돌단풍 잎의 항산화, 항염, 항당뇨, 항비만 활성을 탐색하고자 강원도 양구에서 자생하고 있는 돌단풍의 잎을 채집하여 에탄올과 증류수로 각각 추출하였다. 항산화 활성은 DPPH 라디칼 소거반응, 총 폴리페놀 함량 및 총 플라보노이드 함량을 측정하여 검정하였다. 돌단풍 잎의 에탄올과 물추출물의 DPPH 라디칼 소거능$IC_{50}$값은 각각 549.86과 $62.14{\mu}g$/mL이었고, 총 폴리페놀 함량은 에탄올 추출물이 307.63 mg/g으로 물 추출물의 총 폴리페놀 함량인 86.96 mg/g보다 높게 나타났으나 총 플라보노이드 함량은 에탄올과 물 추출물 각각 118.98과 110.16 mg/g으로 비슷한 함량을 나타냈다. 항염 활성은 RAW264.7 세포에 LPS와 돌단풍 잎추출물을 동시에 10 mg/mL 처리하여 NO 생성량을 측정하였으나 효과는 없었다. 항당뇨 활성은 $\alpha$-glucosidase와 $\alpha$-amylase 저해활성을 측정하였으며, 돌단풍 에탄올과 물 추출물의 $\alpha$-glucosidase $IC_{50}$값은 각각 5.62와 $425.63{\mu}g$/mL이었고, $\alpha$-amylase $IC_{50}$값은 각각 4,623.87과 $10,000{\mu}g$/mL 이상으로 돌단풍 에탄올 추출물의 항당뇨 활성은 매우 뛰어났다. 항비만 활성 탐색은 pancreatic lipase의 활성저해를 측정하였으며, 그 결과 돌단풍 잎의 에탄올과 물 추출물의 $IC_{50}$ 값은 모두 $10,000{\mu}g$/mL 이상으로 항비만 활성은 없는 것으로 나타났다. 이러한 결과 돌단풍 잎 추출물의 항산화, 항당뇨의 기능성활용 가공식품 및 건강기능식품으로의 개발이 기대된다.
돌단풍 잎의 항산화, 항염, 항당뇨, 항비만 활성을 탐색하고자 강원도 양구에서 자생하고 있는 돌단풍의 잎을 채집하여 에탄올과 증류수로 각각 추출하였다. 항산화 활성은 DPPH 라디칼 소거반응, 총 폴리페놀 함량 및 총 플라보노이드 함량을 측정하여 검정하였다. 돌단풍 잎의 에탄올과 물추출물의 DPPH 라디칼 소거능 $IC_{50}$값은 각각 549.86과 $62.14{\mu}g$/mL이었고, 총 폴리페놀 함량은 에탄올 추출물이 307.63 mg/g으로 물 추출물의 총 폴리페놀 함량인 86.96 mg/g보다 높게 나타났으나 총 플라보노이드 함량은 에탄올과 물 추출물 각각 118.98과 110.16 mg/g으로 비슷한 함량을 나타냈다. 항염 활성은 RAW264.7 세포에 LPS와 돌단풍 잎추출물을 동시에 10 mg/mL 처리하여 NO 생성량을 측정하였으나 효과는 없었다. 항당뇨 활성은 $\alpha$-glucosidase와 $\alpha$-amylase 저해활성을 측정하였으며, 돌단풍 에탄올과 물 추출물의 $\alpha$-glucosidase $IC_{50}$값은 각각 5.62와 $425.63{\mu}g$/mL이었고, $\alpha$-amylase $IC_{50}$값은 각각 4,623.87과 $10,000{\mu}g$/mL 이상으로 돌단풍 에탄올 추출물의 항당뇨 활성은 매우 뛰어났다. 항비만 활성 탐색은 pancreatic lipase의 활성저해를 측정하였으며, 그 결과 돌단풍 잎의 에탄올과 물 추출물의 $IC_{50}$ 값은 모두 $10,000{\mu}g$/mL 이상으로 항비만 활성은 없는 것으로 나타났다. 이러한 결과 돌단풍 잎 추출물의 항산화, 항당뇨의 기능성활용 가공식품 및 건강기능식품으로의 개발이 기대된다.
