$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

Minority report; Pseudomonas aeruginosa의 정족수 인식(쿼럼 센싱) 신호물질로써의 Diketopiperazines과 Pyocyanin
Minority report; Diketopiperazines and Pyocyanin as Quorum Sensing Signals in Pseudomonas aeruginosa 원문보기

Korean journal of microbiology = 미생물학회지, v.44 no.2, 2008년, pp.85 - 92  

이준희 (부산대학교 약학대학 약학과)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

Pseudomonas aeruginosa는 기회 감염성 병원균으로, Cystic fibrosis, 미생물 감염성 각막염,화상 부위 2차 감염 등의 다양한 질병을 초래한다. 정족수 인식(쿼럼 센싱)이라고도 알려져 있는 세포간 신호전달 기전이 이러한 감염에서 중요한 역할을 하기 때문에 P. aeruginosa의 정족수 인식 시스템들이 집중적으로 연구되어 왔다. P. aeruginosa의 정족수 인식 시스템들을 소개하는 많은 문헌들이 주로 두 개의 주요 acyl-homoserine lactone (AHL) 계열 정족수 신호물질들인 N-3-oxododecanoyl homoserine lactone (3OC12)과 N-butanoyl homoserine lactone (C4)에 초점을 맞추어 설명하고 있지만, 실제로는 몇 가지 새로운 신호물질들이 발견되어져 왔고, 그들이 P. aeruginosa의 병독성과 신호전달에 중요한 역할을 할 수 있음이 제안되어져 왔다. 그 중 하나가 PQS(Pseudomonas quinolone signal; 2-heptyl-3-hydroxy-4-quinolone)인데, 이 물질은 현재 P. aeruginosa의 잘 규명된 주요 신호물질로 인식되고 있다. 이에 더하여, 최근의 연구들은 또 다른 가능성 있는 P. aeruginosa신호물질들을 제안해 왔는데, diketopiperazines (DKPs)과 pyocyanin이 그들이다. DKPs는 환형 dipeptide로써 이를 구성하는 아미노산의 종류에 따라 다양한 구조를 가진다. P. aeruginosa의 배양액에서 검출된 몇몇 DKPs들이 기존에는 AHL에만 특이적으로 반응한다고 알려졌던 Vibrio 랸�N갸 LuxR biosensor를 활성화 시킬 수 있다는 것이 발견되어 새로운 신호물질로 제안되었다. Pyocyanin (1-hydroxy-5-methyl-phenazine)은 P. aeruginosa가 생산하는 여러 phenazine 화합물들 중의 하나로써, 특징적인 청록색을 띄는 산화-환원 활성물질이다. 이 물질도 정체 성장기 동안 일부 정족수 인식의 조절을 받는 유전자들의 발현을 증가시키는 최종 신호 인자로 최근 제안되었으며, 그 신호는 또 다른 전사 조절 인자인 SoxR에 의해 매개된다고 제안되었다. 본 논문에서는 P. aeruginosa에서 새롭게 발견, 제안되고 있는 이들 신호 전달 물질들에 대해 자세히 다루어 보기로 한다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Pseudomonas aeruginosa is an opportunistic human pathogen, causing a wide variety of infections including cystic fibrosis, microbial keratitis, and burn wound infections. The cell-to-cell signaling mechanism known as quorum sensing (QS) plays a key role in these infections and the QS systems of P. a...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • 본 총설에서는 아직 주류 신호물질로 여겨지지는 않고 있지만 새롭게 P- aerwgzTiosa의 신호물질로 제안되었던 이들 DKPs, phenazine pyocyanin 등에 대해 알아보기로 하겠다.

