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Huh7.5 간암 세포주의 HCV 항원제시에 의한 HCV 특이 T 림프구의 활성에 관한 연구
The Activation of HCV-specific CD8 T Cells by HCV Peptide Pulsed Huh7.5 Cells 원문보기

Korean journal of microbiology = 미생물학회지, v.47 no.4, 2011년, pp.342 - 347  

조효선 (덕성여자대학교 약학대학 약학과)

초록
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인체의 바이러스 감염 방어기전에서 T 림프구는 중요한 역할을 한다. 하지만, 만성 C형 간염 바이러스의 일차적 복제장소인 간염 환자의 간에서 분리된 HCV 특이 T 림프구는 심각한 기능결핍을 보인다. 이러한 T 림프구 기능결핍의 이유로는 PD-1, CTLA-4면역억제 물질의 발현, 또는 간에서 특이적으로 유도되는 면역내성(immune tolerance)이 있으나, 간세포(hepatocytes)와 HCV 특이 T 림프구의 상호작용에 대해서는 명확하게 확립되어 있지 않다. 따라서 본 연구에서는 HLA(human leukocyte antigen) A2+ 간암세포주(human hepatoma cell line; huh7.5)가 항원제시(antigen presentation)를 통해 효과적으로 HCV 특이 T 림프구를 활성화시키며 간암세포주(huh7.5) 표면의 PD-L (program death ligand) 1 발현은 T림프구의 활성을 감소시켜 면역조절의 가능성이 있음을 시사하였다. 또한, HCV 특이 tetramer 반응은 T 림프구의 과도한 활성으로 자기사멸(apoptosis)의 경로에 있음을 caspase 3 활성으로 확인하였고, 역시 PD-L1의 발현이 T 림프구를 자기사멸(apoptosis)로부터 구제하여 caspase 3 활성이 감소하는 것을 확인하였다. 이는 PD-L1과 간성(liver) T 림프구 표면의 PD-1 결합이 T 림프구의 자기사멸을 막고, 또한 그 기능을 회복시켜 만성 C형 간염 치료에 응용될 수 있음을 시사한다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

T cells play a key role in viral infection. However, in patients with chronic hepatitis C virus (HCV) infection, HCV-specific T cells are dysfunctional and impaired in the liver, which is the primary site for HCV replication. There are multiple potential mechanisms for HCV-specific T cell dysfunctio...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 5 cells)와 HCV 특이 T 림프구와의 상호작용에 대한 연구가 가능하게 되었다(2). 따라서 본 연구에서는 간암세포주가 HCV항원을 표면에 발현, 항원제시세포로의 가능성을 확인함과 동시에 HCV 특이 T 림프구를 활성화 할 수 있는지, 그리고 간암세포주의 표면에 PD-L1을 발현시 HCV 특이 T 림프구의 활성화에 어떠한 영향이 있는지 살펴보고자 한다.
  • 5 line은 IFN발현과 밀접하게 관련있는 RIG-I 부위에 결함(point mutation)을 유도하여 세포배양액에 훨씬 높은 HCV 복제율을 유지할 수 있게 되었다(2, 11). 따라서 본 연구에서는 만성 C형 간염의 표적세포인 간세포의 항원제시(antigen presentation) 가능성을 인체 간암세포주(huh7.5 cells)와 C형 간염 회복환자에서 분리된 HCV특이 T 림프구를 이용하여 살펴보았다. 첫번째로, HCV NS3 1406 peptide를 간암세포주(huh7.
  • 본 연구에서는 HCV 특이성 T 림프구의 활성을 측정할 수 있는 또 다른 방법인 HCV 특이성 tetramer 반응을 살펴보았다. Tetramer 반응이란 특정 항원 펩타이드를 4개의 분자 (tetramer)로 구성하여 형광물질을 부착한 후 T 림프구와 반응시켜 특정항원을 인식하여 결합하는 특이 T 림프구을 유세포 분광기로 정량적으로 측정하는 것이다.

가설 설정

  • The expression of IFN-γ and TNF-α are measured by intracellular cytokine staining using flow cytometry. (B) HLA A2+ huh7.5 cells with or without PD-L1 expression are pulsed with HCV NS3 1406 peptide. Peripheral lymphocytes from HLA A2+ subjects are added and the expression of IFN-γ and TNF-α are measured in the same way.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
HCV의 표적세포인 간세포에 대한 연구는 어떤 어려움을 겪어왔는가? HCV의 표적세포인 간세포에 대한 연구는 오랜 기간 동안 많은 문제점으로 인해 어려움을 겪어왔다. 첫째, 인체 내 간세포를 직접 분리하여 실험적으로 배양하는 것이 거의 불가능하며, 둘째, RNA형 바이러스인 HCV에 대한 복제 시스템(replication system)을 확립하지 못했기 때문이었다(10). 하지만 최근 간세포에서 분화된 간암세포주(human hepatoma cells; huh cell line)를 간세포 모델로 도입하여 HCV 복제시스템을 실험적으로 구축함으로써 간암 세포주(human hepatoma 7.
C형 간염 바이러스는 인체 감염 시 어떻게 간염이나 간경화, 간암 등을 일으키는가? C형 간염 바이러스(hepatitis C virus, HCV)는 지놈길이 9.6 kb의 RNA바이러스로 인체에 감염시 간세포 표면에 발현 되는 CD81, SR-B1, claudin-1, occludin 등의 수용체를 통해 만성 간염 및 간경화와 간암을 일으키는 것으로 알려져 있다 (12). 항 HCV치료제로는 인테페론(interferon)-α, 리바비린 (ribavirin) 등이 알려져 있으나 바이러스의 strain마다 치료효과가 다양하며 항 HCV백신은 아직 개발되지 않았다(15).
T 림프구는 어디에 중요한 역할을 하는가? T 림프구는 바이러스에 감염된 세포 사멸이나 항바이러스 항체를 생성하는 데 중요한 역할을 한다. 그러나 C형 간염이만성적으로 진행된 환자의 혈액에는 HCV특이적 T 림프구가 거의 존재하지 않으며 있다 하더라도 그 기능이 결핍되어 있는 것으로 알려져 있다.
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참고문헌 (20)

  1. Bertolino, P., G.W. McCaughan, and D.G. Bowen. 2002. Role of primary intrahepatic T-cell activation in the 'liver tolerance effect'. Immunol. Cell. Biol. 80, 84-92. 

