해양심층수로 배양한 해양미세조류 Tetraselmis sp. JK-46의 성분 조성 및 생리활성 Physiological Properties of Extracts and the Chemical Composition of Tetraselmis sp. JK-46 Cultured with Deep Seawater원문보기
This study examined Tetraselmis sp. JK-46 isolated from seawater from the East Sea. Deep seawater (DSW) had a greater effect on the growth of Tetraselmis sp. JK-46 than surface seawater (SSW). The crude protein, lipid, carbohydrate and ash contents of Tetraselmis sp. JK-46 cultured with DSW were 27....
This study examined Tetraselmis sp. JK-46 isolated from seawater from the East Sea. Deep seawater (DSW) had a greater effect on the growth of Tetraselmis sp. JK-46 than surface seawater (SSW). The crude protein, lipid, carbohydrate and ash contents of Tetraselmis sp. JK-46 cultured with DSW were 27.2, 37.1, 13.2 and 26.3 %, respectively, and these values were similar to the results for samples cultured with SSW. The contents of Mg, Ca, Fe and K in the DSW cultured samples were 7080.3, 1009.6, 251.2, and 2749.7 mg/100 g, respectively. The fatty acid compositions of Tetraselmis sp. JK-46 cultured with DSW and SSW were 53.7 and 49.0 % polyunsaturated fatty acids (PUFA) and 25.7 and 30.7 % saturated fatty acids (SFA), respectively. The total amino acid contents of the samples cultured with DSW and SSW were 7392.6 and 6376.0 mg/100 g respectively. The 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH) radical scavenging activity of Tetraselmis sp. JK-46 extracts increased with the concentration of the chloroform and ethyl acetate fractions. The half maximal inhibitiory concentrations ($IC_{50}$) of the chloroform and ethyl acetate fractions of DSW and SSW cultured samples were 1.2 and 2.6 mg/mL, and 3.1 and 3.3 mg/mL, respectively. The ethyl acetate fractions of DSW and SSW cultured samples has anticoagulant activity and the activated partial thromboplastin times (APTT) were 93.4 and 89.3 sec., respectively. The chloroform and ethyl acetate fractions showed antimicrobial activity against Bacillus subtilis, Escherichia coli and Candida albicans.
This study examined Tetraselmis sp. JK-46 isolated from seawater from the East Sea. Deep seawater (DSW) had a greater effect on the growth of Tetraselmis sp. JK-46 than surface seawater (SSW). The crude protein, lipid, carbohydrate and ash contents of Tetraselmis sp. JK-46 cultured with DSW were 27.2, 37.1, 13.2 and 26.3 %, respectively, and these values were similar to the results for samples cultured with SSW. The contents of Mg, Ca, Fe and K in the DSW cultured samples were 7080.3, 1009.6, 251.2, and 2749.7 mg/100 g, respectively. The fatty acid compositions of Tetraselmis sp. JK-46 cultured with DSW and SSW were 53.7 and 49.0 % polyunsaturated fatty acids (PUFA) and 25.7 and 30.7 % saturated fatty acids (SFA), respectively. The total amino acid contents of the samples cultured with DSW and SSW were 7392.6 and 6376.0 mg/100 g respectively. The 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH) radical scavenging activity of Tetraselmis sp. JK-46 extracts increased with the concentration of the chloroform and ethyl acetate fractions. The half maximal inhibitiory concentrations ($IC_{50}$) of the chloroform and ethyl acetate fractions of DSW and SSW cultured samples were 1.2 and 2.6 mg/mL, and 3.1 and 3.3 mg/mL, respectively. The ethyl acetate fractions of DSW and SSW cultured samples has anticoagulant activity and the activated partial thromboplastin times (APTT) were 93.4 and 89.3 sec., respectively. The chloroform and ethyl acetate fractions showed antimicrobial activity against Bacillus subtilis, Escherichia coli and Candida albicans.
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문제 정의
따라서 본 연구에서는 강원도 동해안 해양환경으로부터 미세조류를 분리하고, 분리된 미세조류를 해양심층수와 표층수로 배양하면서 해양심층수의 미세조류 배양에의 효과를 확인하였다. 아울러 해양심층수와 표층수로 배양한 미세조류의 성분을 비교하였고, 이들 성분의 생리활성을 비교하여 해양심층수의 미세조류 배양 소재로서의 가능성을 확인하였다.
