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초록
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본 연구에서는 병원 감염의 주요 원인균으로 생물막 관련 감염증에서 흔히 분리되고 있는 Citrobacter, Enterobacter 및 Serratia 등의 임상분리 장내세균 22주를 대상으로 생물막 형성능을 조사하고, 생물막의 세포외 바탕질의 구성 성분을 알아보기 위하여 Congo-red 한천배지상의 집락 형상과 calcofluor 염색을 시행하였다. 또한 curli 생성 오페론인 csgBA(C) 유전자의 유무 확인과 csgA 유전자의 염기서열을 규명하였다. $37^{\circ}C$에서 24시간 배양 후 생물막 형성능 분석에서는 2주의 S. marcescens를 제외한 나머지 20주는 모두 생물막 형성능이 있는 것으로, $28^{\circ}C$에서 48시간 배양 후 분석에서는 22주 모두 생물막 형성능이 있는 것으로 확인되었다. Congo-red 한천배지에서의 균집락 형상을 조사한 결과 균속에 따라서 균 집락의 표현형상이 다르게 나타났으며, 동일 균속내에서도 균 집락의 표현형상과 색 농도의 차이가 관찰되어 세포외 바탕질의 주요 성분 및 생성량의 차이가 있음을 시사하였다. 1주의 C. freundii와 4주의 E. cloacae에서 csgBA(C) 유전자 양성을 나타내었다. 염기서열 분석결과, E. cloacae의 csgA는 E. coli의 csgA와 80.9%, E. sakazakii의 csgA와 75.7%, 그리고 C. freundii의 csgA와 67.8%의 상동성이 있는 것으로 나타났다. E. cloacae의 경우 Congo-red 염색의 결과와 curli 유전자 검색 결과가 일치하였을 뿐만 아니라, csgA 유전자를 보유하지 않은 균주의 생물막 형성능이 csgA 유전자를 보유한 균주에 비해 현저하게 낮은 것으로 나타나, curli가 E. cloacae의 생물막 세포외 바탕질 구성성분의 주요 요소일 것으로 추정되었다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

In this study, 22 clinical isolates of Enterobacteriaceae including Citrobacterfreundii (6 strains), Enterobacter cloacae (5 strains), Enterobacter aerogenes (3 strains), Serratia marcescens (7 strains) and Pantoea spp. (1 strain) were investigated for the biofilm forming ability and biosynthesis of...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 본 연구에서는 병원 감염의 주요 원인균으로 생물막 관련 감염증에서 흔히 분리되고 있는 Citrobacter, Enterobacter 및 Serratia 등의 임상분리 장내세균 22주를 대상으로 생물막 형성능을 조사하고, 생물막의 세포외 바탕질의 구성 성분을 알아보기 위하여 Congo-red 한천배지상의 집락 형상과 calcofluor 염색을 시행하였다. 또한 curli 생성 오페론인 csgBA(C) 유전자의 유무 확인과 csgA 유전자의 염기서열을 규명하였다.
  • 상기의 균주들을 대상으로 curli 생성에 중요한 구조 단백질인 csgA 유전자의 보유 유무를 확인하기 위해서 csgA유전자의 보유 유무를 조사하였다. 22주 가운데 5주(C.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
생물막의 형성이 가진 의미는? 생물막의 형성은 세균이 자기 생식에 있어 불리한 환경에 놓일 경우 주위에 다당체를 생산하고 이것을 매개로 인접한 세균이 응집하고 한 덩어리가 되어 고체나 생체 표면에 세균이 막(film)을 형성하는 상태를 가리키며, 이때 만들어지는 다당체는 glycocalyx, mucoid, alginate, extracellular polymeric substance (EPS) 등으로 표현되어 왔다(2). 생물막의 형성과정은 세균이 고체의 표면에 부착(가역성 부착)함으로써 시작되는데, 세균과 고체표면 사이의 흡착이 지속되면 비가역성 부착으로 바뀜으로써 세포 외 중합체나 EPS가 생성하게 된다(20).
대장균이 만든 Curli은 어떤 방식으로 생물막 형성에 관여하나요? Curli는 1980년대 후반에 소의 유방염을 일으키는 대장균에서 최초로 발견되었는데, 대장균과 살모넬라속 균종에서 감염을 일으키는 과정에 관여하며 특히 curli는 표면 부착과 세포응집형성에 관여하고, 숙주세포와의 부착과 침입을 매개할 뿐만 아니라 염증반응에 중요한 자극인자로 작용하기도 한다. Curli는 세균의 생물막을 형성하는데 기여하는데, 대장균이 만드는 curli는 단백질이 세균 주변에 그물과 같은 구조를 만들어 생물막 형성을 가능하게 한다는 사실이 밝혀졌다(1). 대장균의 curli는 csgBA(C)와 csgDEFG 오페론의 작동으로 인해 생성되는데, 살모넬라균종에서도 csgBA(C)와 csgDEFG 오페론과 상동성이 매우 높은 agfBA(C) 및 agfDEFG 오페론의 작동으로 curli의 생성이 이루어진다(8, 17).
대장균과 살모넬라균 종에서 생물막 형성 인자인 Curli를 생성하는데 이때 작동하는 오페론은? Curli는 세균의 생물막을 형성하는데 기여하는데, 대장균이 만드는 curli는 단백질이 세균 주변에 그물과 같은 구조를 만들어 생물막 형성을 가능하게 한다는 사실이 밝혀졌다(1). 대장균의 curli는 csgBA(C)와 csgDEFG 오페론의 작동으로 인해 생성되는데, 살모넬라균종에서도 csgBA(C)와 csgDEFG 오페론과 상동성이 매우 높은 agfBA(C) 및 agfDEFG 오페론의 작동으로 curli의 생성이 이루어진다(8, 17). 최근에는 Citrobacter, Enterobacter, Klebsiella 속에 속하는 일부의 세균들도 이에 연관된 유전자를 지니고 있는 것이 확인되었다(26).
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참고문헌 (27)

  1. Chapman, M.R., L.S. Robinson, J.S. Pinkner, R. Roth, J. Heuser, M. Hammar, S. Normark, and S.J. Hultgren. 2002. Role of Escherichia coli curli operons in directing amyloid fiber formation. Science 295, 851-855. 