In this study, the bioactivities of ethanol (EEAR) and water extract (WEAR) from the leaf of Aceriphyllum rossii were investigated. In the anti-oxidative activity, IC50 of DPPH radical scavenging activity was respectively 549.86 and $62.14{\mu}g$/mL by EEAR and WEAR. Anti-inflammatory act...
In this study, the bioactivities of ethanol (EEAR) and water extract (WEAR) from the leaf of Aceriphyllum rossii were investigated. In the anti-oxidative activity, IC50 of DPPH radical scavenging activity was respectively 549.86 and $62.14{\mu}g$/mL by EEAR and WEAR. Anti-inflammatory activity of EEAR and WEAR has been evaluated on inhibition of lipopolysaccharide (LPS)-induced nitric oxide (NO) release by the macrophage RAW 264.7 cells. EEAR and WEAR inhibited inflammatory by 5.58 and 16.85% in 10 mg/mL, respectively. In the anti-diabetic activity, $IC_{50}$ of $\alpha$-glucosidase inhibitory activity was 5.62 and $425.63{\mu}g$/mL by EEAR and WEAR. $IC_{50}$ of $\alpha$-amylase inhibitory activity of EEAR and WEAR was 4,623.87 and over $10,000{\mu}g$/mL, respectively. In the anti-obesity, all lipase inhibitory activity ($IC_{50}$) of EEAR and WEAR was up $10,000{\mu}g$/mL. Finally, EEAR and WEAR exhibited anti-oxidative and anti-diabetic activity. It suggests that Aceriphyllum rossii could be potentially used as a resource of bioactive materials for health functional foods.
In this study, the bioactivities of ethanol (EEAR) and water extract (WEAR) from the leaf of Aceriphyllum rossii were investigated. In the anti-oxidative activity, IC50 of DPPH radical scavenging activity was respectively 549.86 and $62.14{\mu}g$/mL by EEAR and WEAR. Anti-inflammatory activity of EEAR and WEAR has been evaluated on inhibition of lipopolysaccharide (LPS)-induced nitric oxide (NO) release by the macrophage RAW 264.7 cells. EEAR and WEAR inhibited inflammatory by 5.58 and 16.85% in 10 mg/mL, respectively. In the anti-diabetic activity, $IC_{50}$ of $\alpha$-glucosidase inhibitory activity was 5.62 and $425.63{\mu}g$/mL by EEAR and WEAR. $IC_{50}$ of $\alpha$-amylase inhibitory activity of EEAR and WEAR was 4,623.87 and over $10,000{\mu}g$/mL, respectively. In the anti-obesity, all lipase inhibitory activity ($IC_{50}$) of EEAR and WEAR was up $10,000{\mu}g$/mL. Finally, EEAR and WEAR exhibited anti-oxidative and anti-diabetic activity. It suggests that Aceriphyllum rossii could be potentially used as a resource of bioactive materials for health functional foods.
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문제 정의
본 연구는 돌단풍 잎 추출물의 성인병의 예방, 치료제 및 건강기능식품으로서의 활용가능성을 평가하기 위해 돌단풍잎의 에탄올과 물 추출물을 대상으로 다양한 생리활성을 검정하였다. 그 결과 돌단풍 잎의 에탄올과 물 추출물 모두 총 폴리페놀과 플라보노이드의 함량이 높고, DPPH radical 소거능이 우수하여 높은 항산화 효능을 나타냈고, 2종의 탄수화물 분해효소에 대한 저해활성으로 높은 항당뇨 효능을 나타냈다.