제안 방법
Ca, Mg, K, Al, Fe, Mn, Zn, Cu 등 무기질 분석은 동결건조 시료 약 0.5~1.0 g 취하여 진한 질산 12 mL를 가한 후 microwave로 1시간동안 분해하고 냉각시킨 후, 3차 증류수로 50 mL fill-up하여 ICP-OES (PerkinElmer precisely optical Emission spectrometer, Optima 5300 DV USA)로 분석하였다.
pH 측정은 배지에 미세조류를 접종한 시점부터 매 24시간마다 pH meter (Mettler Toledo, SevenEasy pH, Switzerland)로 측정하였다.
각 획분별로 농축한 시료를 일정한 농도가 되도록 methanol 2 mL에 녹이고 이를 1.5×10-4 M 1,1-diphenyl-2- picrylhydrazyl (DPPH)/methanol 용액 0.5 mL와 혼합한 다음 실온에서 30분간 방치한 후, 517 nm에서 흡광도를 측정하여 다음 식으로 RSA값을 계산하였다.
다음에 paper disk (8 mm, Advance Toyo, Japan)를 평판위에 올려놓고 그 위에 추출된 시료 25 및 45 μL를 멸균 마이크로피펫으로 가한 후 37℃로 조절된 배양기에서 배양하였다.
5 mL와 혼합한 다음 실온에서 30분간 방치한 후, 517 nm에서 흡광도를 측정하여 다음 식으로 RSA값을 계산하였다. 대조구는 시료용액 대신에 2 mL의 methanol을 넣어 시료용액과 동일한 방법으로 흡광도를 측정하였다.
미세조류의 배양은 실린더 배양기 (Ø9 cm×L90 cm)을 이용하였고, 배양시 별도로 탄소를 공급하지 않고 공기량 (30 L/min)을 조절하였고, 배양온도 및 빛 강도는 각각 25±2℃, 7,000 lux의 조건에서 배양하였다.
배양 24∼48시간 경과후 paper disk 주위의 투명환의 생성 여부로 항균성 유무를 판별하였다.
따라서 본 연구에서는 강원도 동해안 해양환경으로부터 미세조류를 분리하고, 분리된 미세조류를 해양심층수와 표층수로 배양하면서 해양심층수의 미세조류 배양에의 효과를 확인하였다. 아울러 해양심층수와 표층수로 배양한 미세조류의 성분을 비교하였고, 이들 성분의 생리활성을 비교하여 해양심층수의 미세조류 배양 소재로서의 가능성을 확인하였다.
이 분해물을 감압건고한 후 0.02 N HCl로 용해한 다음 마이크로필터(∅0.2 μm)로 여과하여 아미노산 자동분석기 (L-8800, High speed amino acid analyzer, Hitachi, Japan)로 분석하였다.
조체량 측정은 배지에 미세조류를 접종한 시점부터 매 24시간마다 5 mL의 시료를 취하여 microfilter paper (Ø 0.45 μm)로 여과한 후, 0.85 % 생리식염수 10 mL로 수세한 다음 2시간 건조 (100℃)한 후에 30분 방냉하여 무게를 측정하였다.
85 % 생리식염수 10 mL로 수세한 다음 2시간 건조 (100℃)한 후에 30분 방냉하여 무게를 측정하였다. 조체의 성장은 초기 조체 무게에 대한 측정 시점의 조체 무게비의 대수 [ln(x/xo)]로 나타내어 초기 조체 농도에 대한 경시적 변화를 측정하였다.
추출은 조체 5∼10 g을 막자 사발에 넣고 sea sand를 10 g 정도 가하고 마쇄한 후 추출 용매를 1000 mL 가하여 1차 추출한 다음 여과하고, 고형분은 다시 막자사발에 넣고 충분하게 마쇄한 후 동일 용매 100 mL를 가하여 2차 추출하였고, 동일하게 3차 추출까지 행하였다.
분획은 유리칼럼 (Ø5 cm×50 cm)에 chloroform으로 aging 시켜놓은 silica gel(100-200 mesh, 75~150 μm)을 40 cm 정도 충진한 후 안정화시킨 다음 추출용매에 녹여놓은 10 mL를 모두 흡착시켰다. 흡착시킨 후 hexane, chloroform, ethyl acetate 및 methanol의 순서로 각 용매 가용 획분을 분획하였다.
