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NTIS 바로가기한국산학기술학회논문지 = Journal of the Korea Academia-Industrial cooperation Society, v.21 no.3, 2020년, pp.199 - 205
조은석 (농촌진흥청 국립축산과학원 양돈과) , 김정아 (농촌진흥청 국립축산과학원 양돈과) , 정용대 (농촌진흥청 국립축산과학원 양돈과) , 최요한 (농촌진흥청 국립축산과학원 양돈과) , 홍준기 (농촌진흥청 국립축산과학원 양돈과) , 김영신 (농촌진흥청 국립축산과학원 양돈과) , 정학재 (농촌진흥청 국립축산과학원 양돈과) , 백선영 (농촌진흥청 국립축산과학원 양돈과) , 사수진 (농촌진흥청 국립축산과학원 양돈과)
Cryopreservation of semen is useful for animal breeding via artificial insemination (AI). However, the use of frozen-thawed boar semen is limited due to cryodamage. The aim of this study was to investigate the effects of different concentrations of MitoTEMPO (a mitochondria-targeted antioxidant) in ...
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핵심어 | 질문 | 논문에서 추출한 답변 |
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미토콘드리아는 어떻게 알려져 있는가? | 미토콘드리아는 ATP 생성, 지방산 산화, 세포사멸 및 괴사 조절, 세포질 칼슘 이온 및 ROS 항상성 조절을 포함한 많은 세포 과정에서 중요한 역할을 하는 세포소기관으로 알려져 있다[12]. 돼지의 난모세포 및 배아의 세포질에서 높은 수준의 ATP 생성은 생체 및 시험관 내 난모세포 성숙, 수정 및 초기 배아 발달에 필요하다[13]. | |
정자 동결보존은 어디에 사용되는가? | 정자 동결보존은 가축의 인공수정에 사용하여 동물 번식 프로그램 및 사람의 난임을 치료하기 위해 널리 사용되고 있다. 동결정액 활용의 장점은 우량 유전자원 장기 보존, 장거리 수송, 병원체 확산방지 보증 등을 포함한다[1]. | |
정자 동결보존의 장점은 무엇인가? | 정자 동결보존은 가축의 인공수정에 사용하여 동물 번식 프로그램 및 사람의 난임을 치료하기 위해 널리 사용되고 있다. 동결정액 활용의 장점은 우량 유전자원 장기 보존, 장거리 수송, 병원체 확산방지 보증 등을 포함한다[1]. 하지만 돼지의 경우, 다른 축종들과 비교하여 정자 세포막 불포화지방산의 비율이 높아 세포막의 지질과산화가 발생하기 쉬우며, 이는 정자의 운동성과 생존성을 급격히 저하 시키는 요인으로 보고되고 있다[2, 3]. |
K. Buranaamnuay, P. Tummaruk, J. Singlor, H. RodriguezMartinez, M. Techakumphu, "Effects of Straw Volume and EquexSTM(R) on Boar Sperm Quality after Cryopreservation", Reproduction in Domestic Animals, vol. 44, no. 1, pp. 69-73, Jan. 2009. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1439-0531.2007.00996.x
D. Rath, R. Bathgate, H. RodriguezMartinez, J. Roca, J. Strzezek, D. Waberski, "Recent advances in boar semen cryopreservation", Control of Pig Reproduction VIII, vol. 66, pp. 51-66, Jan. 2009. DOI: http://dx.doi:10.4061/2011/396181
M. Techakumphu, K. Buranaamnuay, W. Tantasuparuk, N. Am-In, "Improvement of semen quality by feed supplement and semen cryopreservation in swine", Success in Artificial Insemination-Quality of Semen And Diagnostics Employed, LEMMA, Alemayehu, pp. 17-37, Jan. 2013. OI: http://dx.doi.org/10.5772/51737
A. M. Petrumkina, G. Volker, K. F. Weitze, M. Beyerbach, E. Topfer-Petersen, D. Waberski, "Detection of cooling-induced membrane changes in the response of boar sperm to capacitating conditions", Theriogenology, vol. 63, no. 8, pp. 2278-2299, May. 2005. DOI: https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2004.10.008
J. L. Bailey, J. F. Bilodeau, N. Cormier, "Semen cryopreservation in domestic animals: A damaging and capacitating phenomenon minireview", Journal of Andrology, vol. 21, no. 1, pp. 1-7, Jan. 2000. DOI: https://doi/pdf/10.1002/j.1939-4640.2000.tb03268.x
S. Chatterjee, C. Gagnon, "Production of reactive oxygen species by spermatozoa undergoing cooling, freezing, and thawing", Molecular Reproduction and Development: Incorporating Gamete Research, vol. 59, no. 4, pp. 451-458, Aug. 2001. DOI: https://doi.org/10.1002/mrd.1052
M. Yeste, J. E. RodriguezGil, S. Bonet, "Artificial insemination with frozenthawed boar sperm", Molecular reproduction and development, vol. 84, no. 9, pp. 802-813, Sept. 2017. DOI: https://doi.org/10.1002/mrd.22840
E. Estrada, J. E. Rodriguez-Gil, L. G. Rocha, S. Balasch, M. Yeste, "Supplementing cryopreservation media with reduced glutathione increases fertility and prolificacy of sows inseminated with frozenthawed boar semen", Andrology, vol. 2, no. 1, pp. 88-99, Jan. 2014 DOI: https://doi.org/10.1111/j.2047-2927.2013.00144.x
L. A. Johnson, J. G. Aalbers, C. M. T. Willems, W. Sybesma, "Use of boar spermatozoa for artificial insemination. I. Fertilizing capacity of fresh and frozen spermatozoa in sows on 36 farms", Journal of Animal Science, vol. 52, no. 5, pp. 1130-1136, May. 1981. DOI: https://doi.org/10.2527/jas1981.5251130x
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X. Lu, Y. Zhang, H. Bai. J. Liu, J. Li, B. Wu, "Mitochondria-targeted antioxidant MitoTEMPO improves the post-thaw sperm quality", Cryobiology, vol. 80, pp. 26-29, Feb. 2018. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2017.12.009
H. Hu, M. Li, "Mitochondria-targeted antioxidant mitotempo protects mitochondrial function against amyloid beta toxicity in primary cultured mouse neurons", Biochemical and biophysical research communications, vol. 478, no. 1, pp. 174-180, Sept. 2016. DOI: https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2016.07.071
M. Yeste, "Recent adcances in boar sperm cryopreservation: State of the art and current perspectives", Reproduction in Domestic Animals, vol. 50, no. 52, pp. 71-79, Aug. 2015. DOI: https://doi.org/10.1111/rda.12569
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L. Fang, C. Bai, Y. Chen, J. Dai, Y. Xiang, "Inhibition of ROS production through mitochondria-targeted antioxidant and mitochondrial uncoupling iuncrease post-thaw sperm viability in yellow catfish", vol. 69, no. 3, pp. 386-393, Dec. 2014 DOI: https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2014.09.005
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J. S. Len, W. S. Darius Koh, S. X. Tan, "The roles of reactive oxygen species and antioxidants in cryopreservation", Bioscience Reports, vol. 39, no. 8, Aug. 2019. DOI: https://doi.org/10.1042/BSR20191601
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