use Suspended and Attached Growth Microorganisms and Apply the Contact and Stabilization Process 원문보기

대한환경공학회지 = Journal of Korean Society of Environmental Engineers, v.29 no.4, 2007년, pp.452 - 459  

김만수 (대양바이오테크(주) 부설환경기술연구소) ,  박종운 (대양바이오테크(주) 부설환경기술연구소) ,  이상일 (충북대학교 환경공학과) ,  박철휘 (서울시립대학교 환경공학부)

초록
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부유 및 부착성장 미생물을 이용한 접촉안정형 영양염류처리 하이브리드공정은 질산화 반응조내에 EPS(Expanded Poly-Styrene) 여재를 충진하여 autotrophs와 heterotrophs의 분리성장과 질산화균의 우점화를 도모함으로써 수리학적체류시간 6시간 이내에서도 양호한 처리수질을 얻을 수 있는 공정이다. 본 공정의 운전결과 방류수의 $BOD_5,\;COD_{Mn}$, SS의 평균농도는 5.2 mg/L, 7.3 mg/L, 4.9 mg/L이었으며, T-N 및 T-P농도는 6.8 mg/L 및 0.6 mg/L로서 양호한 처리 결과를 얻을 수 있었다. 또한 본 공법의 평균 제거효율은 $BOD_5,\;COD_{Mn}$, SS의 경우 94.6%, 79.8%, 94.9%이었으며, T-N 및 T-P로서 70.8% 및 76.9%로 나타났다. EPS 여재에 부착된 부착미생물 군집의 16S-rRNA 분석결과 ammonia-oxidizing bacteria로 알려진 Nitrosomonas속, Nitrosoccus속, Gallionella속이 포함된 cluster가 EPS 여재에 부착된 biofilm의 6% 정도인 것으로 조사되었다. 결과적으로 질산화미생물의 우점화를 통해 질산화 반응시간을 단축시킴으로서 6시간 이내의 짧은 수리학적 체류시간에서도 T-N 및 T-P농도를 10 mg/L 및 1.0 mg/L 이하로 처리할 수 있었던 것으로 사료된다.

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Nutrient removal hybrid process to use suspended and attached growth microorganisms and apply the contact and stabilization process was process obtaining good results to HRT within 6 hours to dominate nitrifier and to promote separation and growth of autotrophs and heterotrophs to pack with EPS(Expa...

주제어

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제안 방법

  • Blue-white colony 선별법에 의해 각 시료 당 약 50개 정도의 재조합 클론을 선별하였다. 16S rRNA 유전자 증폭에 이용된 eubacteri시 primer 1492R과 T-vector 삽입 자리에 존재하는 염기서열에 상보적인 prGTf primer쌍을 사용하여 direct amplified PCR을 수행하였고, 증폭된 PCR 산물의 크기를 확인하여 5, 에서 3, 방향으로 삽입된 재조합 클론을 2차 선별하였다.
  • Ammonia-oxidizing bacteria의 specific primer Nsol225R과 nitrite-oxidizing bacteria의 specific primer NIT3, NIS 를 사용하여 16S rRNA 유전자를 증폭하였다(Fig. 12). 이를 통해 EPS 여재에 부착된 biofilm에 질산화 균이 있음을 확인할 수 있었다.
  • EPS 여재에 부착된 biofilm으로부터 구축한 16S rDNA 라이브러리에서 방향으로 삽입된 클론을 DY1 시료와 DY2 시료에서 각각 50개씩 선별하여 ABI 3730XL Capillary DNA Sequencer(Applied Biosystems)로 염기서열을 분석하였다. 분석된 염기서열의 크기는 500~900 bp로 다양했으며, 이 부분 염기서열들을 GenBank에 등록되어 있는 세균들의 16S rDNA 서열과 비교하였다.
  • Eubacterial primer 27F와 1492R을 사용하여 16S rRNA 유전자를 증폭하여 PCR product는 1% agarose gel에서 전기영동 하여 확인하였다(Fig. 13). 약 1.
  • Miller 등의 bead beating 방법을 변형하여 시료로부터 핵산을 직접 추출하였고, 0.5X TBE, 1% agarose로 전기 영동 한 후 EtBr 염색하여 DNA를 확인하였다(Fig. 11). 10 Kbp 이상의 genomic DNA가 추출되었음을 확인하였다.
  • 하지만 Nitrospira phylum에 속하는 nitrite-oxidizing bacteria의 군집은 확인되지 않았다. 따라서 biofilm에서 확인 된 Proteobacteria phylum만을 살펴보았다(Fig. 17). Proteobacteria phylum속하는 대부분의 클론이 unclassified a-, p-, x -proteobacteriae.
  • 이와 같이 질산화 반응조로 유입되는 최초침전지 상등수는 상당부분 유기물이 제거된 처리수로 autotrophs와 heterotrophs의 경쟁관계에 있어서 autotrophs가 우점화 될 수 있는 조건을 제공해 주는 것으로 나타났다. 또한 흡착 후 분리된 T-N이 유입 T-N의 46.4%로 이는 기존 dephanox공정에서 제거되지 않아 방류수 T-N농도가 높았던 원인으로 본 처리 공정은 이러한 흡착 T-N의 제거를 위해 후속처리 공정으로 간헐포기조, 무산 소조및 재포기조와 내부반송 라인을 설치하여 방류수의 T-N농도를 저감시킬 수 있었다. PO의 내부거동 분석 결과 혐기접촉조와 무산소조#1에서 PO의 방출이 약 400% 이상 나타나 순혐기 조건이 제공되어 PQ?- 방출량을 극대화 시킬 수 있는 것으로 조사되었으며, 이후 재포기조를 거치며 0.
  • 분석된 염기서열의 크기는 500~900 bp로 다양했으며, 이 부분 염기서열들을 GenBank에 등록되어 있는 세균들의 16S rDNA 서열과 비교하였다. EPS 여재에 부착된 biofilm 의 염기서열들과 GenBank에 등록되어 있는 세균들의 16S rDNA 서열을 비교한 결과, 근접한 세균들과 각각 89~98% 의 유사도를 보였다.
  • 5. EPS 여재 부착미생물 군집의 분자생물학적 분석

    분자생물학적 세균 군집 분석을 위하여 biom이 형성된 EPS 여재 시료를 멸균된 채수병에 채취하여(Fig. 2(a)), 2-3시간 이내에 4℃에 보관, 운송하였다.