대상 데이터
Tetraselmis sp. JK-46의 배양은 f/2배지 (Guillard, 1975)를 기본 배양 배지로 사용하였으며, 해수는 해양심층수와 표층수를 각각 사용하였다. 미세조류의 배양은 실린더 배양기 (Ø9 cm×L90 cm)을 이용하였고, 배양시 별도로 탄소를 공급하지 않고 공기량 (30 L/min)을 조절하였고, 배양온도 및 빛 강도는 각각 25±2℃, 7,000 lux의 조건에서 배양하였다.
동해안 지역 (울진, 삼척, 동해, 강릉, 속초 등)의 수심 5, 15, 20 및 25 m의 해수를 채수하여 미세조류를 분리하는데 사용하였다. 총 85개의 해수 시료로부터 해양미세조류 1종(Tetraselmis sp.
배양 24∼48시간 경과후 paper disk 주위의 투명환의 생성 여부로 항균성 유무를 판별하였다. 본 실험에 사용한 균주는 Bacillus subtilis KCTC1021, Escherichia coli KCTC2469, Staphylococcus aureus KCTC1621, Aspergillus niger KCTC6089, Candida albicans KCTC7270 등으로 유전자은행 (KCTC)로부터 분양받아 사용하였다.
JK-46)을 분리하여 본 실험에 사용하였다. 분리된 미세조류의 배양에 사용된 해양심층수는 (주)울릉미네랄(수심: 650 m)에서 공급받아 사용하였으며, 표층수는 강릉지역 해안에서 채수하여 사용하였다. 생리활성물질 추출에 이용한 Tetraselmis sp.
배양 미세조류 추출물 및 이 시료로부터 얻어진 각 용매획분의 항균활성을 Table 6와 Table 7에 나타내었다. 실험에 사용한 세균은 식품부패와 식중독 유발과 관련된 균을 선정하였고, 효모와 곰팡이 식품 부패와 관련된 균을 활용하였다. 그 결과 해양심층수로 배양한 시료의 경우, chloroform 획분과 ethyl acetate 획분에서 주로 항균 활성을 나타내었다.
조체로부터 물질 추출은 chloroform과 methanol을 1:1 혼합용매를 사용하였다. 추출은 조체 5∼10 g을 막자 사발에 넣고 sea sand를 10 g 정도 가하고 마쇄한 후 추출 용매를 1000 mL 가하여 1차 추출한 다음 여과하고, 고형분은 다시 막자사발에 넣고 충분하게 마쇄한 후 동일 용매 100 mL를 가하여 2차 추출하였고, 동일하게 3차 추출까지 행하였다.
동해안 지역 (울진, 삼척, 동해, 강릉, 속초 등)의 수심 5, 15, 20 및 25 m의 해수를 채수하여 미세조류를 분리하는데 사용하였다. 총 85개의 해수 시료로부터 해양미세조류 1종(Tetraselmis sp. JK-46)을 분리하여 본 실험에 사용하였다. 분리된 미세조류의 배양에 사용된 해양심층수는 (주)울릉미네랄(수심: 650 m)에서 공급받아 사용하였으며, 표층수는 강릉지역 해안에서 채수하여 사용하였다.
추출은 조체 5∼10 g을 막자 사발에 넣고 sea sand를 10 g 정도 가하고 마쇄한 후 추출 용매를 1000 mL 가하여 1차 추출한 다음 여과하고, 고형분은 다시 막자사발에 넣고 충분하게 마쇄한 후 동일 용매 100 mL를 가하여 2차 추출하였고, 동일하게 3차 추출까지 행하였다. 추출 시료는 진공농축기로 감압농축한 다음 10 mL 추출 용매로 녹여 겔크로마토그래피용 시료로 사용하였다. 분획은 유리칼럼 (Ø5 cm×50 cm)에 chloroform으로 aging 시켜놓은 silica gel(100-200 mesh, 75~150 μm)을 40 cm 정도 충진한 후 안정화시킨 다음 추출용매에 녹여놓은 10 mL를 모두 흡착시켰다.