본 연구진은 강원도 자생산채로부터 항산화, 항염, 항당뇨, 항비만 기능성에 관한 연구를 진행한 결과 우수한 기능성을 나타난 돌단풍 잎에 대한 연구결과를 보고하고, 그 활용방안을 모색하고자 한다.
가설 설정
2)All values are mean±SD (n=3).
3)All values are mean±SD (n=3).
제안 방법
8 mL를 가하여 혼합한 뒤 상온에서 30분간 반응시킨 후 UVvisible spectrophotometer(DU 730, Beckman Coulter, Fullerton, CA, USA)를 이용하여 517 nm에서 흡광도를 측정하였고, 각 시료를 3회 반복 실시하여 평균하였다. DPPH radical 소거능은 시료 용액의 첨가구와 무첨가구 사이의 흡광도의 차이를 아래와 같이 백분율로 나타내었으며, DPPH radicals scavenging activity의 값이 50%가 되는 시료의 농도를 IC50값으로 구하였다. 대조약제로는 기존의 항산화제인 ascorbic acid(Sigma, St.
DPPH radical에 대한 소거활성: 항산화 활성은 DPPH radical에 대한 소거활성, 폴리페놀, 플라보노이드 함량으로 측정했으며, Biois의 방법(10)을 변형하여 측정하였다. 각 농도별로 조제한 시료 0.
DPPH radical에 대한 소거활성: 항산화 활성은 DPPH radical에 대한 소거활성, 폴리페놀, 플라보노이드 함량으로 측정했으며, Biois의 방법(10)을 변형하여 측정하였다. 각 농도별로 조제한 시료 0.2 mL에 0.2 mM의 DPPH 용액 0.8 mL를 가하여 혼합한 뒤 상온에서 30분간 반응시킨 후 UVvisible spectrophotometer(DU 730, Beckman Coulter, Fullerton, CA, USA)를 이용하여 517 nm에서 흡광도를 측정하였고, 각 시료를 3회 반복 실시하여 평균하였다. DPPH radical 소거능은 시료 용액의 첨가구와 무첨가구 사이의 흡광도의 차이를 아래와 같이 백분율로 나타내었으며, DPPH radicals scavenging activity의 값이 50%가 되는 시료의 농도를 IC50값으로 구하였다.
돌단풍 잎의 항산화, 항염, 항당뇨, 항비만 활성을 탐색하고자 강원도 양구에서 자생하고 있는 돌단풍의 잎을 채집하여 에탄올과 증류수로 각각 추출하였다. 항산화 활성은 DPPH 라디칼 소거반응, 총 폴리페놀 함량 및 총 플라보노이드 함량을 측정하여 검정하였다.
시료 추출 용매는 물과 에탄올을 사용하였다. 물 추출은 돌단풍 동결건조 분말 시료 20 g을 1차 증류수 200 mL를 첨가하여 60℃에서 6시간 동안 초음파추출기(8510RDTH, Bransonic, Danbury, CT, USA)를 이용하여 2회 추출하였다. 추출물을 여과지(No.
시료에 대한 대조구로는 1 μg/mL의 LPS만을 20 μL 처리하여 활성화된 세포를 사용하였다.
실온에서 10분간 배양한 후 5 mM p-nitrophenyl αD-glucopyranoside 200 μL를 가하여 37℃에서 20분간 반응시킨 뒤, 동일한 파장에서 흡광도를 측정하였고, 흡광도의 변화로부터 효소 저해활성을 계산하였다.
총 폴리페놀 함량 측정: 총 폴리페놀 함량의 측정은 페놀성 물질인 phosphomolybdic acid와 반응하여 청색을 나타내는 원리를 이용한 Folin Denis 방법(11)을 응용하여 측정하였다. 돌단풍 추출물 시료를 0.
총 플라보노이드 함량 측정: 돌단풍 추출물 시료 0.1 mL를 취하여 튜브에 넣고, 증류수를 0.4 mL와 5% NaNO2 0.03 mL를 첨가하여 잘 혼합한 후 5분간 실온에 방치하였다. 10% AlCl2 0.
