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NTIS 바로가기Journal of embryo transfer = 한국수정란이식학회지, v.27 no.1, 2012년, pp.57 - 62
윤윤진 (경남과학기술대학교 동물생명과학과) , 박경진 (경남과학기술대학교 동물생명과학과) , 박희성 (경남과학기술대학교 동물생명과학과)
Efficient oocyte activation is a key step for the success of nuclear transfer in cloning. Ionomycin sequentially combined with 6-DMAP is now widely used to activate normal oocytes for analytical studies of oocyte activation and to activate reconstructed oocytes after nuclear transfer. The present st...
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핵심어 | 질문 | 논문에서 추출한 답변 |
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세포질의 활성화를 유도하는 방법은 무엇이 있는가? | 또한 난자의 활성화 처리에 의한 단위 발생과 단위 발생란의 체외배양 기술은 수정과 초기수정란의 체외발달을 이해하는데 많은 기여를 해왔으며, 세포의 signaling의 일반적인 원리를 이해하는 데도 매우 유용하다(Lan 등, 2005). 세포질의 활성화를 유도하는 방법으로는 에탄올(Cuthbertson, 1981), strontium(Wakayama, 1998), calcium ionophore(Ware 등, 1989), ionomycin(Loi 등, 1998), cycloheximide(Presicce과 Yang, 1994) 등 화학적인 방법과 저온처리(Moor와 Crosby, 1985), 전기자극법(Tarkowski 등, 1970), 최근에는 초음파 자극(Sato 등, 2005) 방법이 시도되고 있다. 그러나 이들 방법들 중 단일 방법만으로 활성화를 유도하였을 때는 대부분의 활성화처리 난자는 활성화 처리 후 1개의 전핵형성과 제 2극체가 방출되기 때문에 배반포기로의 발달이 이루어지지 않는다(Wang 등, 1998). | |
재래 산양이 일시에 난자의 다량 확보가 불가능한 이유는 무엇인가? | 근년에 와서 산양을 이용한 연구의 필요성이 점차 확대되고 있는 실정이며, 이를 위해서는 무엇보다도 도축장 유래 난포란의 이용과 같은 난자의 대량 확보 방안이 시급히 마련되어야 할 것이다. 재래산양은 계절번식을 하는 특성을 갖고 있으면서 사육두수가 적고 소나 돼지처럼 도축체계가 확립되어 있지 못하여 일시에 난자의 다량 확보가 불가능한 실정이다(박 등, 2004). | |
세포질의 활성화를 유도하는 방법과 더불어 포유동물 난자의 활성화를 향상시킬 수 있는 방법은 무엇인가? | 그러나 이들 방법들 중 단일 방법만으로 활성화를 유도하였을 때는 대부분의 활성화처리 난자는 활성화 처리 후 1개의 전핵형성과 제 2극체가 방출되기 때문에 배반포기로의 발달이 이루어지지 않는다(Wang 등, 1998). 그러나 제 2극체의 방출을 억제하는 6-dimethylaminopurine(6-DMAP), cycloheximide(CHX) 및 cytochalasin B(CB) 등과 병행해서 사용하면 포유동물 난자의 활성화를 향상시킬 수 있다(Fukui 등, 1992). 에탄올+CHX(Presicce와 Yang, 1994), 에탄올+6-DMAP(Ledda 등, 1996), ionophore+6-DMAP(SuskoParrish 등, 1994), ionophore+ CHX(Jones 등, 1995) 및 Ionomycin+DMAP(Susko-Parrish 등, 1994) 등과 같이 병행사용 방법은 단위 발생과 배반포기로의 발달을 유도하는 매우 효과적인 방법이다. |
Baguisi A, Behboodi E, Melican DT, Pollock JS, Destrempes MM, Cammuso C, Williams JL, Nima SD, Porter CA, Midura P, Palacios MJ, Ayres SL, Denniston RS, Hayes ML, Ziomek CA, Meade HM, Godke RA, Gavin WG, Overstrom EW and Echelard Y. 1999. Production of goats by somatic cell nuclear transfer. Nat. Biotechnol. 17:456-461.
Cuthbertson KS, Whittingham DC and Cobbold PH. 1981. Free $Ca^{2+}$ increases in exponential phase during mouse oocyte activation. Nature 194:754-757.
Guo J, Liu F, Guo Z, Li Y, Zhixing AN and Li X. 2009. In vitro development of goat parthenogenetic and somatic cell nuclear transfer embryos derived from different activation protocols. Zygote 18:51-59.