이론/모형
미세조류로부터 용매추출된 각 획분의 항균 활성은 paper disk법 (Lorian, 1991)으로 측정하였다. 즉, 멸균 petri dish에 nutrient agar를 20 mL씩 부어 평판배지를 만들고 37℃에서 12시간 배양시킨 시험 균액을 면봉을 이용하여 petri dish 상에 도말하여 접종한 후, 20℃에서 2시간 예비 배양시켰다.
일반성분은 AOAC법 (1995)에 따라 수분은 상압가열건조법, 조지방은 Soxthlet법, 회분은 건식회화법으로 측정하였으며, 조단백질은 semimicro Kjeldahl법으로 질소를 정량한 후 질소계수 (6.25)를 이용하여 계산하였다.
지방산 조성분석은 직접 전환 에스테르법 (Dionisi et al., 1993)을 이용하여 측정하였다. 즉, 동결건조한 미세조류 0.
항혈액응고활성은 John (1982)의 방법에 따라 정상인의 정맥혈 4.5 mL를 채취하여 0.5 mL의 sodium citrate (3.8 %)용액과 혼합한 다음 1,500 rpm에서 5분간 원심분리하여 혈장을 분리하였다. 혈장 100 μL에 시료액 10 μL를 넣고 교반 후 37℃ 항온 수조에서 2분간 가온한 후, actin 100 μL을 첨가하고 다시 37℃ 항온수조에서 3분간 가온한 다음 3분이 되는 순간 미리 37℃로 가온해둔 0.
성능/효과
해양심층수와 표층해수를 사용하여 배양한 Tetraselmis sp. JK-46의 무기질 함량을 분석한 결과 (Table 2), 해양심층수로 배양한 시료의 마그네슘, 칼슘, 철 및 칼륨 함량은 각각 7,080.33, 1,009.60, 251.17, 2,749.67 mg/100 g이었고, 표층해수로 배양한 것은 각각 7,770.00, 1,190.67, 341.07 및 2,557.00 mg/100 g이었다. 그 외에 망간, 구리, 아연 및 알루미늄 등이 소량 함유되어 있었다.
본 실험의 Tetraselmis sp. JK-46의 탄수화물과 단백질 함량은 비슷한 경향을 나타내었지만 지방 함량이 매우 높은 것이 특징적이었으며, 성분 함량은 해양심층수와 표층해수를 사용한 두 경우 모두 큰 차이가 없었다.
표층해수로 배양한 Tetraselmis sp. JK-46이 해양심층수로 배양한 것보다 마그네슘, 칼슘, 철 등의 함량이 높았으며, 칼륨 함량은 해양심층수로 배양한 것이 더높은 값을 나타났다. Kim et al.
coli에 항균활성은 물론이고 효모인 Can. albicans에 대해 항균활성이 확인되었으며, 표층해수로 배양한 시료에서도 항균효과는 낮았지만 유사한 경향을 나타내었다. 특히 chloroform 획분은 B.
표층해수로 배양한 시료에서도 경향은 해양심층수로 배양한 시료와 유사하였으나 항산화효과는 낮은 것으로 확인되었다. 농도에 따른 효과가 확실했던 chloroform층과 ethyl acetate층에 대한 IC50을 확인한 결과 (Table 5), 해양심층수 및 표층해수로 배양한 chloroform층이 각각 1.2 mg/mL, 2.6 mg/mL이었고, ethyl acetate층은 각각 3.1 mg/mL, 3.3 mg/mL로 해양심층수 시료가 상대적으로 강한 항산화 활성을 나타내었다. 미세조류가 생산하는 지용성 색소나 polyphenol성 화합물, chlorogenic acid 등과 같은 성분이 항산화 효과와 연관성이 있는 것으로 해석되고 있다 (Choi et al.
6 % 높은 값을 나타내었다. 또한 필수지방산인 linoleic acid (18:2, n-6)와 linolenic acid (18:3, n-3)의 함량과 생리기능적으로 중요한 다가불포화 지방산 중 EPA (20:5, n-3)와 DHA (22:6, n-3)의 함량은 해양심층수로 배양한 것은 8.04 및 3.66%였고, 표층해수로 배양한 시료는 9.44 및 0.51%로 해양심층수와 표층해수 시료간에는 약간의 차이를 나타내었다. Tetraselmis sp.