물 추출은 돌단풍 동결건조 분말 시료 20 g을 1차 증류수 200 mL를 첨가하여 60℃에서 6시간 동안 초음파추출기(8510RDTH, Bransonic, Danbury, CT, USA)를 이용하여 2회 추출하였다. 추출물을 여과지(No. 2, Whatman, Maidstone, England)가 깔려있는 Buchner funnel을 통과시켜 잔재물을 제거한 후 감압여과 하여 rotary vacuum evaporator(N21NS, EYELA, Tokyo, Japan)로 완전농축 하였다. Flask 내의 농축 건조물에 증류수 10 mL를 첨가하여 용해시킨 후, 동결건조 하여 -20℃의 냉동고에서 보관하면서 사용하였다.
항비만 활성 검정은 췌장 지방분해효소인 pancreatic lipase에 대한 저해활성을 측정하였다. Pancreatic lipase는 triacylglycerol을 2-monoacylglycerol과 fatty acid로 분해하는 핵심적인 반응을 진행시키는 효소로 최근 비만치료를 위한 방법으로서 pancreatic lipase inhibitor가 사용된다(17,25).
돌단풍 잎의 항산화, 항염, 항당뇨, 항비만 활성을 탐색하고자 강원도 양구에서 자생하고 있는 돌단풍의 잎을 채집하여 에탄올과 증류수로 각각 추출하였다. 항산화 활성은 DPPH 라디칼 소거반응, 총 폴리페놀 함량 및 총 플라보노이드 함량을 측정하여 검정하였다. 돌단풍 잎의 에탄올과 물 추출물의 DPPH 라디칼 소거능 IC50값은 각각 549.
항염 활성 검정은 염증 유발 물질로 주로 사용되는 LPS를 사용하여 RAW264.7 세포에 LPS와 돌단풍 추출물을 동시에 처리하고, 대조구로는 LPS만을 처리하여 LPS로 유도된 NO의 생성량을 돌단풍 추출물이 어느 정도 소거하는지 알아보았다. 그 결과, LPS만 처리된 대조구의 NO 생성량은 19.
대상 데이터
NO 소거활성은 Park 등의 방법(13)에 따라 한국세포주은행에서 분양받은 마우스의 대식세포 세포주인 RAW264.7 세포를 이용하여 측정하였다. 세포는 10%의 FBS가 함유된 DMEM media에서 계대배양 하였다.
실온에서 10분간 배양한 후 5 mM p-nitrophenyl αD-glucopyranoside 200 μL를 가하여 37℃에서 20분간 반응시킨 뒤, 동일한 파장에서 흡광도를 측정하였고, 흡광도의 변화로부터 효소 저해활성을 계산하였다. 대조구로는 Acarbose를 사용하였으며, 시료와 같은 농도로 제조하여 측정하였다.
그런 다음 최종 반응액에 대해 480 nm 에서 흡광도를 측정하여 효소 반응 후 생성된 oleic acid의 양을 측정하였다. 대조구로는 Orlistat(Sigma)를 사용하였으며, 시료와 같은 농도로 제조하여 측정하였다.
DPPH radical 소거능은 시료 용액의 첨가구와 무첨가구 사이의 흡광도의 차이를 아래와 같이 백분율로 나타내었으며, DPPH radicals scavenging activity의 값이 50%가 되는 시료의 농도를 IC50값으로 구하였다. 대조약제로는 기존의 항산화제인 ascorbic acid(Sigma, St. Louis, MO, USA)를 사용하여 비교하였다.
본 실험에 사용한 시료는 2009년 5월 돌단풍 지상부를 강원도 양구 대암산에서 수집하여 동결건조(PVTFD10R, Ilsinbiobase, Yangju, Gyeonggido, Korea)하여 마쇄 후 사용하였다. 시료 추출 용매는 물과 에탄올을 사용하였다.