  2. Costerton, J.W., P.S. Stewart, and E.P. Greenberg. 1999. Bacterial biofilms: a common cause of persistent infections. Science 284, 1318-1322. 

  3. Crump, J.A. and P.J. Collignon. 2000. Intravascular catheterassociated infections. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 19, 1-8. 

  4. Donlan, R.M. 2000. Role of biofilms in antimicrobial resistance. ASAIO J. 46, 47-52. 

  5. Donlan, R.M. and J.W. Costerton 2002. Biofilms: survival mechanisms of clinically relevant microorganisms. Clin. Microbiol. Rev. 15, 167-193. 

  6. Dunne, W.M. Jr. 2002. Bacterial adhesion: seen any good biofilms lately? Clin. Microbiol. Rev. 15, 155-166. 

  7. El-Azizi, M., S. Rao, T. Kanchanapoom, and N. Khardori. 2005. In vitro activity of vancomycin, quinupristin/dalfopristin, and linezolid against intact and disrupted biofilms of staphylococci. Ann. Clin. Microbiol. Antimicrob. 4, 2. 

  8. Gerstel, U. and U. Romling. 2001. Oxygen tension and nutrient starvation are major signals that regulate agfD promoter activity and expression of the multicellular morphotype in Salmonella typhimurium. Environ. Microbiol. 3, 638-648. 

  9. Gerstel, U. and U. Romling. 2003. The csgD promoter, a control unit for biofilm formation in Salmonella typhimurium. Res. Microbiol. 154, 659-667. 

  10. Gilbert, P., J. Das, and I. Foley. 1997. Biofilm susceptibility to antimicrobials. Adv. Dent. Res. 11, 160-167. 

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  12. Larsen, T. and N.E. Fiehn. 1996. Resistance of Streptococcus sanguis biofilms to antimicrobial agents. APMIS 104, 280-284. 

  13. Mah, T.F. and G.A. O'Toole. 2001. Mechanisms of biofilm resistance to antimicrobial agents. Trends Microbiol. 9, 34-39. 

  14. Mittelman, M.W. 1999. Recovery and characterization of biofilm bacteria associated with medical devices. Methods Enzymol. 310, 534-551. 

  15. Norwood, D.E. and A. Gilmour. 2000. The growth and resistance to sodium hypochlorite of Listeria monocytogenes in a steadystate multispecies biofilm. J. Appl. Microbiol. 88, 512- 520. 

  16. Raad, I. 1998. Intravascular-catheter-related infections. Lancet 351, 893-898. 

  17. Romling, U., Z. Bian, M. Hammar, W.D. Sierralta, and S. Normark. 1998. Curli fibers are highly conserved between Salmonella typhimurium and Escherichia coli with respect to operon structure and regulation. J. Bacteriol. 180, 722-731. 

  18. Romling, U., M. Rohde, A. Olsen, S. Normark, and J. Reinkoster. 2000. AgfD, the checkpoint of multicellular and aggregative behaviour in Salmonella typhimurium regulates at least two independent pathways. Mol. Microbiol. 36, 10-23. 

  19. Romling, U. 2005. Characterization of the rdarmorphotype, a multicellular behaviour in Enterobacteriaceae. Cell. Mol. Life Sci. 62, 1234-1246. 

  20. Stoodley, P., K. Sauer, D.G. Davies, and J.W. Costerton. 2002. Biofilms as complex differentiated communities. Ann. Rev. Microbiol. 56, 187-209. 

  21. Trautner, B.W. and R.O. Darouiche. 2004. Role of biofilm in catheter-associated urinary tract infection. Am. J. Infect. Control 32, 177-183. 

  22. Uhlich, G.A., J.E. Keen, and R.O. Elder. 2001. Mutations in the csgD promoter associated with variations in curli expression in certain strains of Escherichia coli O157:H7. Appl. Environ. Microbiol. 67, 2367-2370. 

  23. van Houdt, R. and C.W. Michiels. 2005. Role of bacterial cell surface structures in Escherichia coli biofilm formation. Res. Microbiol. 156, 626-633. 

  24. Vinh, D.C. and J.M. Embil. 2005. Device-related infections: a review. J. Long Term Eff. Med. Implants 15, 467-488. 

  25. Zelver, N., M. Hamilton, B. Pitts, D. Goeres, D. Walker, P. Sturman, and J. Heersink. 1999. Measuring antimicrobial effects on biofilm bacteria: from laboratory to field. Methods Enzymol. 310, 608-628. 

  26. Zogaj, X., W. Bokranz, M. Nimtz, and U. Romling. 2003. Production of cellulose and curli fimbriae by members of the family Enterobacteriaceae isolated from the human gastrointestinal tract. Infect. Immunol. 71, 4151-4158. 

  27. Zogaj, X., M. Nimtz, M. Rohde, W. Bokranz, and U. Romling. 2001. The multicellular morphotypes of Salmonella typhimurium and Escherichia coli produce cellulose as the second component of the extracellular matrix. Mol. Microbiol. 39, 1452-1463. 

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