9 mg/100 g로 가장 높은 함량을 차지하였다. 또한, 필수 아미노산 함량에서도 해양심층수로 배양한 것이 3756.2 mg/100 g로 전체아미노산 함량중에서 50.81%로 가장 높은 함량을 차지하였으며, 표층해수로 배양한 시료의 47.81% 보다 3%가량 높은 함량을 나타내었다. Kim et al.
2 %의 항산화능을 나타내었다. 시료의 농도를 1 mg/mL, 3 mg/mL, 5 mg/mL로 조절하여 각 용매 획분별 항산화능을 실험한 결과, 해양심층수 시료의 경우는 chloroform층에서 농도별 유의성을 가지면서 가장 강한 항산화효과를 나타내었으며, 다음으로 ethyl acetate층이 높은 항산화효과를 보였다. 표층해수로 배양한 시료에서도 경향은 해양심층수로 배양한 시료와 유사하였으나 항산화효과는 낮은 것으로 확인되었다.
7 mg/100 g로 가장높은 함량을 차지하였다. 표층해수로 배양한 시료는 총아미노산 함량은 6376.0 mg/100 g로 해양심층수로 배양한 시료보다 아미노산 함량이 낮은 것으로 확인되었고, 표층해수로 배양한 것도 glutamic acid와 aspartic aicd가 980.1 및 603.9 mg/100 g로 가장 높은 함량을 차지하였다. 또한, 필수 아미노산 함량에서도 해양심층수로 배양한 것이 3756.
시료의 농도를 1 mg/mL, 3 mg/mL, 5 mg/mL로 조절하여 각 용매 획분별 항산화능을 실험한 결과, 해양심층수 시료의 경우는 chloroform층에서 농도별 유의성을 가지면서 가장 강한 항산화효과를 나타내었으며, 다음으로 ethyl acetate층이 높은 항산화효과를 보였다. 표층해수로 배양한 시료에서도 경향은 해양심층수로 배양한 시료와 유사하였으나 항산화효과는 낮은 것으로 확인되었다. 농도에 따른 효과가 확실했던 chloroform층과 ethyl acetate층에 대한 IC50을 확인한 결과 (Table 5), 해양심층수 및 표층해수로 배양한 chloroform층이 각각 1.
7로 최대값에 도달한 후 감소하는 경향을 나타내었다. 한편, 배양시간에 따른 균체량의 변화를 살펴 본 결과, 해양심층수를 사용한 시료의 경우는 배양 8일째까지 지속적으로 성장하여 초기 농도에 대한 균체량의 비가 0.77까지 도달한 후 배양 13일째까지 균체량을 유지하는 결과를 나타내었고, 표층수를 사용한 경우에는 배양 4일째에 초기농도에 대한 균체량의 비가 0.58로 최대에 도달한 한 후 약간씩 감소하는 경향을 나타내었다. 이러한 결과는 표층해수에 비해 해양심층수에 많이 함유되어 있는 인산염, 질산염 등의 영양염이 미세조류의 성장에 영향을 미치는 것으로 판단되었다 (Park et al.
(1984)은 부착성 미세조류의 무기질 함량 중에서 칼륨, 칼슘, 마그네슘의 함량이 각각 540-730, 450-520, 370-420 mg/100 g으로 보고한 바 있는데, 이들에 비해서는 칼륨, 마그네슘, 칼슘 함량이 높은것으로 나타났다. 한편, 실험에 사용한 해양심층수 및 표층해수의 무기질 함량은 해양심층수가 Mg 함량이 약간 높은 것이 특징적이었고, 그 외 Na, K, Fe 등의 함량은 비슷하였다. 이는 해양심층수와 표층수의 무기질 함량이 배양 미세조류의 무기질 함량에 영향을 미치는 것은 명확하게 예측할 수 없었다.
17%였으며, 해양심층수와 표층해수에 따른 차이는 크지 않는 것으로 확인되었다. 한편, 조지방 및 탄수화물의 함량은 해양심층수를 사용 시료가 각각 37.09, 12.16%였고 표층해수를 사용한 시료는 35.76, 13.20%로 해양심층수로 배양한 시료가 조지방 함량이 약간 높은 값을 나타내었다. Brown and Jeffrey (1992)의 보고에 따르면, 담수산 녹조류인 Chlorophyceae와 해수산 녹조류인 Chlorophyceae 및 Prasinophyceae의 일반성분 함량이 건조중량으로 단백질은 15.
albican에서도 활성을 나타내었다. 항균활성은 해양심층수로 배양한 시료에서 더 강한 활성을 나타내는 것으로 확인되었다. Joo et al.