본 실험에 사용한 시료는 2009년 5월 돌단풍 지상부를 강원도 양구 대암산에서 수집하여 동결건조(PVTFD10R, Ilsinbiobase, Yangju, Gyeonggido, Korea)하여 마쇄 후 사용하였다. 시료 추출 용매는 물과 에탄올을 사용하였다. 물 추출은 돌단풍 동결건조 분말 시료 20 g을 1차 증류수 200 mL를 첨가하여 60℃에서 6시간 동안 초음파추출기(8510RDTH, Bransonic, Danbury, CT, USA)를 이용하여 2회 추출하였다.
데이터처리
실험 결과는 평균값과 표준편차로 나타내었으며, 통계처리는 SPSS(Statistical Package for Social Sciences, version 12.0, SPSS Inc., Chicago, IL, USA)를 이용하여 one-way ANOVA 분석을 실시한 후 Duncan's multiple range test로 유의성을 p<0.05 수준에서 검증하였다.
이론/모형
Pancreatic lipase의 활성 억제는 Kim 등(17)의 방법에 따라 0.1 M NaCl이 포함된 0.1 M N-tris-(hydroxymethyl)- methyl-2-aminoethanesulfonic acid(pH 7.0) 9 mL에 triolein 80 mg, gum arabic 45 mg, taurochlolic acid 5 mg을 첨가하고, sonicator(8510R-DTH, Bransonic)로 5분 동안 처리하여 반응 기질 용액을 완전히 용해시켜 제조하였다. 제조된 기질 용액에 대해 효소용액(pancreatic lipase, 1,500 U/mL) 15 μL, 돌단풍 잎 추출물 5 μL, 기질용액 180 μL을 혼합하여 최종 부피가 200 μL가 되도록 반응용액을 제조한 뒤(pH 7.
성능/효과
LPS만 처리된 대조구의 NO 생성량은 17.8±2.9 μM이었고, LPS와 동시 처리된 돌단풍 물 추출물 10 mg/mL 처리구의 NO 생성량은 14.8±2.8 μM로 대조구와 돌단풍 추출물 처리구간의 통계적 유의성은 없었다(Fig. 1).
본 연구는 돌단풍 잎 추출물의 성인병의 예방, 치료제 및 건강기능식품으로서의 활용가능성을 평가하기 위해 돌단풍잎의 에탄올과 물 추출물을 대상으로 다양한 생리활성을 검정하였다. 그 결과 돌단풍 잎의 에탄올과 물 추출물 모두 총 폴리페놀과 플라보노이드의 함량이 높고, DPPH radical 소거능이 우수하여 높은 항산화 효능을 나타냈고, 2종의 탄수화물 분해효소에 대한 저해활성으로 높은 항당뇨 효능을 나타냈다. 이러한 결과는 돌단풍 잎 추출물이 다양한 기능성을 가진 소재로서 그 활용도가 매우 높음을 시사한다.
그 결과, LPS만 처리된 대조구의 NO 생성량은 19.7±2.9 μM이었고, LPS와 동시 처리된 돌단풍 에탄올 추출물 10 mg/mL 처리구의 NO 생성량은 18.6±3.6 μM이었다.
돌단풍 에탄올, 물 추출물의 총 폴리페놀 함량과 총 플라보노이드 함량을 측정한 결과, 총 폴리페놀 함량은 각각 307.63과 86.96 mg/g이었고, 총 플라보노이드 함량은 각각 118.98과 110.16 mg/g이었다. 이는 국내 울릉도산 산채류 지상부와 지하부 80% methanol 추출물의 총 폴리페놀의 함량이 16.
돌단풍 에탄올과 물 추출물의 DPPH radical 소거능을 측정한 결과, 처리 농도가 높아질수록 항산화 활성도 비례해서 높아졌으며 IC50값은 각각 549.86, 62.14 μg/mL로 나타났다(Table 1).
