$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

인간 간암세포주 HepG2에서 NADPH oxidase 활성 억제에 의한 heme oxygenase-1 발현의 조절
Effect of NADPH Oxidase Inhibition on Heme Oxygenase-1 Expression in Human Hepatoma Cell Line HepG2 원문보기

생명과학회지 = Journal of life science, v.21 no.11 = no.139, 2011년, pp.1625 - 1630  

이상권 (양산부산대학교병원 심혈관센터) ,  김강미 (부산대학교 의학전문대학원 미생물학 및 면역학교실) ,  박광훈 (부산대학교 의학전문대학원 미생물학 및 면역학교실) ,  박영철 (부산대학교 의학전문대학원 미생물학 및 면역학교실)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

CoPP는 다양한 세포에서 HO-1의 유전자 발현과 활성을 증가시키는 강력한 유도제로 알려져 있다. HO-1는 세포 및 조직의 손상을 보호한다는 연구가 활발히 진행되고 있으나, 그 작용 기전에 대해서는 아직 잘 모르고 있다. 본 논문에서는 porphyrin 계열의 CoPP의 자극에 의해 유도되는 HO-1 유전자 발현에서 NADPH oxidase의 활성이 미치는 영향을 인간 간암세포주 HepG2에서 조사하였다. 배양 중인 HepG2 세포에서 CoPP는 HO-1의 발현을 농도의존적으로 증가시키는 것을 확인하였다. NADPH oxidase 저해제로 잘 알려져 있는 DPI를 전처리한 후 CoPP로 자극한 세포에서는 HO-1의 발현이 강력하게 억제되는 것으로 나타났다. DPI의 이런 억제 효과가 HO-1의 전사 조절인자 Nrf2의 활성에도 영향을 줄 수 있기 때문에 DPI를 전처리 한 후 CoPP 자극에 의한 Nrf2의 핵으로의 이동을 분석하였다. 그 결과, DPI는 CoPP에 의해 유도되는 Nrf2의 핵으로의 이동과 세포 내 존재하는 양을 감소시키는 것을 확인하였다. 다른 HO-1 발현 유도제로 알려져 있는 hemin에 의한 자극의 경우에도 DPI는 HepG2 세포의 HO-1의 발현을 억제하는 효과를 나타내었다. 그리고, $p47^{phox}$에 대한 siRNA를 사용하여 효과적으로 $p47^{phox}$ 유전자 발현을 knockdown 시켜서 NADPH oxidase의 활성을 억제시키는 방법을 사용하였다. 그 결과, $p47^{phox}$ silencing한 세포에 CoPP를 처리한 경우는 control siRNA를 처리한 세포와 비교할 때 HO-1 발현이 현저히 감소됨을 관찰할 수 있었다. 마지막으로, 세포 내 ROS 생성을 억제하는 GSHmee가 처리된 세포에서는 CoPP나 hemin이 Nrf2의 활성을 증가시키지 못하였고, 그 결과 HO-1의 발현을 유도하지 못하는 것을 알 수 있었는데, 이는 ROS가 CoPP나 hemin에 의한 HO-1 유전자 발현 과정에 중요한 역할을 한다는 것을 의미한다. 이를 종합해 볼 때, 인간 간암세포주 HepG2에서 CoPP나 hemin의 자극에 의한 HO-1 유전자의 발현에는 NADPH oxidase의 활성이 요구된다는 것을 알 수 있고, 그 활성은 세포 내 ROS를 생성시키는 것으로 역할을 한다고 여겨진다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Heme oxygenase-1 (HO-1) is a stress-responsive protein that is known to regulate cellular functions such as cell proliferation, inflammation, and apoptosis. In this study, we investigated the role of NADPH oxidase on the expression of HO-1 in human liver hepatoma cell line HepG2. Diphenyleneiodonium...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • 본 연구에서 사용한 이들 NADPH oxidase의 억제 효과는 CoPP의 자극에 의한 HO-1의 발현을 억제시켰고, 이는 CoPP에 의한 HO-1 발현의 신호전달 과정에서 NADPH oxidase 및 그 효소에 의해 생성되는 ROS가 필요하다는 것을 시사한다. 그래서, 세포 내 ROS를 감소시키는 것으로 알려진 항산화 인자 GSH의 효과를 알아보았다 [28]. GSH는 세포 내로 들어갈 수 없기 때문에 본 실험을 위해서 세포막을 투과할 수 있는 GSH의 ester form인 GSHmee를사용하였다.
  • 본 연구에서는 인간 간암세포주인 HepG2에서 DPI 또는 p47phox에 대한 small interfering RNA (siRNA)를 사용하여 세포 내 NADPH oxidase의 활성 억제가 CoPP 등에 의해 유도되는 HO-1의 증가에 미치는 영향을 조사하였다. 또한 CoPP에의한 HO-1 유전자 발현 과정에는 NADPH oxidase에 의한 세포 내 ROS의 생성이 요구된다는 것을 보여준다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
HO-1의 발현은 무엇에 의해 조절되는가? HO-1은 다양한 종류의 세포에서 염증성cytokines [6], 저산소 상태[11], ultraviolet radiation [30], metal [24] 등에 의해 유도된다. HO-1의 발현은 전사조절인자 NF-E2-realated factor-2 (Nrf2)에 의해 조절되며, mitogen-activated protein kinases (MAPKs)에 의해서도 조절되는 것으로 알려져 있다[20,29]. Nrf2는 redox status에 민감한 전사인자(redox-sensitive transcription factor)로써 다양한 항산화 효소의 유전자 발현에 관여한다.
HO-1은 어떤 것에 의해 유도되는가? HO-1과 그 대사산물은 항염증 및 항세포사멸에 관련된 유전자 발현과 효소의 활성에 영향을 주는 중요한 항산화 효소로 알려져 있다[8,26]. HO-1은 다양한 종류의 세포에서 염증성cytokines [6], 저산소 상태[11], ultraviolet radiation [30], metal [24] 등에 의해 유도된다. HO-1의 발현은 전사조절인자 NF-E2-realated factor-2 (Nrf2)에 의해 조절되며, mitogen-activated protein kinases (MAPKs)에 의해서도 조절되는 것으로 알려져 있다[20,29].
heme oxygenase-1과 대사산물은 어떤 역할을 하는 항산화 효소로 알려져있는가? HO-1과 그 대사산물은 항염증 및 항세포사멸에 관련된 유전자 발현과 효소의 활성에 영향을 주는 중요한 항산화 효소로 알려져 있다[8,26]. HO-1은 다양한 종류의 세포에서 염증성cytokines [6], 저산소 상태[11], ultraviolet radiation [30], metal [24] 등에 의해 유도된다.
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (30)

