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[국내논문] 제주 흑우 동결 정액 제조에 있어 Glycerol의 농도에 따른 생존율 및 정자 첨체 양상의 변화
Change of Sperm Viability and Acrosome Integrity of Post-thawed Korean Jeju Black Bull Spermatozoa according to Glycerol Concentration 원문보기

Journal of embryo transfer = 한국수정란이식학회지, v.26 no.3, 2011년, pp.187 - 193  

최선호 (국립축산과학원 난지축산시험장) ,  고민희 (국립축산과학원 난지축산시험장) ,  강태영 (국립축산과학원 난지축산시험장) ,  조상래 (국립축산과학원 난지축산시험장) ,  박용상 (국립축산과학원 난지축산시험장) ,  오신애 (국립축산과학원 난지축산시험장)

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This study was carried out to establish most suitable freezing condition, to evaluate the different glycerol concentration of freezing and thawing rates on motility, viability, membrane integrity and acrosome intecrity of frozen Korean Jeju Black Bull spermatozoa, Semen was collected from a Korean J...

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문제 정의

  • 그러나 이ycerol은 상온에서 세포내에 독성을 나타내므로 저온에서 평형을 유지해야 하는 단점을 가지고 있으나, 보편적으로 glycerol보다 간편하게 이용되는 물질은 아직 명확하지 않다. 이에 본 연구에서는 소 동결 정액 제조 시 가장 보편적으로 사용되고 있는 Tris-Egg yolk extender와 침투성 동결 보호제 인 glycerol을 제주 흑우의 동결 정액을 생산을 수행하여 glycerol 과 동결 속도가 제주 흑우 정자의 생존율 및 첨체 양상에 미치는 영향을 조사하고자 실시하였다.
  • 희소 한우로 분류된 제주 흑우 동결 정액 생산과 동결 방법 확립을 통하여 제주 흑우 정액의 동결 보존과 이용성 증대 및 유전 자원의 보존성을 증대시키기 위하여 본 연구를 실시하였다. 제주 흑우의 동결 정액 제조 시 7%의 이ycerol 첨가에서 72.
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참고문헌 (31)

  1. Abdelhakeam AA, Graham EF, Vazquez IA and Chaloner KM. 1991. Studies on the absence of glycerol in unfrozen and frozen ram semen: Development of and extender for freezing: Effects of osmotic pressure, egg yolk levels, thpe of sugars, and the method of dilution. Cryobiology 28:43-49. 

  2. Adeoya-Osiguwa SA and Fraser LR. 2004. Environmental estrogens and sperm function. Hum. Reprod. 19:216-217. 

  3. Ahmad K, Foot RH and Kaproth M. 1987. Antibiotics for bull semen frozen in milk and egg yolk extenders. J. Dairy Sci. 70:2439-2443. 

  4. Ahmad K and Foot RH. 1985. Motility and fertility of frozen bull spermatozoa in tris-yolk and milk extenders containing amikacin sulfate. J. Dairy Sci. 68:2083-2086. 

  5. Bilodeau JF, Blanchette S, Cormier N and Sirard MA. 2002. Reactive oxygen species-mediated loss of bovine sperm motility in egg yolk Tris extender: Oritection by pyruvate, metal chelators and bovine liver of oviductal fluid catalase. Theriogenology 57:1105-1122. 

  6. Bolten M, Weissbach L and Kaden R. 2005. Cryopreserved human sperm deposits: Usability after decades of storage. Urologe A. 44:904-908. 

  7. Bravo MM, Aparicio IM, Garcia-Herreros M, Gil MC, Pena FJ and Garcia-Marin LJ. 2005. Changes in tyrosin phosphorylation associated with true capacitation and capacitation-like state in boar spermatozoa. Mol. Reprod. Dev. 71:88-96. 

  8. Curry MR, Millar JD and Watson PF. 1990. Calculated optimal cooling rates for ram and human sperm cryopreservation fail to conform with empirical observation. Biol. Reprod. 51:1014-1021. 

  9. Fraser LR, Abeydeera LR and Niwa K. 1995. $Ca^{2+}$ -regulating mechanisms that modulate bull sperm capacitation and acrosomal exocytosis as determined by chlortetracycline analysis. Mol. Reprod. Dev. 40:233-241. 

  10. Gilmore JA, Liu J, Gao DY, Peter AT and Crister JK. 1998. Determination of plasma membrane characteristics of boar spermatozoa and their relevance to cryopreservation. Biol. Reprod. 58:28-36. 

  11. Guthrie HD, Liu J and Critser JK. 2002. Osmotic tolerance limits and effects of cryoprotectants on motility of bovine spermatozoa. Biol. Reprod. 67:1811-1816. 