돌단풍 잎의 에탄올과 물 추출물의 DPPH 라디칼 소거능 IC50값은 각각 549.86과 62.14 μg/mL이었고, 총 폴리페놀 함량은 에탄올 추출물이 307.63 mg/g으로 물 추출물의 총 폴리페놀 함량인 86.96 mg/g보다 높게 나타났으나 총 플라보노이드 함량은 에탄올과 물 추출물 각각 118.98과 110.16 mg/g으로 비슷한 함량을 나타냈다.
돌단풍의 에탄올 추출물과 물 추출물의 pancreatic lipase 저해활성을 측정한 결과(Table 4), IC50값이 모두 10,000 μg/mL 이상으로(대조약제 Orlistat IC50값 0.51 μg/mL) 생약 9종의 methanol 추출물 1 mg/mL로부터 pancreatic lipase 저해활성 54～75%를 확인한 결과(17)와 비교해 볼 때 매우 낮은 저해활성을 나타냄을 알 수 있었다.
돌단풍잎 추출물의 α-amylase 저해활성을 측정한 결과(Table 3), 돌단풍의 에탄올 추출물과 물 추출물의 α-amylase IC50값은 각각 4,623.87과 10,000 μg/mL 이상으로, 대조구인 Acarbose의 IC50값 5,187.78 μg/mL와 비교했을 시, 돌단풍 에탄올 추출물의 α-amylase 저해활성은 Acarbose와 유사한 활성을 나타냈다.
1). 이러한 결과는 돌단풍 에탄올 추출물과 물 추출물 모두 항염 활성이 매우 낮은 것으로 판단된다.
이러한 결과는 제비꽃 용매 추출물별 50 μg/mL 처리 시 α-glucosidase 저해활성이 50% 이상인 결과(22)와 말채나무 내피추출물의 yeast 기원 α-glucosidase 저해활성 IC50 0.13 μg/mL(24)과 비교해 보았을 때 돌단풍 에탄올 추출물은 제비꽃 추출물보다 10배 높으나, 말채나무 내피 추출물보다 43배 낮은 활성을 나타냈다.
항당뇨 활성은 α-glucosidase와 α-amylase 저해활성을 측정하였으며, 돌단풍 에탄올과 물 추출물의 α-glucosidase IC50값은 각각 5.62와 425.63 μg/mL이었고, α-amylase IC50값은 각각 4,623.87과 10,000 μg/mL 이상으로 돌단풍 에탄올 추출물의 항당뇨 활성은 매우 뛰어났다.
항비만 활성 탐색은 pancreatic lipase의 활성저해를 측정하였으며, 그 결과 돌단풍 잎의 에탄올과 물 추출물의 IC50값은 모두 10,000 μg/mL 이상으로 항비만 활성은 없는 것으로 나타났다.
후속연구
항비만 활성 탐색은 pancreatic lipase의 활성저해를 측정하였으며, 그 결과 돌단풍 잎의 에탄올과 물 추출물의 IC50값은 모두 10,000 μg/mL 이상으로 항비만 활성은 없는 것으로 나타났다. 이러한 결과 돌단풍 잎 추출물의 항산화, 항당뇨의 기능성활용 가공식품 및 건강기능식품으로의 개발이 기대된다.
78 μg/mL와 비교했을 시, 돌단풍 에탄올 추출물의 α-amylase 저해활성은 Acarbose와 유사한 활성을 나타냈다. 이러한 결과로 돌단풍 에탄올 추출물은 항당뇨 기능성을 가진 소재로서 그 활용도가 매우 높고, 향후 기존 당뇨치료제를 대체할 수 있는 천연물제제로서의 개발 가능성이 높은 것으로 판단된다.