  2. Binder, M., G. Kochs, R. Bartenschlager, and V. Lohmann. 2007. Hepatitis C virus escape from the interferon regulatory factor 3 pathway by a passive and active evasion strategy. Hepatology 46, 1365-1374. 

  3. Chayama, K., C.N. Hayes, N. Hiraga, H. Abe, M. Tsuge, and M. Imamura. 2011. Animal model for study of human hepatitis viruses. J. Gastroenterol. Hepatol. 26, 13-18. 

  4. Freeman, G.J., A.J. Long, and Y. Iwai. 2000. Engagement of the PD-1 immunoinhibitory receptor by a novel B7 family member leads to negative regulation of lymphocyte activation. J. Exp. Med. 192, 1027-1034. 

  5. Freeman, G.J., E.J. Wherry, R. Ahmed, and A.H. Sharpe. 2006. Reinvigorating exhausted HIV-specific T cells via PD-1-PD-1 ligand blockade. J. Exp. Med. 203, 2223-2227. 

  6. Golden-Mason, L., B. Palmer, J. Klarquist, J.A. Mengshol, and N. Castelblanco. 2007. Upregulation of PD-1 expression on circulating and intrahepatic hepatitis C virus-specific CD8+ T cells associated with reversible immune dysfunction. J. Virol. 81, 9249-9258. 

  7. Greenwald, R.J., G.J. Freeman, and A.H. Sharpe. 2005. The B7 family revisited. Annu. Rev. Immunol. 23, 515-548. 

  8. Holz, L.E., A. Warren, D.G. Le Couteur, D.G. Bowen, and P. Bertolino. 2010. CD8+ T cell tolerance following antigen recognition on hepatocytes. J. Autoimmun. 34, 15-22. 

  9. Jo, J., U. Aichele, N. Kersting, R. Klein, P. Aichele, E. Bisse, A.K. Sewell, H.E. Blum, R. Bartenschlager, V. Lohmann, and R. Thimme. 2009. Analysis of CD8+ T-cell-mediated inhibition of hepatitis C virus replication using a novel immunological model. Gastroenterology 136, 1391-1401. 

  10. Jo, J., V. Lohmann, R. Bartenschlager, and R. Thimme. 2011. Experimental models to study the immunobiology of hepatitis C virus. J. Gen. Virol. 92, 477-493. 

  11. Keril, J.B., A.J. McKeating, and M.C. Rice, 2002. Highly permissive cell lines for subgenomic and genomic hepatitis C virus RNA replication. J. Virol. 76, 13001-13014. 

  12. Lauer, G.M. and B.D. Walker. 2001. Hepatitis C virus infection. New Engl. J. Med. 345, 41-52. 

  13. Nakamoto, N., D.E. Kaplan, J. Coleclough, Y. Li, M.E. Valiga, and K.M. Chang. 2008. Functional restoration of HCV-specific CD8 T cells by PD-1 blockade is defined by PD-1 expression and compartmentalization. Gastroenterology 134, 1927-1937. 

  14. Nakamoto, N., H. Cho, A. Shaked, K. Olthoff, M.E. Valiga, M. Kaminski, E. Gostick, D.A. Price, G.J. Freeman, E.J. Wherry, and K.M. Chang. 2009. Synergistic reversal of intrahepatic HCV-specific CD8 T cell exhaustion by combined PD-1/CTLA-4 blockade. PLoS Pathog. 5, e1000313. 

  15. Pagliaro, L., A. Craxi, C. Cammaa, F. Tine, V. di Marco, L. Iacono, and P. Almasio. 1994. Interferon-alpha for chronic hepatitis C: an analysis of pretreatment clinical predictors of response. Hepatology 19, 820-828. 

  16. Salomon, B. and J.A. Bluestone. 2001. Complexities of CD28/B7: CTLA-4 costimulatory pathways in autoimmunity and transplantation. Annu. Rev. Immunol. 19, 225-252. 

  17. Uebelhoer, L., J.H. Han, B. Callendret, G. Mateu, N.H. Shoukry, H.L. Hanson, C.M. Rice, C.M. Walker, and A. Grakoui. 2008. Stable cytotoxic T cell escape mutation in hepatitis C virus is linked to maintenance of viral fitness. PLoS Pathog. 4, e1000143. 

  18. Varela-Rohena, A., C. Carpenito, E.E. Perez, M. Richardson, R.V. Parry, M. Milone, J. Scholler, X. Hao, A. Mexas, R.G. Carroll, C.H. June, and J.L. Riley. 2008. Genetic engineering of T cells for adoptive immunotherapy. Immunol. Res. 42, 166-181. 

  19. Wherry, E.J. and R. Ahmed. 2004. Memory CD8 T-cell differentiation during viral infection. J. Virol. 8, 5535-5545. 

  20. Willberg, C., E. Barnes, and P. Klenerman. 2003. HCV immunology-death and the maiden T cell. Cell. Death Differ. 10, S39-47. 

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