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탈세포화 기법을 이용한 돼지 바이오 스캐폴드: 환자 맞춤형 장기재생을 위한 역분화 줄기세포 동물모델
Decellularized Bioscaffold of Pig Organs: A Tool for Patient-specific Organogenesis Using Induced Pluripotent Stem Cells 원문보기

Journal of veterinary clinics = 한국임상수의학회지, v.28 no.1 = no.78, 2011년, pp.57 - 62  

박경미 (강원대학교 줄기세포 연구소) ,  곽호현 (강원대학교 줄기세포 연구소) ,  남현숙 (강원대학교 줄기세포 연구소) ,  박인철 (강원대학교 줄기세포 연구소) ,  전용환 (강원대학교 줄기세포 연구소) ,  박성민 (강원대학교 줄기세포 연구소) ,  이승태 (강원대학교 줄기세포 연구소) ,  우제석 (농촌진흥청 국립축산과학원 동물바이오공학과) ,  우흥명 (강원대학교 줄기세포 연구소)

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

The shortage of transplantable kidneys has many efforts to regenerate bioartificial kidneys using transgenic animals and diverse kinds of scaffolds which are important tools for cell seeding. However, there are many limitations for clinical applications so far. Recently, decellularized bioscaffolds ...

주제어

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문제 정의

  • 본 연구에서는 사람과 유사한 대형 동물인 돼지의 신장을 이용하여 탈세포화 기법으로 바이오 스캐폴드를 생산하였고, 이후 몇 가지 분석을 통하여 바이오 장기로서의 가능성을 확인해 보았다. 하지만 이후 추가적인 연구를 통하여 임상적 활용도에 대한 정밀 검증이 이루어져야 할 것이다.
  • 원숭이는 사람과 가장 가깝긴 하나 사육이 어렵고, 심한 윤리적 문제를 수반하는 반면, 돼지는 가축으로서 다루기 쉬울 뿐 아니라, 이미 형질전환 등의 기술력을 바탕으로 유전자 분석이 많이 진행되어있어 상대적으로 연구가 용이하며, 사람과 유사한 구조적, 생리적 특성을 갖고 있는 장점이 있다(5). 본 연구에서는 사람의 신장 크기와 유사한 돼지의 신장을 이용하여 바이오 스캐폴드를 제작하여 바이오 장기로서의 가능성을 검토하고자 하였다.
  • 따라서 본 연구에서는 사람에서 이식대기자 수가 가장 많은 신장을 대상으로 사람과 크기, 생리적, 구조적으로 유사한 동물인 돼지를 활용하여 탈세포화(decellularization) 기법으로 신장 바이오 스캐폴드를 생산하였다. 이후 탈세포화 정도와 혈관구조의 형태학적 분석을 통하여 바이오 인공장기로서의 가능성을 검토하고자 하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
바이오 스캐폴드는 무엇인가? 최근, 랫드 등의 소형 실험동물을 이용하여 복잡한 장기의 구조를 정확하게 보존하며 이종장기의 문제점인 면역항원을 제거하는 바이오 스캐폴드(bioscaffold)의 제작 방법이 소개되었다. 탈세포화 기법을 이용한 바이오 스캐폴드는 형질전환 동물과 조직공학에서의 문제점 들을 획기적으로 해결 할 수 있는 대안으로 장기재생(organogenesis)의 가능성을 제시하고 있다(9,12,14).
이식장기의 부족 문제를 해결하기 위해 어떤 분야에서 연구가 진행되고 있는가? 지난 10여 년 간 이식장기의 부족 문제를 해결하려는 노력은 다양한 분야에서 진행되어 왔다. 가장 대표적인 연구분야로 형질 전환 복제동물의 장기를 이용한 바이오 장기 개발과 조직공학 분야에서의 인공장기 개발을 들 수 있다(7,22).
스캐폴드의 한계점은? 스캐폴드(scaffold)를 활용한 조직 공학적 연구 또한 많은 한계점을 가지고 있다. 복잡하고 다양한 기능적 조직의 구성 불가, 세포의 생존을 위해 필수적인 미세 혈관 구조의 부재, 세포 생존에 적합한 환경을 제공하는 세포 외 기질(ECM: extracellular matrix) 등의 완벽한 재현 불가 등이 바로 그것이다(22).
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참고문헌 (22)

  1. 남현숙, 엄지용, 윤병일, 우흥명. 개의 신장 동종이식 후 발생된 급성 거부반응. 한국임상수의학회지 2005; 22: 439-449. 

