최소 단어 이상 선택하여야 합니다.
최대 10 단어까지만 선택 가능합니다.
다음과 같은 기능을 한번의 로그인으로 사용 할 수 있습니다.
NTIS 바로가기생명과학회지 = Journal of life science, v.21 no.8 = no.136, 2011년, pp.1156 - 1162
양재혁 (한국마사회) , 임윤규 (제주대학교 수의과대학 및 수의과학연구소)
Equine coital exanthema caused by equine herpesvirus type 3 (EHV-3) is a venereal disease which seriously drops horse reproduction rates. Here, we isolated EHV-3 from infected horses and investigated their biological characteristics. Initial cytopathic effects such as rounding of cells were detected...
* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.
핵심어 | 질문 | 논문에서 추출한 답변 |
---|---|---|
Equine herpesvirus type 3이란 무엇인가? | Equine herpesvirus type 3 (EHV-3)는 말[馬]에서 생식기질병 중의 하나인 말구진(equine coital exanthema)을 유발하고 말산업에 치명적인 악영향을 끼치는 매우 중요한 병원체이다[19]. 말구진은 일반적으로 교배를 통한 생식기 접촉으로 전파되지만 말을 관리하는 과정 중의 접촉, 파리와 같은 곤충, 직장 검사용 장갑, 의료기구 등의 매개물 및 비말감염으로도 전염이 가능하고 수의사에 의해서도 전파된다[23]. | |
말과 동물에서 발견된 Herpesvirus는 종류별로 어떤 동물에 질병을 일으키는가? | Herpesvirus 무리에는 사람을 포함하여 동물에 중요한 질병을 일으키는 바이러스들이 다수 있고 말과동물[馬科動物]에서는 현재까지 총 9 종류가 확인되었다[7]. EHV-1에서 EHV-5 까지는 말에 질병을 유발하고, EHV-6, 7 및 8은 asinine herpesviruses (AHV) 1, 2 및 3라고도 명명하며 당나귀의 생식기 질환이나 비염 등의 문제를 일으킨다[15]. | |
말구진의 전파 요인에는 무엇이 있는가? | Equine herpesvirus type 3 (EHV-3)는 말[馬]에서 생식기질병 중의 하나인 말구진(equine coital exanthema)을 유발하고 말산업에 치명적인 악영향을 끼치는 매우 중요한 병원체이다[19]. 말구진은 일반적으로 교배를 통한 생식기 접촉으로 전파되지만 말을 관리하는 과정 중의 접촉, 파리와 같은 곤충, 직장 검사용 장갑, 의료기구 등의 매개물 및 비말감염으로도 전염이 가능하고 수의사에 의해서도 전파된다[23]. EHV-3는 생물학적 특성에 근거하여 herpes simplex virus처럼 Alphaherpesvirinae의 varicellovirus 속(屬)에 속하고, 동물의 신체 이외의 장소에서는 생존하기가 어렵다[23,24]. |
Borchers, K. and J. Slater. 1993. A nested PCR for the detection and differentiation of EHV-1 and EHV-4. J. Virol. Methods 45, 331-336.
Bryans, J. T. and G. P. Allen. 1973. In vitro and in vivo studies of equine coital exanthema, pp. 322-336, In Bryans, J. T. and H. Gerber (eds.), Equine Infectious Diseases III. S. Karger, New York.
Cho, G. J., B. H. Kim, D. S. Lee, M. Y. Oh, and M. H. Ko. 1995. Studies on characters and immunogenicity of equine herpesvirus isolated from Korean horses. Korean J. Vet. Res. 35, 743-752.
Colahan, P. T., A. M. Merritt, J. N. Moore, and I. G. Mayhew. 1999. Equine medicine and surgery. pp. 1071-1921, 5th eds., Mosby, Missouri.
Crandell, R. A. and E. R. Davis. 1985. Isolation of equine coital exanthema virus (equine herpesvirus 3) from the nostril of a foal. J. Am. Vet. Med. Assoc. 187, 503-504.
