$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

수온별 Red Sea Bream Iridovirus (RSIV) 인위감염에 따른 돌돔의 누적폐사 및 Heat Shock Protein (HSP) 70의 동정
Cumulative Mortality in Striped Beakperch, Oplegnathus fasciatus Infected with Red Sea Bream Iridovirus (RSIV) at Different Water Temperature and Identification of Heat Shock Protein 70 원문보기

韓國魚病學會誌= Journal of fish pathology, v.21 no.1, 2008년, pp.13 - 20  

김석렬 (전남대학교 식품∙수산생명의학부) ,  정병문 (전남대학교 식품.수산생명의학부) ,  정성주 (전남대학교 식품.수산생명의학부) ,  키타무라 신이치 (에히메대학교 연안환경과학연구센터) ,  김두운 (전남대학교 식품.수산생명의학부) ,  김도형 (전남대학교 식품.수산생명의학부) ,  오명주 (전남대학교 식품.수산생명의학부)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

본 연구에서는 RSIV의 수온에 따른 병원성을 규명하기 위한 연구의 일환으로 수온별로 RSIV를 인위적으로 감염시킨 돌돔의 누적폐사를 관찰하고, 다른 온도에서 사육된 돌돔의 온도 스트레스 단백질인 HSP이 관여하는지를 확인하고자, 돌돔의 HSP 유전자의 염기서열 일부를 밝혔다. 각온도별 감염실험에서 17°C와 20°C의 경우 폐사가 발생하지 않았으나, 25°C 및 27°C 수조에서는 각각 90%와 80%의 누적 폐사율을 보였다. 돌돔에서 확인된 HSP 유전자의 일부는 넙치에서 확인된 HSP70와 97%의 homology를 나타내 돌돔의 HSP70으로 판단되었다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

This study evaluates the pathogenicity in striped beakperch, Oplegnathus fasciatus infected with red sea bream iridovirus (RSIV) at different water temperature (17°C, 20°C, 25°C and 27°C). When the fish group was infected with RSIV at 17°C and 20°C, cumulative mortality did not show any significant ...

참고문헌 (26)

  1. Airaksinen, S., Rabergh, C.M., Sistonen, L., Nikinmaa, M. (1998): Effects of heat shock and hypoxia on protein synthesis in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) cells. J. Exp. Biol. 201:2543-2551 

  2. Basu, N., Todgham, A.E., Ackerman, P.A., Bibeau, M.R., Nakano, K., Schulte, P.M., Iwama, G.K. (2002): Heat shock proteins genes and their functional significance in fish. Gene, 295:173-183 

  3. Broome, C.S., Kayani, A.C., Palomero, J., Dillmann, W.H., Mestril, R., Jackson, M.J., McArdle, A. (2006): Effect of lifelong overexpression of HSP70 in skeletal muscle on age-related oxidative stress and adaptation after nondamaging contractile activity. FASEB J. 20:1549-1551 

  4. Deane, E.E., Zhou, L.R., Woo,,N.Y.S. (2006): Cortisol can be pro- or anti-apoptotic in sea bream cells: potential role of HSP70 induction for cytoprotection. Mol. Cell. Endocrinol., 259:57-64 

  5. Gamperl, A.K., Vijayan, M.M., Pereira, C., Farrell, A.P. (1998): Beta-receptors and stress protein 70 expression in hypoxic myocardium of rainbow trout and chinook salmon. Am. J. Physiol. 274:428-436 

  6. Go, J., Lancaster, M., Deece, K., Dhungyel, O., and Whittington, R. (2002): The molecular epidemiology of iridovirus in Murray cod (Maccullochella peelii peelii) and dwarf gourami (Colisa lalia) from distant biogeographical regions suggests a link between trade in ornamental fish and emerging iridoviral diseases. Mol. Cell. Probes, 16:137-151 

  7. Heredia-Middleton, P., Brunelli, J., Drew, R.E., Thorgaard, G.H.(2008): Heat shock protein (HSP70) RNA expression differs among rainbow trout (Onchrhynchus mykiss) clonal lines. Comp. Biochem. Physiol. B, in press 

  8. Iwama, G.K., Thomas, P., Vijayan, M.M., Forsyth, R.B. (1998): Stress proteins expression in fish. Rev. Fish Biol. Fish., 8:35-56 

  9. Iwama, G.K., Vijayan, M.M., Forsyth, R.B., Ackerman, P.A. (1999): Heat shock proteins and physiological stress in fish. Am. Zool., 39:901-909 

  10. Jung, S.J., Oh, M.J. (2000): Iridovirus-like infection associated with high mortalities of striped beakperch, Oplegnathus fasciatus (Tem-minck et Schlegel), in southern coastal areas of theKorean peninsula. J. Fish Dis., 23:223-226 