3에 나타내었다. 항산화능 결과와는 달리 해양심층수 및 표층해수로 배양한 시료 대부분이 hexane, chloroform 및 methanol 획분에서는 항혈액응고활성이 미약하였고, ethyl acetate 획분만 APTT가 각각 93.4 sec 및 89.3 sec로 활성을 나타내었다. 미세조류 성분의 항혈액응고활성에 대한 보고는 없지만 미세조류에서 황화합물의 축적이 일어나는데 이러한 성분들이 혈액응고를 지연시키는 효과가 있는 것으로 여겨진다.
2에 나타내었다. 해양심층수 및 표층해수로 배양한 시료의 용매 추출물의 농도를 3.0 mg/mL로 조절하여 반응시킬 때 각각 48.5 및 39.2 %의 항산화능을 나타내었다. 시료의 농도를 1 mg/mL, 3 mg/mL, 5 mg/mL로 조절하여 각 용매 획분별 항산화능을 실험한 결과, 해양심층수 시료의 경우는 chloroform층에서 농도별 유의성을 가지면서 가장 강한 항산화효과를 나타내었으며, 다음으로 ethyl acetate층이 높은 항산화효과를 보였다.
1에 나타내었다. 해양심층수로 배양한 경우는 배양 6일째까지 계속 증가하여 pH 8.5에 도달한 후 감소하는 경향을 나타내었고, 표층해수로 배양한 시료는 배양 4일째에 pH가 8.7로 최대값에 도달한 후 감소하는 경향을 나타내었다. 한편, 배양시간에 따른 균체량의 변화를 살펴 본 결과, 해양심층수를 사용한 시료의 경우는 배양 8일째까지 지속적으로 성장하여 초기 농도에 대한 균체량의 비가 0.
JK-46의 총아미노산 조성을 분석한 결과는 Table 4와 같다. 해양심층수로 배양한 시료는 총아미노산 함량이 7392.6 mg/100 g이었으며, 맛을 내는 주요 성분인 glutamic acid와 aspartic aicd가 각각 1221.4 와 798.7 mg/100 g로 가장높은 함량을 차지하였다. 표층해수로 배양한 시료는 총아미노산 함량은 6376.
JK-46를 해양심층수와 표층해수로 각각 배양하여 동결건조한 조체의 일반성분을 분석한 결과를 Table 1에 나타내었다. 해양심층수와 표층해수로 배양한 시료의 조단백질 및 회분의 함량은 각각 27.20, 26.30 및 21.19, 22.17%였으며, 해양심층수와 표층해수에 따른 차이는 크지 않는 것으로 확인되었다. 한편, 조지방 및 탄수화물의 함량은 해양심층수를 사용 시료가 각각 37.
후속연구
해양심층수로 배양한 Tetraselmis sp. JK-46의 다가불포화 지방산 함량이 표층해수로 배양한 시료에서 더 높게 나타남으로서 해양심층수의 배양 배지 소재로서의 활용이 기대된다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
미세조류가 생성하는 것은?
미세조류는 당질, 지질, 단백질, 색소, 비타민, 스테로이드및 기타 의약성분 등과 같은 유용성분뿐만 아니라 수소, 탄화수소, 생화학 연료 등의 다양한 물질들을 생산한다. 최근 국내외에서는 미세조류의 자원학적 잠재성에 대해 많은 논의와 연구가 진행되고 있으며 생명공학의 새로운 영역으로 인식되고 있다 (Borowitzka, 1997; Kim et al.
해양심층수는 무엇인가?
한편, 해양심층수는 태양광이 도달하지 않는 수심 200 m 이상의 깊은 곳에 있는 해수로서, 연중 수온이 2℃이하의 저온성과 해양식물의 생장에 필수적인 영양염류가 풍부하고 병원균이 거의 없는 청정성을 특징으로 하는 풍부한 해양자원이다(Korea ocean reserch lab. 2000; Takahashi, 2001).
