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자가숙성발효 후 흑마늘의 S-Allyl-L-cystein, Diallyl Disulfide 및 Total Amino Acids 분석
Determination of S-Allyl-L-cystein, Diallyl Disulfide, and Total Amino Acids of Black Garlic after Spontaneous Short-term Fermentation 원문보기

한국식품영양과학회지 = Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition, v.41 no.5, 2012년, pp.661 - 665  

김문수 (중앙대학교 식품공학과) ,  김민주 (중앙대학교 식품공학과) ,  방우석 (영남대학교 식품영양학과) ,  김근성 (중앙대학교 식품공학과) ,  박성수 (제주한라대학교 제주향토식품연구소)

초록
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남해산 생마늘 및 흑마늘의 일반성분 분석, 아미노산 함량 및 마늘의 주요 황 함유 생리활성물질인 수용성 $S$-allyl-L-cysteine(SAC) 및 지용성 diallyl-disulfide(DADS)의 함량을 분석하여 발효 전후 이들 성분에 대한 함량 변화를 비교하였다. 일반성분의 함량은 생마늘과 자가숙성발효마늘에서 큰 변화가 없었다. 흑마늘 내의 17종 아미노산중 13종 아미노산 함량이 증가하였다. 특히 함황아미노산인 cysteine 및 methionine의 함량(mg/100 g)이 각각 $295.25{\pm}5.08$에서 $381.86{\pm}14.86$로, $47.2{\pm}3.92$에서 $66.6{\pm}1.08$로 증가하였고, histidine의 함량(mg/100 g)은 $319.19{\pm}5.42$에서 $796.62{\pm}7.01$로 크게 증가하였다. SAC 및 DADS의 함량(${\mu}g/g$)은 $245.35{\pm}1.35$에서 $522.51{\pm}1.19$로, $0.275{\pm}0.015$에서 $8.710{\pm}0.45$로 각각 2배와 30배 이상으로 생마늘에 비하여 흑마늘 내의 함량이 매우 큰 폭으로 증가하였다. 이러한 현상은 자가숙성발효라는 제조과정에서 생마늘의 alliin이 1차적으로 효소와 기타 화학적 반응에 의해 allicin으로 전환된 후, allicin으로부터 다른 일련의 복합적인 화학반응에 의하여 많은 양의 SAC 및 DADS가 생성된 결과에 의하여 나타났다고 할 수 있다. 또한 자가숙성 발효 과정 중 이러한 SAC 및 DADS 등과 같은 마늘 내 함황화합물들의 지표물질 생성 확인은 인체에 유익한 생리활성을 보유한 많은 종류의 다른 함황화합물들이 동시에 흑마늘 내에서 생성되었음을 암시한다. 그러나 흑마늘의 제조과정은 85~95%의 습도, $60{\sim}70^{\circ}C$에서 40여일 정도 장기간의 숙성이 필요하다. 이러한 숙성과정은 특정 미생물 또는 효소를 이용하여 단축할 필요가 있다. 또한 SAC 및 DADS 등과 같이 생리활성이 높은 함황 화합물들의 함량을 증가시킬 수 있는 새로운 가공법에 대한 연구가 필요하다.