이러한 결과는 돌단풍 지하부 메탄올 추출물의 항비만 활성으로 간, 지방조직, 골격근 등에서의 중성지방 생합성 과정을 촉매하는 효소인 GPAT(glycerol-3-phosphate acyltransferase)와 DGAT(diacylglycerol acyltransferase)의 저해효과와 저해물질인 3-oxoolean-12-en-27-oic acid를 분리․동정한 보고(9)를 참고하면 돌단풍의 항비만 기작으로 pancreatic lipase 저해부분은 아니나, 항비만 활성이 있음이 확인되었다. 추후 돌단풍 항비만 검정으로 pancreatic lipase 외 지질대사에 관련된 효소활성 검정과 동물실험이 필요하다고 판단된다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
돌단풍 잎의 항비만 활성 탐색 결과는 어떠한가?
87과 10,000 μg/mL 이상으로 돌단풍 에탄올 추출물의 항당뇨 활성은 매우 뛰어났다. 항비만 활성 탐색은 pancreatic lipase의 활성저해를 측정하였으며, 그 결과 돌단풍 잎의 에탄올과 물 추출물의 IC50값은 모두 10,000 μg/mL 이상으로 항비만 활성은 없는 것으로 나타났다. 이러한 결과 돌단풍 잎 추출물의 항산화, 항당뇨의 기능성활용 가공식품 및 건강기능식품으로의 개발이 기대된다.
중국과 우리나라에서 돌단풍의 속명은 무엇인가?
우리나라에서는 계곡의 물가 근처에 있는 벼랑이나 바위틈에서 자라며 뿌리줄기가 바위 틈새로 뻗어나가면서 생장, 번식한다(1). 전 세계에 1종이 분포하며, 속명으로 우리나라에서는 바우나리, 부처손, 돌나리, 장장포라고도 부르며, 중국에서는 색엽초(摵葉草), 파산호(爬山虎), 립화채(砬花采), 석호채(石虎采), 노호장(老虎掌), 립파채(砬巴采)라고도 부른다(2). 잎은 근경 끝이나 그 근방에서 1개 또는 2개씩 포린에 싸여 나오지만 여러 개가 한군데에서 나오는 것처럼 보이며 긴 잎자루 끝에 5～7개로 갈라진 단풍잎 같은 잎이 달리고 열편은 난형 또는 장란형이며 예첨두로서 가장자리에 잔톱니가 있고 털이 없으며 표면에 윤채가 있다.
돌단풍 잎의 항산화 활성은 어떤 항목을 측정함으로써 검정하였는가?
돌단풍 잎의 항산화, 항염, 항당뇨, 항비만 활성을 탐색하고자 강원도 양구에서 자생하고 있는 돌단풍의 잎을 채집하여 에탄올과 증류수로 각각 추출하였다. 항산화 활성은 DPPH 라디칼 소거반응, 총 폴리페놀 함량 및 총 플라보노이드 함량을 측정하여 검정하였다. 돌단풍 잎의 에탄올과 물 추출물의 DPPH 라디칼 소거능 IC50값은 각각 549.
참고문헌 (25)
Ahn EM, Han JT, Kwon BM, Kim SH, Baek NI. 2008. Anti-cancer activity of flavonoids from Aceriphyllum rossii. J Korean Soc Appl Biol Chem 51: 309-315
Yoo JK. 2007. Constituents of Aceriphyllum rossii and evaluation of their anticancer activities. MS Thesis. Chungnam National University, Daejeon, Korea. p 19-20.
Lee TB. 2006. Coloured flora of Korea. Hyangmunsa, Seoul, Korea. p 471.
Han JT, Kim HY, Park YD, Lee YH, Lee KR, Kwon BM, Baek NI. 2002. Aceriphyllic acid A, a new ACAT inhibitory triterpenoid from Aceriphyllum rossii. Planta Med 68:558-561.
Han JT, Bang MH, Chun OK, Kim DO, Lee CY, Baek NI.2004. Flavonol glycosides from the aerial parts of Aceriphyllum rossii and their antioxidant activities. Arch Pharm Res 27: 390-395.