  • 18을 유지하였다. 유기물을 흡착한 생슬러지 반송 및 외부반송율은 0.5~ 1.0Q의 범위내에서 동일한 반송율을 적용하였으며, 내부반송율은 1~ 1.5Q의 범위내에서 운전하였다.

대상 데이터

  • 본 개발공정은 Dephanox 공정의 변법으로 부유성장과 부착성장을 동시에 이용한 하이브리드(Hybrid)공정으로 양질의 질산화균 농축을 도모하기 위하여 EPS 여재를 이용하였다. 질산화균 농축을 위한 여재의 사용은 부유성장 미생물을 이용한 공정에 비해 낮은 온도, 중금속 및 유기물 부하변동에서도 처리가 양호한 것으로 보고되었다.
  • 실증 plant는 경기도 남양주시 화도읍 화도 하수종말 처리시설내 유휴 부지에 2005년도 12월 식종하여 현재까지 운전 중에 있다. Fig.

데이터처리

  • 15). GenBank(htTP:ncbi.nlm.nih.gov/)의 data- base로부터 확인된 염기서열을 ClustalX(version 1.83) 프로그램을 이용하여 정렬하고 PHYLIP package v3.6a3을 이용하여 Jukes & Cantor distance model과 neighbor-joining method에 의해 염기서열간의 진화적 거리를 계산하고 계통분류 학적 tree를 작성하였다(Fig. 16).

이론/모형

  • coll DH10B에 Sambrook와 Russell(2001)의 방법에 따라 형질전환 시켰다. Blue-white colony 선별법에 의해 각 시료 당 약 50개 정도의 재조합 클론을 선별하였다. 16S rRNA 유전자 증폭에 이용된 eubacteri시 primer 1492R과 T-vector 삽입 자리에 존재하는 염기서열에 상보적인 prGTf primer쌍을 사용하여 direct amplified PCR을 수행하였고, 증폭된 PCR 산물의 크기를 확인하여 5, 에서 3, 방향으로 삽입된 재조합 클론을 2차 선별하였다.
  • 증폭된 PCR 산물을 pGEM-T vector를 이용하여 E. coll DH10B에 Sambrook와 Russell(2001)의 방법에 따라 형질전환 시켰다. Blue-white colony 선별법에 의해 각 시료 당 약 50개 정도의 재조합 클론을 선별하였다.
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참고문헌 (10)

  1. Bortone, G., Saltarelli, R., Alonso, V., Sorm, R., Wanner, J., and Tilche, A., 'Biological anoxic phosphorus removal-The dephanox process,' Water Sci. Technol., 34(1-2), 119-128(1996) 

  2. Deguchi, H. and Kashiwaya, M., 'Study on nitrified liquor recycling process ooperations using polyurethana foam sponge cubes as a biomass support medium,' Water Sci. Technol., 30(6), 143-149(1994) 

  3. Jenicek, P., Bortone, G., Cech, J. S., Wanner, J., and Tilche, A., 'New configurations of NDEBPR system-Experimental verification with municipal wasterwater,' Newsletter of the IAWQ Specialist Group on Activated Sludge Population Dynamics, 5(2), 11-15(1993) 

  4. Kim, Y., Mikawa, T., Tanaka, K., and Emori, H., 'Development of novel anaerobic/aerobic filter process for nitrogen removal using immobilized nitrifier pellets,' Water Sci. Technol., 36(12), 151-158(1997) 

  5. Kuba, T., Loosdrecht, M. C. M. Van and Heijnen, J. J., 'Phosphorus and nitrogen removal with minimal COD requirement by integration of denitrifying dephosphatation and nitrification in a two-sludge system,' Water Res., 30(7), 1702-1710(1996) 

  6. Randall, C. and Sen, D., 'Full-scale evalution of an integrated fixed-film activated sludge(IFAS) process for enhanced nitrogen removal,' Water Sci. Technol., 33(12), 155-162(1996) 

  7. Sorm, R., Wanner, J., Saltarelli, R., Bortone, G., and Tilche, A., 'Verification of anoxic phosphate uptake as the main biochemical mechanism of the 'DEPHANOX' process,' Water Sci. Technol., 35(10), 87-94(1997) 

  8. Tarek, A. E., Valdimir, S., Grietje, Z., and Gatez, L., 'Low temperature pre-treatment of domestic sewage in an anaerobic hybrid or an anaerobic filter reactor,' Bioresource Technology, 82, 233-239(2002b) 

  9. Wanner, J., Cech, J. S., and Kos, M., 'New process design for biological nutrient removal,' Water Sci. Technol., 25(4-5), 445-448(1992) 

  10. Miller, D. N., Bryant, J. E., Madsen, E. L., and Ghiorse, W. C., 'Evaluation and optimization of DNA extraction and purification procedures for soil and sediment samples,' Appl. Environ. Microbial., 65, 4715-4724(1999) 

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