가설 설정

  • Anthranilate에 의해 정족수 인식이 영향을 받을 뿐만 아니라, anthranilate 합성도 정족수 신호의 영향을 깊이 받는다. P. aeruginosa의 정족수 인식 transcriptome 분석은 an血?C와 catA 는 RhlR-I 시스템에 의해, PQS 합성 오페론인 pqsABCDE는 LasR-I 시스템에 의해 발현이 유도됨을 보여주었다(37). 그런데두 정족수 시스템은 antABC/catA와 pqsABCDE을 서로 다른 시점에서 발현시키며(pgsABCDE는 지수 성장기에, antABC/catA는 정체 성장기에), 서로 반대편의 작용을 억제한다(RhlR과 LasR이 각각 pqsABCDE와 의 발현을 억제) (Joon-Hee Lee, unpublished data).
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (44)

  1. Adamczeski, M., A.R. Reed, and P. Crews. 1995. New and known diketopiperazines from the Caribbean sponge, Calyx cf. podatypa. J. Nat. Prod. 58, 201-208 

  2. Brelles-Marino, G. and E.J. Bedmar. 2001. Detection, purification and characterisation of quorum-sensing signal molecules in plant-associated bacteria. J. Biotechnol. 91, 197-209 

  3. Degrassi, G., C. Aguilar, M. Bosco, S. Zahariev, S. Pongor, and V. Venturi. 2002. Plant growth-promoting Pseudomonas putida WCS358 produces and secretes four cyclic dipeptides: cross-talk with quorum sensing bacterial sensors. Curt. Microbiol. 45, 250-254 

  4. Deziel, E., S. Gopalan, A.P. Tampakaki, F. Lepine, K.E. Padfield, M. Saucier, G. Xiao, and L.G. Rahme. 2005. The contribution of MvfR to Pseudomonas aeruginosa pathogenesis and quorum sensing circuitry regulation: multiple quorum sensing-regulated genes are modulated without affecting lasRI, rhlRI or the production of N-acyl-L-homoserine lactones. Mol. Microbiol. 55, 998-1014 

  5. Dietrich, L.E., A. Price-Whelan, A. Petersen, M. Whiteley, and D.K. Newman. 2006. The phenazine pyocyanin is a terminal signalling factor in the quorum sensing network of Pseudomonas aeruginosa. Mol. Microbiol. 61, 1308-1321 

  6. Diggle, S.P., P. Cornelis, P. Williams, and M. Camara. 2006. 4-quinolone signalling in Pseudomonas aeruginosa: old molecules, new perspectives. Int. J. Med. Microbiol. 296, 83-91 

  7. Farrow, J.M., 3rd and E.C. Pesci. 2007. Two distinct pathways supply anthranilate as a precursor of the Pseudomonas quinolone signal. J. Bacteriol. 189, 3425-3433 

  8. Gallagher, L.A., S.L. McKnight, M.S. Kuznetsova, E.C. Pesci, and C. Manoil. 2002. Functions required for extracellular quinolone signaling by Pseudomonas aeruginosa. J. Bacteriol. 184, 6472-6480 

  9. Gaudu, P., S. Dubrac, and D. Touati. 2000. Activation of SoxR by overproduction of desulfoferrodoxin: multiple ways to induce the soxRS regulon. J. Bacteriol. 182, 1761-1763 

  10. Hassett, D.J., L. Charniga, K. Bean, D.E. Ohman, and M.S. Cohen. 1992. Response of Pseudomonas aeruginosa to pyocyanin: mechanisms of resistance, antioxidant defenses, and demonstration of a manganese-cofactored superoxide dismutase. Infect. Immun. 60, 328-336 

  11. Hedner, E., M. Sjogren, S. Hodzic, R. Andersson, U. Goransson, P.R. Jonsson, and L. Bohlin. 2008. Antifouling activity of a dibrominated cyclopeptide from the marine sponge Geodia barretti. J. Nat. Prod. 71, 330-333 

  12. Henke, J.M. and B.L. Bassler. 2004. Bacterial social engagements. Trends Cell. Biol. 14, 648-656 

  13. Hentschel, U., K.M. Usher, and M.W. Taylor. 2006. Marine sponges as microbial fermenters. FEMS Microbiol. Ecol. 55, 167-177 

  14. Holden, I., I. Swift, and I. Williams. 2000. New signal molecules on the quorum-sensing block. Trends Microbiol. 8, 101-104;discussion 103-4 

  15. Holden, M.T., S. Ram Chhabra, R. De Nys, P. Stead, N.J. Bainton, P.J. Hill, M. Manefield, N. Kumar, M. Labatte, D. England, S. Rice, M. Givskov, G.P. Salmond, G.S. Stewart, B.W. Bycroft, S. Kjelleberg, and P. Williams. 1999. Quorum-sensing cross talk: isolation and chemical characterization of cyclic dipeptides from Pseudomonas aeruginosa and other Gram-negative bacteria. Mol. Microbiol. 33, 1254-1266 

  16. Jayatilake, G.S., M.P. Thornton, A.C. Leonard, J.E. Grimwade, and B.J. Baker. 1996. Metabolites from an Antarctic sponge-associated bacterium, Pseudomonas aeruginosa. J. Nat. Prod. 59, 293-296 

  17. Kendall, M.M. and V. Sperandio. 2007. Quorum sensing by enteric pathogens. Curr. Opin. Gastroenterol. 23, 10-15 

  18. Kobayashi, K. and S. Tagawa. 2004. Activation of SoxR-dependent transcription in Pseudomonas aeruginosa. J. Biochem. 136, 607-615 

  19. Kohanski, M.A., D.J. Dwyer, B. Hayete, C.A. Lawrence, and J.J. Collins. 2007. A common mechanism of cellular death induced by bactericidal antibiotics. Cell 130, 797-810 

  20. Lautru, S., M. Gondry, R. Genet, and J.L. Pernodet. 2002. The albonoursin gene Cluster of S. noursei biosynthesis of diketopiperazine metabolites independent of nonribosomal peptide synthetases. Chem. Biol. 9, 1355-1364 

  21. Liochev, S.I. and I. Fridovich. 1992. Fumarase C, the stable fumarase of Escherichia coli, is controlled by the soxRS regulon. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89, 5892-5896 

  22. Liochev, S.I., A. Hausladen, W.F. Beyer, Jr., and I. Fridovich. 1994. NADPH: ferredoxin oxidoreductase acts as a paraquat diaphorase and is a member of the soxRS regulon. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91, 1328-1331 

  23. Martins, M.B. and I. Carvalho. 2007. Diketopiperazines: biological activity and synthesis. Tetrahedron 63, 9923-9932 

  24. Mohamed, N.M., E.M. Cicirelli, J. Kan, F. Chen, C. Fuqua, and R.T. Hill. 2008. Diversity and quorum-sensing signal production of Proteobacteria associated with marine sponges. Environ. Microbiol. 10, 75-86 

  25. Oglesby, A.G, J.M. Farrow, 3rd, J.H. Lee, A.P. Tomaras, E.P. Greenberg, E.C. Pesci, and M.L. Vasil. 2008. The influence of iron on Pseudomonas aeruginosa physiology: a regulatory link between iron and quorum sensing. J. Biol. Chem. Article in Press 

  26. Palma, M., J. Zurita, J.A. Ferreras, S. Worgall, D.H. Larone, L. Shi, F. Campagne, and L.E. Quadri. 2005. Pseudomonas aeruginosa SoxR does not conform to the archetypal paradigm for SoxR-dependent regulation of the bacterial oxidative stress adaptive response. Infect. Immun. 73, 2958-2966 

  27. Park, D.K., K.E. Lee, C.H. Baek, I.H. Kim, J.H. Kwon, W.K. Lee, K.H. Lee, B.S. Kim, S.H. Choi, and K.S. Kim. 2006. Cyclo(Phe-Pro) modulates the expression of ompU in Vibrio spp. J. Bacteriol. 188, 2214-2221 

  28. Park, W., S. Pena-Llopis, Y. Lee, and B. Demple. 2006. Regulation of superoxide stress in Pseudomonas putida KT2440 is different from the SoxR paradigm in Escherichia coli. Biochem. Biophys. Res. Commun. 341, 51-56 

  29. Parsek, M.R. and E.P. Greenberg. 2005. Sociomicrobiology: the connections between quorum sensing and biofilms. Trends Microbiol. 13, 27-33 

  30. Pesci, E.C. 2000. New signal molecules on the quorum-sensing block: response. Trends Microbiol. 8, 103-104 

  31. Pomposiello, P.J. and B. Demple. 2001. Redox-operated genetic switches: the SoxR and OxyR transcription factors. Trends Biotechnol. 19, 109-114 

  32. Price-Whelan, A., L.E. Dietrich, and D.K. Newman. 2007. Pyocyanin alters redox homeostasis and carbon flux through central metabolic pathways in Pseudomonas aeruginosa PA14. J. Bacteriol. 189, 6372-6381 

  33. Privalle, C.T., S.E. Kong, and I. Fridovich. 1993. Induction of manganese-containing superoxide dismutase in anaerobic Escherichia coli by diamide and 1,1O-phenanthroline: sites of transcriptional regulation. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90, 2310-2314 

  34. Rahme, L.G., E.J. Stevens, S.F. Wolfort, J. Shao, R.G. Tompkins, and F.M. Ausubel. 1995. Common virulence factors for bacterial pathogenicity in plants and animals. Science 268, 1899-1902 

  35. Reading, N.C. and V. Sperandio. 2006. Quorum sensing: the many languages of bacteria. FEMS Microbiol. Lett. 254, 1-11 

  36. Schuster, M. and E.P. Greenberg. 2006. A network of networks: quorum-sensing gene regulation in Pseudomonas aeruginosa. Int. J. Med. Microbiol. 296, 73-81 

  37. Schuster, M., C.P. Lostroh, T. Ogi, and E.P. Greenberg. 2003. Identification, timing, and signal specificity of Pseudomonas aeruginosa quorum-controlled genes: a transcriptome analysis. J. Bacteriol. 185, 2066-2079 

  38. Sjogren, M., U. Goransson, A.L. Johnson, M. Dahlstrom, R. Andersson, J. Bergman, P.R. Jonsson, and L. Bohlin. 2004. Antifouling activity of brominated cyclopeptides from the marine sponge Geodia barretti. J. Nat. Prod. 67, 368-372 

  39. Stierle, A.C., J.H. Cardellina, and G.A. Strobel. 1988. Maculosin, a host-specific phytotoxin for spotted knapweed from Alternaria alternata. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85, 8008-8011 

  40. Taylor, M.W., P.J. Schupp, H.J. Baillie, T.S. Charlton, R. De Nys, S. Kjelleberg, and P.D. Steinberg. 2004. Evidence for acyl homoserine lactone signal production in bacteria associated with marine sponges. Appl. Environ. Microbiol. 70, 4387-4389 

  41. Urata, M., M. Miyakoshi, S. Kai, K. Maeda, H. Habe, T. Omori, H. Yamane, and H. Nojiri. 2004. Transcriptional regulation of the ant operon, encoding two-component anthranilate 1,2-dioxygenase, on the carbazole-degradative plasmid pCAR1 of Pseudomonas resinovorans strain CA10. J. Bacteriol. 186, 6815-6823 

  42. Welch, M., H. Mikkelsen, J.E. Swatton, D. Smith, G.L. Thomas, F.G. Glansdorp, and D.R. Spring. 2005. Cell-cell communication in Gram-negative bacteria. Mol. Biosyst. 1, 196-202 

  43. Williams, P. 2007. Quorum sensing, communication and crosskingdom signalling in the bacterial world. Microbiology 153, 3923-3938 

  44. Wilson, R., T. Pitt, G. Taylor, D. Watson, J. MacDermot, D. Sykes, D. Roberts, and P. Cole. 1987. Pyocyanin and 1-hydroxyphenazine produced by Pseudomonas aeruginosa inhibit the beating of human respiratory cilia in vitro. J. Clin. Invest 79, 221-229 

저자의 다른 논문 :

섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로