Fields, B. N., D. M. Knipe, R. M. Chanock, P. M. Howley, J. L. Melnick, T. P. Monath, B. Roizman, and S. E. Straus. 1995. Fundamental virology. pp. 1043-1107, 3rd eds., Lippincott-Raven, New York.
Fukushi, H., A. Tanaiguchi, K. Yasuda, T. Yanai, T. Masegi, T. Yamaguchi, and K. Hirai. 2000. A hamster model of equine herpesvirus 9 induced encephalitis. J. Neurovirol. 6, 314-319.
Girard, A., A. S. Greig, and D. Mitchell. 1968. Virus associated with vulvitis and balanitis in the horse-a preliminary report. Can. J. Comp. Med. 32, 603-604.
Hartley, C. A., H. E. Drummer, and M. J. Studdert. 1999. The nucleotide sequence of the glycoprotein G homologue of equine herpesvirus 3 (EHV3) indicates EHV3 is a distinct equid alphaherpesvirus. Arch. Virol. 144, 2023-2033.
Jacob, R. J. 1986. Molecular pathogenesis of equine coital exanthema: Temperature-sensitive function(s) in cells infected with equine herpesviruses. Vet. Microbiol. 11, 221-237.
Jacob, R. J. and M. R. Steiner. 1986. Molecular pathogenesis of equine coital exanthema (ECE): Identification and expression of infected cell polypeptides at the restricted temperature during equine herpesvirus 3 infection. Vet. Microbiol. 18, 363-371.
Kamada, M. and M. J. Studdert. 1983. Analysis of small and large plaque variants of equine herpesvirus type 3 by restriction endonucleases. Arch. Virol. 77, 259-264.
Kobluk, C. N., T. R. Ames, and R. J. Geor. 1995. The horse diseases & clinical management. pp. 557-985, 1st ed., Saunders, Philadelphia.
Laemmli, U. K. 1970. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature 15, 227, 680-685.
Ostlund, E. N. 1993. The equine herpesvirus. Vet. Clin. North Am. Equine Pract. 9, 283-294.
Pascoe, R. R., P. B. Spradbrow, and T. J. Bagust. 1969. An equine genital infection resembling coital exanthema associated with a virus. Aust. Vet. J. 45, 166-170.
Reed, S. M. and W. M. Bayly. 1998. Equine internal medicine. pp. 545-546, 1st ed. Saunders, Philadelphia.
Roizman, B., R. C. Desrosiers, B. Fleckenstein, C. Lopez, A. C. Minson, and M. J. Studdert. 1992. The family herpesviridae: an update. Arch. Virol. 123, 425-449.
Samper, J. C. 2009. Equine breeding management and artificial insemination. pp. 103-161, 2nd eds., Saunders, Missouri.
Seki, Y., T. M. Seimiya, G. Yaegashi, S. Kumagai, H. Sentsui, T. Nishimori, and R. Ishihara. 2004. Occurrence of equine coital exanthema in pastured Draft horses and isolation of equine herpesvirus 3 from progenital lesions. J. Vet. Med. Sci. 66, 1503-1508.
Spear, P. G. 1993. Entry of alphaherpesviruses into cells. Seminars Virol. 4, 167-180.
Studdert, M. J., T. Simpson, and B. Roizman. 1981. Differentiation of respiratory and abortigenic isolates of equine herpesvirus 1 by restriction endonucleases. Science 214, 562-564.
Studdert, M. J. 1996. Virus infections of equines. pp. 39-46, 1st ed., Elsevier, Amsterdam.
Sullivan, D. C., S. S. Atherton, J. Staczek, and D. J. O'Callaghan. 1984. Structure of the genome of equine herpesvirus type 3. Virology 132, 352-367.
*원문 PDF 파일 및 링크정보가 존재하지 않을 경우 KISTI DDS 시스템에서 제공하는 원문복사서비스를 사용할 수 있습니다.
출판사/학술단체 등이 한시적으로 특별한 프로모션 또는 일정기간 경과 후 접근을 허용하여, 출판사/학술단체 등의 사이트에서 이용 가능한 논문
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.