해양심층수의 미세조류 배양에의 효과를 위해 강원도 동해안을 선택한 이유는 무엇인가?
한편, 강원도 동해안은 남서해안과 다른 해양환경으로 인해 구별된 해양생물군이 분포되어 있으며, 이는 해양에 존재하는 미세조류와 이들 미세조류의 생화학적 성상도 차이가 있을 것으로 여겨진다.
참고문헌 (20)
AOAC. Offical Methods of Analysis. 16th ed. 1995. Association of Official Analytical Chemists, Washington DC., U.S.A., 69-74.
Borowitzka MA. 1997. Microalgae for aquaculture:opportunities and constraints. J Appl Phycol 9, 393-401.
Brown MR and Jeffrey SW. 1992. Biochemical composition of microalgae from the green algal classes Chlorophyceae and Prasinophyceae. 1. Amino acids, sugars and pigments. J Exp Mar Biol Ecol 161, 91-113.
Choi JS, Lee WK, Son BW, Kim DS, Choi HD, Choi JS, Jung JH, Im KS and Choi WC. 2000. Screening on radical scavenging activity of marine microalgae. Kor J Pharmacogn 31, 252-255.
Dionisi F, Golay PA, Elli M and Fay LB. 1993. Stability of cyclopropane and conjugated linoleic acids during fatty acid quantification in lactic acid bacteria. Lipids 34, 1107-1115.
Guillard RRL. 1975. Division rates. In: stein J.R.(ed), Handbook of phycological methods-culture methods and growth measurements. Cambridge University Press, Cambridge, U.S.A., 289-311.
Hatano T, Kagawa H and Okawa T. 1988. Two new flavonoids and other constituents in licorice wet: their relative astringency and radical scavening effect. Chem Pharm Bull 36, 2090-2097.
John DB. 1982. Clinical Laboratory Methods. Ninth Edition. The C.V. Mosby company. St. Louis, U.S.A., 294-296.
Joo DS and Lee EH. 1998. Searching of antimicrobial active compounds from microalgae. Kor Soc Life Sci 8, 173-180.
Jorian V. 1991. Antibiotics laboratory medicine, Williams & Wilkins, Baltimore. U.S.A., 17-105
Kim SK, Baek HC, Byun HG, Kang OJ and Kim JB. 2001. Biochemical composition and antioxidative activity of marine microalgae. J Kor Fish Soc 34,260-267.
Kim ML, Jeong JS, Lee MH and Lee GD. 2003. Effects of deep seawater and salt on the quality characteristics of breads. Kor J Food Pres 10, 326-332.
Kim SS, Lee CK, Kang SS, Jung HA and Choi JS. 1997. Chlorogenic acid, an antioxidant principle from the aerial parts of Artemisia iwayomogi that acts on DPPH radicak. Arch Pharm Res 20, 148-154.
Korea ocean reserch lab. 2000. feasibility study for the multipurpose development of deep ocean water resource. MOMAF Report UCM, 00903-2284.
Laurent D, Patrick G, Yaron A, Shoshana MA, Philippe B, Kotamballi NCM and Gokare AR. 2005. Microorganisms and microalgae as sources of pigments for food use: a scientific oddity or an industrial reality. Trends Food Sci Technol 16, 389-406.
Park EK, Seo MW and Lee CG. 2001. Effect of medium compositions for the growth and the astaxanthin production of Hamatococcus pluviatis. Kor J Appl Microbiol Biotechnol 29, 227-233.
Robles medina A, Molina grima E, Gimenez gimenez and Ibanez gonzalez MJ. 1998. Downstream processing of algal polyunsaturated fatty acids. Biotechnol Adv 16, 517-580.
Shimma Y, Tanaka H, Huruta Y, Shimma H and Ikeda K. 1984. Protein, carotenoid and mineral contents and fatty acids composition of the sessile algae from Chikuma river. Bull Jap Soc 50, 1223-1227.
Takahashi M. 2001. It knows and the deep sea water. Doseo publication, Science and technology 23, 35-37.
Watanabe T, Kitajima C and Jujita S. 1983. Nutrition value of live organisms used in Japan for mass propagation of fish: A review. Aquaculture 34, 115-143.
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