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Hep3B 간암세포에서 Caspase-3 활성화를 통한 동충하초 열수추출물의 Apoptosis 유도에 관한 연구
Induction of Apoptotic Cell Death by Aqueous Extract of Cordyceps militaris Through Activation of Caspase-3 in Human Hepatocarcinoma Hep3B Cells 원문보기

한국식품영양과학회지 = Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition, v.37 no.6, 2008년, pp.714 - 720  

김경미 (부산대학교 자연과학대학 생물학과) ,  박철 (부산대학교 자연과학대학 생물학과) ,  서상호 (동의대학교 한의과대학 한의학과) ,  홍상훈 (동의대학교 한의과대학 한의학과) ,  이원호 (부산대학교 자연과학대학 생물학과) ,  최영현 (동의대학교 한의과대학 한의학과)

초록
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본 연구에서는 동충하초(C. militaris)의 항암작용 기전 해석을 위하여 Hep3B 간암세포의 apoptosis 유발에 미치는 동충하초 열수추출물(WECM)의 영향을 조사하였으며, apoptosis 조절에 중요한 몇 가지 유전자들의 발현 및 활성 변화를 조사하였다. AECM 처리에 의한 Hep3B 세포의 증식억제는 형태적 변형을 동반한 apoptosis 유도와 연관성이 있음을 DAPI 염색을 통한 apoptotic body 출현의 증가 및 flow cytometry 분석에 의한 sub-G1 기에 속하는 세포 빈도의 증가로 확인하였다. AECM 처리에 의한 apopotosis 유도에서 Bcl-2 family에 속하는 몇 가지 유전자들의 발현은 큰 변화가 없었으나, caspase-3 및 -8의 활성이 매우 높게 증가 되었으며 이는 PARP 및 ${\beta}$-catenin 단백질의 분해와 연관성이 있었다. 또한 caspase-3 선택적 저해제인 z-DEVD-fmk로 caspase-3의 활성을 인위적으로 차단시켰을 경우, AECM에 의한 apoptois 유도 현상이 유의적으로 감소되어 AECM에 의한 Hep3B 세포의 apoptosis 유발에 caspase-3이 중요한 역할을 하고 있음을 알 수 있었다. 본 연구의 결과만으로 동충하초에 의한 간암세포의 증식억제 기전을 명확하게 제시할 수는 없으나, 이상의 결과들은 동충하초의 생화학적 항암기전 해석을 이해하는데 중요한 기초자료로서 활용될 수 있을 것으로 생각된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Cordyceps militaris is a medicinal fungus which has been used for patient suffering from cancer in Oriental medicine. It was previously reported that C. militaris extracts are capable of inhibiting tumor growth and inducing apoptosis; however, the anti-poliferative effects of human cancer cells have...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • Fig. 3의 결과에서 AECM에 의한 Hep3B 세포의 apoptosis 유도에 caspase-3이 매우 중요한 역할을 할 것으로 나타났기 때문에 AECM 처리에 의한 apoptosis 유도에서 caspase-3의 역할을 재확인하기 위하여 caspase-3의 활성을 인위적으로 억제할 경우 AECM에 의해 유발되는 apoptosis에 어떠한 변화가 나타나는지의 여부를 조사하였다. 먼저 DAPI 염색을 이용하여 핵의 형태를 관찰한 결과는 Fig.
  • 다음은 AECM 처리에 따른 Hep3B 세포의 증식억제 및 형태변형이 apoptosis 유발과 연관성이 있는지의 여부를 확인하기 위하여 DAPI 염색을 이용한 apoptotic body의 형성 유무를 관찰하였다. Fig.
  • 본 연구에서는 동충하초(C. militaris)의 항암작용 기전 해석을 위하여 Hep3B 간암세포의 apoptosis 유발에 미치는 동충하초 열수추출물(WECM)의 영향을 조사하였으며, apoptosis 조절에 중요한 몇 가지 유전자들의 발현 및 활성 변화를 조사하였다. AECM 처리에 의한 Hep3B 세포의 증식 억제는 형태적 변형을 동반한 apoptosis 유도와 연관성이 있음을 DAPI 염색을 통한 apoptotic body 출현의 증가 및 flow cytometry 분석에 의한 sub-G1 기에 속하는 세포 빈도의 증가로 확인하였다.
  • 본 연구에서는 동충하초의 항암기전에 대한 부가적인 해석을 위하여 그동안 연구가 이루어지지 않았던 간암세포의 증식에 미치는 동충하초 추출물의 영향을 조사하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
고대로부터 중국에서 한방약재로 사용되어온 대표적인 동충하초인 C. militaris와 C. sinensis에 대한 연구에서 알려진 효과들은 무엇이 있는가? sinensis이다(6). 최근까지 본 연구와 관련 있는 결과들을 살펴보면, C. sinensis의 추출물 또는 유효성분들은 백혈병세포 증식억제효과(7,8), 폐암 세포의 전이 억제효과(9), 항염증효과(10) 등이 있는 것으로 보고된 바 있다. 그리고 C. militaris 역시 세포독성 및 유전 독성 억제효과(11), 항산화성 및 항돌연변이 효과(12), 혈관 신생 및 종양생성 억제효과(13), 고형암 성장 억제 및 면역활성 작용(14), apoptosis 유발에 의한 암세포증식억제효과 (15) 등이 있는 것으로 알려져 있으나, 아직까지 정확한 항암기전이 밝혀지지는 않았다.
세포의 죽음은 어떻게 구분될 수 있는가? 세포의 죽음은 necrosis와 apoptosis로 구분되며, 이것은 세포의 형태학적 및 생화학적인 특성에 의하여 구분될 수 있다. 그 중 apoptosis는 개체의 발생단계나 DNA 손상, 바이러스 감염 등에 따른 유전적 조절 하에서 일어나는 개체보존 수준에서 손상된 세포들의 제거를 위한 중요한 방어기전이라는 점에서 생리적 또는 화학적 외상에 의한 세포의 죽음인 necrosis와 구별된다(1,2).
caspase의 특징은 무엇인가? 따라서 apoptosis 유발 해석에 대한 연구는 특히 암세포의 과다한 증식과 성장억제에 대한 연구에 필연적인 것으로 사료된다. 그중 caspase라고 이름 붙여진 ICE/CED-like protease family는 apoptosis 유발에 가장 중 요한 중심 조절자로서 알려져 있으며, 이들은 proenzyme 형태로 존재하다가 apoptosis 유도를 활성화시키는 신호에 의해 활성화된 cysteine-related protease로 되어 직ㆍ간접적으로 세포 내에 존재하는 많은 표적 단백질의 분해에 관여하게 된다(3,4).
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참고문헌 (31)