  1. Anderson, M. F., M. Nilsson, and N. R. Slims. 2004. Glutathione monoethylester prevents mitochondrial glutathione depletion during focal cerebral ischemia. Neurochem. Int. 22, 153-159. 

  2. Chan, K., X. D. Han, and Y. W. Kan. 2001. An important function of Nrf2 in combating oxidative stress: detoxification of acetaminophen. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 98, 4611-4616. 

  3. Chose, O., P. Sansilverstri-Morel, C. Badier-Commander, F. Bernhardt, J. N. Fabiani, A. Rupin, and T. J. Verbeuren. 2008. Distinct role of nox1, nox2, and p47 phox in unstimulated versus antiotensin II-induced NADPH oxidase activity in human venous smooth muscle cells. J. Cardiovasc. Pharmacol. 51, 131-139. 

  4. Cross, A. R. and O. T. Jones. 1986. The effect of the inhibitor diphenylene iodonium on the superoxide-generating system of neutrophils. Specific labelling of a component polypeptide of the oxidase. Biochem. J. 237, 111-116. 

  5. Doussiere, J., J. Gaillard, and P. V. Vignais. 1999. The heme component of the neutrophil NADPH oxidase complex is a target for aryliodonium compounds. Biochemistry 38, 3694-3703. 

  6. Durante. W., M. H. Kroll, N. Christodoulides, K. J. Peyton, and A. I. Schafer. 1997. Nitric oxide induces heme oxygenase- 1 gene expression and carbon monoxide production in vascular smooth muscle cells. Circ. Res. 80, 557-564. 

  7. Elbirt, K. K. and H. L. Bonkovsky. 1999. Heme oxygenase: recent advances in understanding its regulation and role. Proc. Assoc. Am. Physicians 111, 438-447. 

  8. Gozzelino, R., V. Jeney, and M. P. Soares. 2010. Mechanisms of cell protection by heme oxygenase-1. Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 50, 323-354. 

  9. Huang, H. C., T. Nguyen, and C. B. Pickett. 2000. Regulation of the antioxidant response element by protein kinase C-mediated phosphorylation of NF-E2-related factor 2. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 97, 12475-12480. 

  10. Itoh, K., N. Wakabayashi, Y. Katoh, T. Ishii, K. Igarashi, J. D. Engel, and M. Yamamoto. 1999. Keap1 represses nuclear activation of antioxidant responsive elements by Nrf2 through binding to the amino-terminal Neh2 domain. Genes Dev. 13, 76-86. 

  11. Lee, P. J., B. H. Jiang, B. Y. Chin, N. V. Iyer, J. Alam, G. L. Semenza, and A. M. Choi. 1997. Hypoxia-inducible factot- 1 mediates transcriptional activation of the heme oxygenase- 1 gene in response to hypoxia. J. Biol. Chem. 272, 5375-5381. 

  12. Li, Y. and M. A. Trush. 1998. Diphenyleneiodonium, an NAD(P)H oxidase inhibitor, also potently inhibits mitochondrial reactive oxygen species production. Biochem. Biophys. Res. Commun. 253, 295-299. 

  13. Mandal, P., M. T. Pritchard, and L. E. Nagy. 2010. Anti-inflammatory pathways and alcoholic liver disease: role of an adiponectin/interleukin-19/heme oxygenase-1 pathway. World J. Gastroenterol. 16, 1330-1336. 