Keefer CL, Baldassarre H, Keyston R, Wang B, Bhatia B, Bilodeau AS, Zhou JF, Leduc M, Downey BR, Lazaris A and Karatzas CN. 2001. Generation of dwarf goat (Capra hircus) clones following nuclear transfer with transferred and non-transferred fetal fibroblasts and in vitro-matured oocytes. Biol. Reprod. 64:849-856.
Fukui Y, Sawai K, Furudate M, Sato N, Iwazumi Y and Ohsaki K. 1992. Parthenogenetic development of bovine oocytes treated with ethanol and cytochalasin B after in vitro maturation. Mol. Reprod. Dev. 33:357-362.
Jones KT, Carroll J and Whittingham DG. 1995. Ionomycin, thapsigargin, ryanodine and sperm induced $Ca^{2+}$ release increase during meiotic maturation of mouse oocytes. J. Biol. Chem. 270:6671-6677.
Lan GC, Han D, Wu YG, Han ZB, M SF, Liu XY, Chang CL and Tan JH. 2005. Effects of duration, concentration, and timing of ionomycin and 6-dimethylaminopurine (6-DMAP) treatment on activation of goat oocytes. Mol. Reprod. Dev. 71:380-388.
Ledda S, Loi P, Bogliolo L, Moor RM and Fulka J. Jr. 1996. The effect of 6-dimethylaminopurine (6-DMAP) on DNA synthesis in activated mammalian oocytes. Zygote 4:7-9.
Liu J, Li LL, DU S, Bai XY, Zhang HD, Tang S, Zhao MT, Ma BH, Quan FS, Zhao XE and Zhang Y. 2011. Effects of interval between fusion and activation, cytochalasin B treatment, and number of transferred embryos, on cloning efficiency in goats. Theriogenology 76:1076-1083.
Loi P, Ledda S, Fulka J Jr, Cappai P and Moor RM. 1998. Development of parthenogenetic and cloned ovine embryos: Effect of activation protocols. Biol. Reprod. 58:1177-1187
Moor RM and Crosby IM. 1985. Temperature-induced abnormalities in sheep oocytes during maturation. Reprod. Fertil. 75:467-473.
Mori H, Mizobe Y, Inoue S, Uenohara A, Takeda M, Yoshida M and Miyoshi K. 2008. Effects of cycloheximide on parthenogenetic development of pig oocytes activated by ultrasound treatment. J. Reprod. Dev. 54:364-369.
Park HS, Jin JI, Hong SP, Lee JS and Jung JY. 2001. Effects of laser drilling on blastocyst hatching and pregnancy rates from in vitro produced cattle embryos. Theriogenology Abst. 55:352.
Park HS, Jung SY, Kim TS, Park JK, Moon TS, Hong SP, Jin JI, Lee JS, Lee JH, Sohn SH, Lee CY and Moon YS. 2007. Production of cloned Korean native goat (Capra hircus) by somatic cell nuclear transfer. Asian-Aust. J. Anim. Sci. 20:487-495.
Presicce GA and Yang X. 1994. Parthenogenetic development of bovine oocytes matured in vitro for 24 hr and activated by ethanol and cycloheximide. Mol. Reprod. Dev. 38:380-385.
Reggio BC, James AN, Green HL, Gavin WG, Behboodi E, Echelard Y and Godke RA. 2001. Cloned transgenic offspring resulting from somatic cell nuclear transfer in the goat: Oocytes derived from both follicle stimulating hormone- stimulated and non-stimulated abattoir derived ovaries. Biol. Reprod. 65:1528-1533.
Sato K, Yoshida M and Miyoshi K. 2005. Utility of ultrasound stimulation for activation of pig oocytes matured in vitro. Mol. Reprod. Dev. 72:396-403.
Susko-Parrish JL, Leibfriend-Rutledge ML, Northey DL, Schutzkus V and First NL. 1994. Inhibition of protein kinases after an induced calcium transient causes transition of bovine oocytes to embryonic cycles without meiotic completion. Dev. Biol. 166:729-739.
Tarkowski AK, Witkowska A and Nowicka J. 1970. Experimental parthenogenesis in the mouse. Nature 226:162-165.
Wakayama T, Perry AC, Zuccotti M, Johnson KR and Yanagimachi R. 1998. Full-term development of mice from enucleated oocytes injected with cumulus cell nuclei. Nature 394:369-374.
Wang WH, Mqchaty Z, Abeydeera LR, Prather RS and Day BN. 1998. Parthenogenetic activation of pig oocytes with calcium ionophore and the block to sperm penetration after activation. Biol. Reprod. 58:1357-1366.
Ware CB, Barnes FL, Maiki-Laurila M and First NL, 1989. Age dependence of bovine oocyte activation. Gamete Res. 22:265-275.
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