  1. Lieberthal W, Koh JS, Levine JS. 1998. Necrosis and apoptosis in acute renal failure. Semin Nephrol 18: 505-518 

  2. Zimmermann KC, Bonzon C, Green DR. 2001. The machinery of programmed cell death. Pharmacol Ther 92: 57-70 

  3. Evans VG. 1993. Mutiple pathways to apoptosis. Cell Biol Int 17: 461-476 

  4. Nagata S. 1997. Apopotosis by death factor. Cell 88: 355-365 

  5. Sung JM, Lee HK, Choi YS, Kim YO, Kim SH, Sung GH. 1997. Distribution and taxonomy of entomopathogenic fungal species from Korea. Kor J Mycol 25: 231-252 

  6. Buenz EJ, Bauer BA, Osmundson TW, Motley TJ. 2005. The traditional Chinese medicine Cordyceps sinensis and its effects on apoptotic homeostasis. J Ethnopharmacol 96: 19-29 

  7. Chen JL, Greider CW. 2004. Telomerase RNA structure and function: implications for dyskeratosis congenita. Trends Biochem Sci 29: 183-192 

  8. Buenz EJ, Weaver JG, Bauer BA, Chalpin SD, Badley AD. 2004. Cordyceps sinensis extracts do not prevent Fas-receptor and hydrogen peroxide-induced T-cell apoptosis. J Ethnopharmacol 90: 57-62 