  14. Mizuno, K., T. Kume, C. Muto, Y. Takada-Takatori, Y. Izumi, H. Sugimoto, and A. Akaike. 2011. Glutathione biosynthesis via activation of the nuclear factor E2-related factor 2 (Nrf2)-antioxidant-response element (ARE) pathway is essential for neuroprotective effects of sulforaphane and 6-(methylsulfinyl) hexyl isothiocyanate. J. Pharmacol. Sci. 115, 320-328. 

  15. O'Donnell, V. B., D. G. Tew, O. T. Jones, and P. J. England. 1993. Studies on the inhibitory mechanism of iodonium compounds with special reference to neutrophil NADPH oxidase. Biochem. J. 290, 41-49. 

  16. Pandian, R. P., V. K. Kutala, A. Liaugminas, N. L. Parinandi, and P. Kuppusamy. 2005. Lipopolysaccharide-induced alterations in oxygen consumption and radical generation in endothelial cells. Mol. Cell Biochem. 278, 119-127. 

  17. Park, S. E., J. D. Song, K. M. Kim, N. D. Kim, Y. H. Yoo, and Y. C. Park. 2007. Diphenyleneiodonium induces ROS-independent p53 expression and apoptosis in human RPE cells. FEBS Lett. 581, 180-186. 

  18. Petrache, I., L. E. Otterbein, J. Alam, G. W. Wiegand, and A. M. Choi. 2000. Heme oxygenase-1 inhibits TNF-alpha-induced apoptosis in cultured fibroblasts. Am. J. Physiol. Lung Cell Mol. Physiol. 278, L312-L319. 

  19. Sanders, S. A., R. Eisenthal, and R. Harrison. 1997. NADH oxidase activity of human xanthine oxidoreductase - generation of superoxide anion. Eur. J. Biochem. 245, 541-548. 

  20. Shan, Y., R. W. Lambrecht, S. E. Donohue, and H. L. Bonkovsky. 2006. Role of Bach1 and Nrf2 in up-regulation of the heme oxygenase-1 gene by cobalt protoporphyrin. FASEB J. 20, 2651-2653. 

  21. Siow, Y. L., K. K. Au-Yeung, C. W. Woo, and O. Karmin. 2006. Homocystene stimulates phosphorylation oh NADPH oxidase $p47^{phox}$ and $p67^{phox}$ subunits in monocytes via protein kinase C activation. Biochem. J. 398, 73-82. 

  22. Stuehr, D. J., O. A. Fasehun, N. S. Kwon, S. S. Gross, J. A. Gonzalez, R. Levi, and C. F. Nathan. 1991. Inhibition of macrophage and endothelial cell nitric oxide synthase by diphenyleneiodonium and its analogs. FASEB J. 5, 98-103. 

  23. Sumimoto, H., K. Miyano, and R. Takeya. 2005. Molecular composition and regulation of the Nox family NAD(P)H oxidase. Biochem. Biophys. Res. Commun. 338, 677-686. 

  24. Taketani, S., H. Kohno, T. Yoshinaga, and R. Tokunaga. 1989. The human 32-kDa stress protein induced by exposure to arsenite and cadmium ions is heme oxygenase. FEBS Lett. 245, 173-176. 

  25. Tanigawa, S., M. Fujii, and D. X. Hou. 2007. Action of Nrf2 and Keap1 in ARE-mediated NQO1 expression by quercetin. Free Radic. Biol. Med. 42, 1690-703. 

  26. Tenhunen, R., H. S. Marver, and R. Schmid. 1968. The enzymatic conversion of heme to bilirubin by microsomal heme oxygenase. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 61, 748-755. 

  27. Tkachev, V. O., E. B. Menshchikova, and N. K. Zenkov. 2011. Mechanism of the Nrf2/Keap1/ARE signaling system. Biochemistry 76, 407-422. 

  28. Tsan, M. F., J. E. White, and C. L. Rosano. 1989. Modulation of endothelial GSH concentrations: effect of exogenous GSH and GSH monoethyl ester. J. Appl. Physiol. 66, 1029-1034. 

  29. Yu, R., C. Chen, Y. Y. Mo, V. Hebbar, E. D. Owuor, T. H. Tan, and A. N. Kong. 2000. Activation of mitogen-activated protein kinase pathways induces antioxidant response element- mediated gene expression via a Nrf2-dependent mechanism. J. Biol. Chem. 275, 39907-39913. 

  30. Zhong, J. L., G. P. Edwards, C. Raval, H. Li, and R. M. Tyrrell. 2010. The role of Nrf2 in ultraviolet A mediated heme oxygenase 1 induction in human skin fibroblasts. Photochem. Photobiol. Sci. 9, 18-24. 

저자의 다른 논문 :

관련 콘텐츠

오픈액세스(OA) 유형

BRONZE

출판사/학술단체 등이 한시적으로 특별한 프로모션 또는 일정기간 경과 후 접근을 허용하여, 출판사/학술단체 등의 사이트에서 이용 가능한 논문

이 논문과 함께 이용한 콘텐츠

저작권 관리 안내
섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로