  11. Kim, W.S., Kim, K.H., Kim, C.S., Kim, Y.J., Jung, S.J., Jung, T.S., Kitamura, S.I., Yoshimizu, M. and Oh, M.J. (2003): The infection of irido- like virus in cultured turbot (Scophthalmus maximus). J. Fish Pathol., 16:153-159 

  12. Kim, Y.J., Jung, S.J., Choi, T.J., Kim, H.R., Rajendran, KV., Oh, M.J.(2002): PCR amplification and sequence analysis of irido-like virus infecting fish in Korea. J. Fish Dis., 25:121-124 

  13. Kitamura, S.I., Ko, J.Y., Lee, W.L., Kim, S.R., Song, J.Y., Kim, D.K., Jung, S.J., Oh, M.J. (2007): Seasonal prevalence of lymphocystis disease virus and aquabirnavirus in Japanese flounder, Paralichthys olivaceus and blue mussel, Mytilus galloprovincialis. Aquaculture, 266:26-31 

  14. Kiang, J.G., Tsokos, G.C. (1998): Heat shock proteins 70 kDa: Molecular biology, biochemistry and physiology. Pharmacol. Ther. 80:183-201 

  15. Lyu, J.H., Jeong, J.B., Kim, H.Y., Jun L.J., Cho, H.J., Lee, J.W. and Jeong, H.D. (2006): Detection and distribution of iridoviruses in five freshwater ornamental fish species. J. Fish Pathol., 19:197-206 

  16. Matsuoka, S., Inouye, K. and Nakajima, K. (1996): Cultured fish species affected by red sea bream iridoviral disease from 1991 to 1995. Fish Pathol. 31:233-234 

  17. Mayr, M., Kiechl, S., Willeit, J., Wick, G., Xu, Q. (2000): Infections, immunity, and atherosclerosis: associations of antibodies to Chlamydia pneumoniae, Helicobacter pylori, and cytomegalovirus with immune reactions to heat shock protein 60 and carotid or femoral atherosclerosis. Circulation 102:833-839 

  18. McConkey, D.J. (1998): Biochemical determinants of apoptosis and necrosis. Toxicol. Lett., 99:157-168 

  19. Misra, S., Zafarullah, M., Price-Haughey, J., Gedamu, L. (1989): Analysis of stress-induced gene expression in fish cell lines exposed to heavy meals and heat shock. Biochim. Biophys. Acta 1007:325-333 

  20. Mosharrof, H., Kim, S.R., Kitamura, S.I., Kim, D., Jung, S.J., Nishizawa, T., Yoshimizu, M., Oh, M.J. (2008): Lymphocystis disease virus (LCDV) persistently exists in epidermis of olive flounder (Paralichthys olivaceus) at low temperature. J. Fish Dis., in press 

  21. Mosharrof, H., Kim, S.R., Oh, M.J. (2007): The lymphocystis diseases in the olive flounder, Paralichthys olivaceus. Univ. J. Zool. Rajshahi Univ., 26:59-62 

  22. Oh, M.J., Jung, S.J. and Kim, Y.J. (1999): Detection of RSIV (Red Sea Bream Iridovirus) in the cultured marine fish by the polymerase chain reaction. J. Fish Pathol., 12: 66-69 

  23. Oh, M.J., Kitamura, S.I., Kim, W.S., Park, M.K., Jung, S.J., Miyadai, T., Ohtani, M. (2006): Susceptibility of marine fish species to a megalocytivirus, turbot iridovirus, isolated from turbot, Psetta maximus (L.). J. Fish Dis., 29:415-421 

  24. Steward, G., Snewin, R.V.A., Walzl, G., Hussell, T., Tormay, P., O'Gaora, P., Goyal, M., Betts, J., Brown, I.N., Young, D.B. (2001): Over expression of heat-shock proteins reduces survival of Mycobacterium tuberculosis in the chroni phase of infection. Nat. Med. 7:732-737 

  25. Van Regennortel, M.H.V., Fauquet, C.M., Bishop, D.H.L., Carstens, E.B., Estes, M.K., Lemon, S.M., Maniloff, J., Mayo, M.A., McGeoch, D.J., Pringle, C.R. and Wickner, E.B. (2000): Virus Taxonomy. Seventh Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses., Academic Press, New York 

  26. Wagner, M., Hermanns, I., Bittinger, F., Kirkpatrick, C.J. (1999): Induction of stress proteins in human endothelial cells by heavy metal ions and heat shock. Am. J. Physiol. 277:1026-1033 

저자의 다른 논문 :

LOADING...
섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로