  12. Hammerstedt RH, Graham JK and Nolan P. 1990. Cryopreservation of mammalian sperm: What we ask them to survive. J. Androl. 11:73-88. 

  13. Jeyendran RS, Van der Ven HH, Prez-Pelaez M, Carbo BG and Zaneveld LJ. 1984. Development of and assay to assess the functional integrity of the human sperm membrane and its relationship to other semen characteristics. J. Reprod. Fertil. 70:219-228. 

  14. Kommisrud E, Paulenz H, Sehested E and Greule IS. 2002. Influence of boar and semen parameters on motility and acrosome integrity in liquid boar semen stored for 5 days. Acta. Veterinaria Scandinavia. 43:49-55. 

  15. Leibo SP and Bradly L. 1999. Comparative cryobiology of mammalian spermatozoa. In: Gagnon. C. (ed.) The Male Gamete: Basic Science to Clinical Applications, Cache Raven Press. Vienna, pp. 501-516. 

  16. Mazur P. 1984. Freezing of living cell: Mechanisms and implications. Am. J. Physiol. 247(3Pt1):c125-142. 

  17. Oh SA, Park YJ, You YA, Mohamed EA and Pang MG. 2010. Capacitation status of stored boar spematozoa is related litter size of sows. Anim. Reprod. Sci. 121:131-138. 

  18. Polge C, Smith AU and Parkes AS. 1949. Revival of spermatozoa after vitrification and dehydration at low temperatures. Nature 164:666. 

  19. Rodriguez OL, Berndtson WE, Ennen BE and Pickett BW. 1975. Effect of rates of freezing, thawing and levels of glycerol on the survival of bovine spermatozoa in straws. J. Anim. Sci. 41:129-136. 

  20. Suzuki K, Geshi M, Yamauchi N, and Nagai T. 2003. Functional changes and motility characteristics of Japanese Black Bull spermatozoa separated by Percoll. Anim. Reprod. Sci. 77: 157-172. 

  21. Swelum AA, Mansour HA, Elsayed AA and Amer HA. 2011. Comparing ethylene glycol with glycerol for cryopreservation of buffalo bull semen in egg-yolk containing extenders. Theriogenology 76:833-842. 

  22. Vishwanth R and Shannon P. 2000. Storage of bovine semen in liquid and frozen state. Anim. Reprod. Sci. 62:23-53. 

  23. Watson PF, Crister JK and Mazur P. 1992. Sperm preservation: fundamental cryobiology and practical implication. In Templetion, AA, Drife JO. (ed.), Infertility Springer London, pp. 102-114. 

  24. Yanagimachi R. 1994. Mammalian fertilization. In Knobil E and Neill JD (eds). The Physiology of Reproduction 2nd ed. Raven Press. New York, USA, pp. 189-317. 

  25. 이명식, 박정준, 전기준, 정영훈, 우제석, 박수봉, 임석기, 연성흠, 손동수, 나기준, 강만종, 문승주. 2003. 한우의 생식세포 보존에 관한 연구 I. 한우 정액의 일반 성상 및 동결 후생존성에 미치는 영향. 한국수정란이식학회지 18:143-149. 

  26. 이제협, 박 향, 박흠대, 김재명. 2003. 개 정자의 동결보존에있어서 Glycerol 농도, 동결 및 융해 속도가 정자의 생존율및 운동성에 미치는 영향. 한국수정란이식학회지 18:195-201. 

  27. 조상래, 김성재, 손준규, 최선호, 최창용, 고응규, 이풍연, 김현종.2011. 칡소 정액 동결을 위한 AndroMed와 Tris-egg Yolk희석제의 동결성 비교. 한국수정란이식학회지 26:65-70. 

  28. 조상래, 최선호, 최창용, 손준규, 김재범, 김성재, 손동수, 김현종. 2009. AndroMed를 이용한 흑우 동결 정액으로 체외수정란 생산 효과. 한국수정란이식학회지 24:207-212. 

  29. 지달영, 윤태중, 노정래, 조상래, 김창근, 방명걸, 김보숙. 2007.풍산개 정자의 동결보존에 있어서 Glycerol 농도, 동결 및융해속도가 정자성상에 미치는 영향. 한국동물자원과학회지 49:585-592. 

  30. 최두석, 문신용, 장윤석. 1993. 남성 불임검사 중 정자 형태와정자 운동성 검사 및 저장성용액 내 정자 팽창검사의 상관관계 및 가임능력 예측에 관한 연구. 대한산부인과학회잡지 36:2497-2509. 

  31. 최선호, 김성재, 조상래, 최창용, 손준규, 유용희, 조영재, 최귀철,문윤영. 2010. 말 정액 동결시 glycerol 농도와 동결 속도가생존율에 미치는 영향. 한국동물번식학회지 34:271-274. 

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