  9. Nakamura K, Yamaguchi Y, Kagota S, Kwon YM, Shinozuka K, Kunitomo M. 1999. Inhibitory effect of Cordyceps sinensis on spontaneous liver metastasis of Lewis lung carcinoma and B16 melanoma cells in syngeneic mice. Jpn J Pharmacol 79: 335-341 

  10. Shahed AR, Kim SI, Shoskes DA. 2001. Down-regulation of apoptotic and inflammatory genes by Cordyceps sinensis extract in rat kidney following ischemia/reperfusion. Transplant Proc 33: 2986-2987 

  11. Kim MN, Cui CB, Lee DS, Ham SS. 2001. Cytotoxicity and antigenotoxic effect of Cordycepes militaris extracts. J Korean Soc Food Sci Nutr 30: 921-927 

  12. Kim MN, Oh SW, Lee DS, Ham SS. 2001. Antioxidative and antimutagenic effects of the ethanol extract from Cordycepes militaris. Kor J Posthavest Sci Technol 8: 109-117 

  13. Yoo HS, Shin JW, Cho JH, Son CG, Lee YW, Park SY, Cho CK. 2004. Effects of Cordyceps militaris extract on angiogenesis and tumor growth. Acta Pharmacol Sin 25: 657-665 

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  15. Hong SH, Kam CW, Park DI. 2004. Induction of apoptotic cell death by an aqueous extract of Cordyceps militaris in A549 human lung carcinoma cells. Kor J Oriental Physiol Pathol 18: 1102-1106 

  16. Cho WN, Choi YH, Hwang WD. 2007. Induction of G2/M arrest of the cell cycle by aqueous extract of Cordyceps militaris in A549 human non-small-cell lung cancer cells. Cancer Prev Res 12: 273-280 

  17. Park C, Hong SH, Lee JY, Kim GY, Choi BT, Lee YT, Park DI, Park YM, Jeong YG, Choi YH. 2005. Growth inhibition of U937 leukemia cells by aqueous extract of Cordyceps militaris through induction of apoptosis. Oncol Rep 13: 1211-1216 

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  19. Antonsson B, Martinou JC. 2000. The Bcl-2 protein family. Exp Cell Res 256: 50-57 

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  21. Donovan M, Cotter TG. 2004. Control of mitochondrial integrity by Bcl-2 family members and caspase-independent cell death. Biochim Biophys Acta 1644: 133-147 

  22. Fan TJ, Han LH, Cong RS, Liang J. 2005. Caspase family proteases and apoptosis. Acta Biochim Biophys Sin 37: 719-727 

  23. Rupinder SK, Gurpreet AK, Manjeet S. 2007. Cell suicide and caspases. Vascul Pharmacol 46: 383-393 

  24. Kaufmann SH, Desnoyers S, Ottaviano Y, Davidson NE, Poirier GG. 1993. Specific proteolytic cleavage of poly (ADP-ribose) polymerase: an early marker of chemotherapy- induced apoptosis. Cancer Res 53: 3976-3985 

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  26. Rao L, White E. 1997. Bcl-2 and the ICE family of apoptotic regulators: making a connection. Curr Opin Genet Dev 7: 52-58 

  27. Vegran F, Boidot R, Oudin C, Riedinger JM, Lizard-Nacol S. 2005. Implication of alternative splice transcripts of caspase-3 and survivin in chemoresistance. Bull Cancer 92: 219-226 

  28. Johnson JP. 1999. Cell adhesion molecules in the development and progression of malignant melanoma. Cancer Metastasis Rev 18: 345-357 

  29. Wijnhoven BP, Dinjens WN, Pignatelli M. 2000. E-cadherin- catenin cell-cell adhesion complex and human cancer.Br J Surg 87: 992-1005 

  30. Fukuda K. 1999. Apoptosis-associated cleavage of $\beta$ -catenin in human colon cancer and rat hepatoma cells. Int J Biochem Cell Biol 31: 519-529 

  31. Neufeld KL, Zhang F, Cullen BR, White RL. 2000. APCmediated downregulation of $\beta$ -catenin activity involves nuclear sequestration and nuclear export. EMBO Rep 1: 519-523 

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