  2. Are C, Kutka M. Effect of laparoscopic antireflux surgery upon renal blood flow. The American Journal of Surgery 2002; 183: 419-423. 

  3. Badylak SF, Lantz GC, Coffey A, Geddes LA. Small intestinal submucosa as a large diameter vascular graft in the dog. J Surg Res 1989; 47: 74-80. 

  4. Badylak SF. Xenogeneic extracellular matrix as a scaffold for tissue reconstruction. Transpl Immunol 2004; 12: 367-77. 

  5. Esteban MA, Jianyong X, Generation of induced pluripotent stem cell lines from Tibetan miniature pig. The journal of biological chemistry 2009; 284, 17634-17640. 

  6. Karina H, Nakayama BS. Decellularized Rhesus monkey kidney as a three - dimensional scaffold for renal tissue engineering. Tissue Engineering 2009; 16: 2207-2216. 

  7. Klymiuk N, Aigner B. Genetic modification of pigs as organ donors for xenotransplantation. Molecular Reproduction & Development 2010; 77: 209-221. 

  8. Krejci NC, Cuono CB, Langdon RC, McGuire J. In vitro reconstitution of skin fibroblasts facilitate keratinocyte growth and differentiation on acellular reticular dermis. J Invest Dermatol 1991; 97: 843-848. 

  9. Ott HC, Clippinger B. Regeneration and orthotopic transplantation of a bioartificial lung. Nature medicine 2010; 16: 927-33. 

  10. Ott HC, Matthiesen TS. Perfusion - decellularized matrix: using nature's platform to engineer a bioartificial heart. Nature medicine 2008; 14: 2130-2139. 

  11. Petersen TH, Calle EA. Tissue-engineered lungs for in vivo implantation. Science 2010; 329: 538-541. 

  12. Ross EA, Williams MJ. Embryonic stem cells proliferate and differentiate when seeded into kidney scaffolds. J Am Soc Nephrol 2009; 20: 2338-2347. 

  13. Seebacher G, Grasl C. Biomechanical properties of decellularized porcine pulmonary valve conduits. Artif Organs 2008; 32: 28-35. 

  14. Uygun BE, Soto-Gutierrez A. Organ reengineering through development of a transplantable recellularized liver graft using decellularized liver matrix. Nature medicine 2010; 16: 814-820. 

  15. Van PD, Nahmias Y. Human immune reactivity against liver sinusoidal endothelial cells from GalT $\alpha$ (1,3)GalT-deficient pigs. Cell Transplant. 2010; 19: 783-789. 

  16. Wainwright JM, Czajka CA. Preparation of cardiac extracellular matrix from an intact porcine heart. Tissue Engineering 2010; 16: 527-532. 

  17. Walles T, Herden T, Haverich A, Mertsching H. Influence of scaffold thickness and scaffold composition on bioartificial graft survival. Biomaterials 2003; 24: 1233-1239. 

  18. Xu HM, Wang ZJ. Application of acellular dermal matrix for intestinal elongation in animal models. World J Gastroentero 2010; 16: 2023-2027. 

  19. Yoo JJ, Meng J, Oberpenning F, Atala A. Bladder augmentation using allogenic bladder submucosa seeded with cells. Urology 1998; 51: 221-225. 

  20. Zhong R. Gal knockout and beyond. Am J Transplant 2007; 7: 5-11. 

  21. Zhou J, Fritze O. Impact of heart valve decellularization on 3-D ultrastructure, immunogenicity and thrombogenicity. Biomaterials 2010; 31: 2549-2554. 

  22. Zimmermann WH, Robert C. Cardiac tissue engineering: Implications for pediatric heart surgery. Pediatr Cardiol 2009; 30: 716-723. 

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