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Garlic (Allium sativum L.) is one of the oldest cultivated plants and has been used throughout the world as a food supplement and a folk medicine for thousands of years. Raw garlic has been processed into a variety of commercial garlic products for consumer convenience. The latest new processing tec...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 본 연구에서는 최근 개발된 흑마늘의 대표적 유효 생리활성 성분인 함황화합물들(SAC, DADS)의 함량, amino acids의 함량, 그리고 일반성분의 함량 변화 정도를 발효전의 생마늘과 비교 측정하여 마늘을 이용한 건강기능식품을 개발하는데 필요한 기초 자료를 확보하고자 하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
마늘의 원산지는? 마늘(Allium sativum L.)은 백합과에 속하는 대표적인 Allum속 식물로서 지금은 파과(Alliaceae)로 분류되는 다년생 식물이며, 원산지는 중앙아시아나 지중해 연안지역으로 우리나라에는 중국을 거쳐 전래된 것으로 추정된다. 중국 본초강목에는 대산(大蒜) 또는 호산(胡蒜)이라 하였으며, 삼국유사에서 일연스님은 산(蒜)이라 적고 있고, 조선시대 초기 훈몽자회에 의해 산(蒜)을 마늘의 한자로 표기하게 되었다.
중국 본초강목에서 마늘을 부르는 이름은? )은 백합과에 속하는 대표적인 Allum속 식물로서 지금은 파과(Alliaceae)로 분류되는 다년생 식물이며, 원산지는 중앙아시아나 지중해 연안지역으로 우리나라에는 중국을 거쳐 전래된 것으로 추정된다. 중국 본초강목에는 대산(大蒜) 또는 호산(胡蒜)이라 하였으며, 삼국유사에서 일연스님은 산(蒜)이라 적고 있고, 조선시대 초기 훈몽자회에 의해 산(蒜)을 마늘의 한자로 표기하게 되었다. 품종은 생태형에 따라 난지계와 한지계로 분류하고 있다.
마늘 품종인 난지계와 한지계의 국내 주산지는 어디인가? 품종은 생태형에 따라 난지계와 한지계로 분류하고 있다. 난지계는 제주, 남해, 해남, 무안 등이 주산지이며, 한지계는 의성, 서산, 삼척 등이 주산지이다. 오랜 재배역사와 더불어 식용 및 의약품으로 널리 이용되어 왔으며 아시아 지역 및 이집트, 로마에 이르기까지 광범위하게 각종 신체질환의 예방과 치료에 효과적이라고 알려져 왔다(1).
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참고문헌 (14)

  1. Block E. 1992. The chemistry of garlic and onions. Sci Am 252: 114-119. 

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  3. Lancaster JE, Shaw ML. 1989. $\gamma$ -Glutamyl peptides in the biosynthesis of S-alk(en)yl-L-cysteine sulfoxides (flavor precursors) in allium. Phytochemistry 28: 455-460. 

  4. Yu TH, Wu CM. 1989. Stability of allicin in garlic juice. J Food Sci 54: 977-981. 

  5. Melino S, Sabelli R, Paci M. 2011. Allyl sulfur compounds and cellular detoxification system: effects and perspectives in cancer therapy. Amino Acids 41: 103-112. 

  6. Lawson LD. 1998. Garlic; a review of its medicinal effects and indicated active compounds. In Phytomedicines of Europe; Chemistry and Biological Activity. American Chemical Society, Washington, DC, USA. Vol 691, p 176-209. 

  7. Jang EK, Seo JH, Lee SP. 2008. Physiological activity and antioxidantive effects of aged black garlic extract. Korea J Food Sci 40: 443-448. 

  8. Block E, Naganathan S, Putman D, Zhao ST. 1992. Allium chemistry: HPLC analysis of thiosulfinates from onion, garlic, wild garlic (Ramsoms), leek, scallion, shallot, elephant (great headed) garlic, chive, and Chinese chive. Uniguely high allyl to methyl ratios in some garlic samples. J Agric Food Chem 40: 2418-2430. 

  9. Block E. 1992. The organosulfur chemistry of the genus allium-implications for the organic chemistry of sulfur. Angew Chem Int Ed Engl 31: 1135-1178. 

  10. Rosen RT, Hiserodt RD, Fukuda EK, Ruiz RJ, Zhou Z, Lech J, Rosen SL, Hartman TG. 2001. Determination of allcin, S-allylcysteine and volatile metabolites of garlic in breath, plasma or simulated gastric fluids. J Nutr 131: 968S-971S. 

  11. Mutsch-Eckner M, Sticher O, Meier B. 1992. Reversed phase high performance liquid chromatography of S-alk(en)yl-L-cysteine derivatives in Allium sativum including the determination of (+)-S-allyl-L-cystene sulfoxid, r-L-glutamyl-S-allyl-L-cysteine and r-L-glutamyl-S-(trans-1-propenyl)-L-cyteine. J Chromatogr 625: 183-190. 

  12. Sato E, Kohno M, Hamano H, Niwano Y. 2006. Increased antioxidative potency of garlic by spontaneous short term fermentation. