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콩나물 부패균 Pseudomonas sp. SN239 동정과 콩나물 부패병 내병성 계통 선발
Identifications of a Sprout-Rot Pathogen Pseudomonas Species SN239 and Selection Resistant Soybean Line 원문보기

생명과학회지 = Journal of life science, v.18 no.12 = no.104, 2008년, pp.1771 - 1774  

임종수 (영남대학교 생명공학부 생명공학) ,  도금숙 (영남대학교 생명공학부 생명공학) ,  이동선 (영남대학교 생명공학부 생명공학) ,  강상구 (영남대학교 생명공학부 생명공학) ,  서상곤 (영남대학교 자연자원대학 원예학과) ,  박의호 (영남대학교 생명공학부 생명공학)

초록
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콩나물은 우리나라에서 오래 전부터 재배하여 온 채소로서 그 기호성이 매우 높으며 영양학적으로 우수하나 일부 열악한 재배환경으로 콩나물의 부패문제가 자주 발생해 왔다. 따라서 본 연구는 시중의 부패된 콩나물로부터 다양한 병원균을 분리함과 동시에 재래콩 유전자원으로부터 시중의 콩나물 부패병에 강한 품종을 탐색하고 선발된 내병성 계통의 생육특성을 조사하였다. 분리된 콩나물 부패균들 중 병원성이 강한 콩나물 부패균인 Pseudomonas sp. SN239을 분리하고 16S rRNA 염기서열을 동정한 결과 P. putita, P. plecoglossicida, P. monteilii 및 P. mevalonii와 근연관계를 보였으나 완전히 일치하지는 않았으므로 Pseudomonas sp. SN239는 새로이 동정된 콩나물 부패균으로 여겨진다. 또한 재래콩 194계통에 콩나물 부패병균 Pseudomonas sp. SN239을 접종하여 저항성을 검정한 결과, 이병성 계통은 심하게 부패되었으나 한국 고유계통 YNPCS3-19는 병원성이 없었으며 또한 지속적으로 생육하였다. 그러므로 부패균 저항성 계통 YNPCS3-19는 부패균 저항성 품종 육성에도 활용 가치가 크다고 판단된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Control microbial contamination in pathogens to soy sprouts has always been highly concerned in soybean sprout industries because the soybean sprouts are consumed largely as a nutritious fresh vegetable around the world. However, pathogens in soy sprouts are little known. Here, we isolated a strain ...

주제어

AI 본문요약
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제안 방법

  • Madison, WI, USA). DNA sequencing for the ribosomal RNA in pGEM-T vector was performed with the BigDye Terminator Cycle Sequencing kits (PE Biosystems, Foster City, CA, USA) using an automated DNA sequencing machine (ABI 3100, Applied Biosystems, Rockville, MD, USA). Primers used for DNA sequencing were SP6 (5’-TATTTAGGTGACACTATAG-3’) and T7 (5’-TAATACGACTCACTATAGGG-3’).

대상 데이터

  • We amplified 1,452 nucleotides of 16S rRNA sequences of Pseudomonas sp. SN239 (FJ529815) (Fig. 1) using rRNA specific primers. The 16S rRNA sequences of Pseudomonas sp.

이론/모형

  • The 16S rRNA sequences were aligned based on their secondary structures. Evolutionary trees were constructed with the phylip program package [3], using the neighbour-joining method [9] with genetic distances computed by using the Jukes-Cantor model [5]. Phylogenetic trees were constructed from the 16S rRNA sequences.
  • Neucleotide and deduced amino acid sequences were analyzed using the programs in DNAsis (Hitachi, Japan). The nucleotide sequences were compared with sequences deposited in public databases of NCBI using the BLAST algorithm [1].
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참고문헌 (12)

  1. Altschul, S. F., W. Gish, W. Miller, E. W. Myers and D. J. Lipman. 1990. Basic local alignment search tool. J. Mol. Biol. 215, 403-410. 

  2. Chun, J., M. S. Rhee, J. I. Han and K. S. Bae. 2001. Arthrobacter siderocapsulatus Dubinina and Zhdanov $1975^{AL}$ is a later subjective synonym of Pseudomonas putida (Trevisan 1889) Migula $1895^{AL}$ . Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 51, 169-170. 

  3. Felsenstein, J. 1989. phylip-phylogeny inference package (version 3.2). Cladistics 5, 164-166. 

  4. Golbitz, P. 1995. Traditional soyfoods: processing and products. J. Nutr. 125, 570-572. 

  5. Jukes, T. H. and C. R. Cantor. 1969. Evolution of protein molecules. In Mammalian Protein Metabolism, pp. 21-132, Edited by H. N. Munro. New York, Academic Press. 

  6. Keen, N. T. 1990. Gene-for-gene complementarity in plant-pathogen interactions. Annu Rev Genet 24, 447-463. 

  7. Kim, H. J., D. S. Lee and H. D. Paik. 2004. Characterization of Bacillus cereus isolates from raw soybean sprouts. J. Food Prot. 67, 1031-1035. 

  8. Lee, S. J., J. K. Ahn, T. D. Khanh, S. C. Chun, S. L. Kim, H. M. Ro, H. K. Song and I. M. Chung. 2007. Comparison of isoflavone concentrations in soybean (Glycine max (L.) Merrill) sprouts grown under two different light conditions. J. Agric. Food Chem. 55, 9415-9421. 

  9. Saitou, N. and M. Nei. 1987. The neighbor-joining method: a new method for reconstructing phylogenetic trees. Mol. Biol. Evol. 4, 406-425. 

  10. Seehaus, K. and R. Tenhaken. 1998. Cloning of genes by mRNA differential display induced during the hypersensitive reaction of soybean after inoculation with Pseudomonas syringae pv. glycinea. Plant Mol. Biol. 38, 1225-1234. 

  11. Thompson, J. D., D. G. Higgins and T. J. Gibson. 1994. Clustal w: improving the sensitivity of progressive multiple sequence alignment through sequence weighting, position- specific gap penalties and weight matrix choice. Nucleic Acids Res. 22, 4673-4680. 

  12. Whalen, M. C., R. W. Innes, A. F. Bent and B. J. Staskawicz. 1991. Identification of Pseudomonas syringae pathogens of Arabidopsis and a bacterial locus determining a virulence on both Arabidopsis and soybean. Plant Cell 3, 49-59. 

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