Min BS, Lee IS, Chang MJ, Yoo JK, Na MK, Hung TM,Thoung PT, Lee JP, Kim, JH, Kim JC, Woo MH, Choi JS,Lee HK, Bae KH. 2008. Anticomplementary activity of triterpenoids from the whole plant of Aceriphyllum rossii against the classical pathway. Planta Med 74: 726-729.
Lee CH, Lee JH, Heo CS. 2007. $\beta-Site$ amyloid precursor protein cleaving enzyme inhibitory activity of Aceriphyllum rossii. Korean Patent 10-2007-0022745.
Lee HS, Lee CH, Kim YK, No MC, Park HL, Seo JH, Choi L, Yoo MY. 2008. Metabolic pharmaceutical composition comprising Aceriphyllum rossii extract and active compound isolated from them. Korean Patent 10-2008-0002433.
Blois MS. 1958. Antioxidant determination by the use of a stable free radical. Nature 181: 1198-1201.
Gutfinger T. 1981. Polyphenols in olive oils. J Am Oil Chem Soc 58: 996-968.
Jia Z, Tang M, Wu J. 1999. The determination of flavonoid content in mulberry and their scavenging effects on superoxide radicals. Food Chem 64: 555-559.
Park YH, Lim SH, Ham HJ, Kim HY, Jeong HN, Kim KH, Kim S. 2010. Isolation of anti-inflammatory active substance $\beta-sitosterol$ from seabuckthorn (Hippophae rhamnoides L.) stem. J Korean Soc Food Sci Nutr 39: 980-985.
Bai G, Wang D, Cao X, Xiao H, Geng P, Liu Q, Yang W. 2004. Screening $\alpha-glucosidase$ inhibitors in traditional Chinese medicines. Acta Scientiarum Naturalium Universitatis Nankaiensis 37: 98-102.
Watanabe J, Kawabata J, Kurihara H. 1997. Isolation and identification of $\alpha-glucosidase$ inhibitors from Tochu-cha. Biosci Biotechnol Biochem 61: 61.
Houghton PJ, Soumyanath A. 2006. $\alpha-Amylase $ inhibitory
Kim YJ, Kim BH, Lee SY, Kim MS, Park CS, Rhee MS, Lee KH, Kim DS. 2006. Screening of medicinal plants for development of functional food ingredients with antiobesity. J Korean Soc Appl Biol Chem 49: 221-226.
Hyun Sh, Jung SK, Jwa MK, Song CK, Kim JH, Lim S. 2007. Screening of antioxidants and cosmeceuticals from natural plant resources in Jeju island. Korean J Food Sci
Lee BB, Chun JH, Lee SH, Park HR, Kim JM, Park E, Lee SC. 2007. Antioxidative and antigenotoxic activity of extracts from Rhododendron mucromulatum Turcz. flowers. J Korean Soc Food Sci Nutr 36: 1628-1632.
Lee SO, Lee HJ, Yu MH, Im HG, Lee IS. 2005. Total polyphenol contents and antioxidant activities of methanol extracts from vegetables produced in Ullung island. Korean
Ahn SI, Heuing BJ, Son JY. 2007. Antioxidative activity and nitrite-scavenging abilities of some phenolic compounds.Korean J Food Cookery Sci 23: 19-24.
Lee BB, Park SR, Han CS, Han DY, Park E, Park HS, Lee SC. 2008. Antioxidant activity and inhibition activity against $\alpha-amylase $ and $\alpha-Glucosidase $ of Viola mandshurica extracts. J Korean Soc Food Sci Nutr 37: 405-409.
Kwon GJ, Choi DS, Wang MH. 2007. Biological activities of hot water extracts from Euonymus alatus leaf. Korean J Food Sci Technol 39: 569-574.
Lim CS, Li CY, Kim YM, Lee WY, Lee HI. 2005. The inhibitory effect of Cornus walteri extract against α-amylase. J Korean Soc Appl Biol Chem 48: 103-108.
Bitou N, Nimomiya M, Tsjita T, Okuda H. 1999. Screening of lipase inhibitors from marine algae. Lipids 34: 441-445.
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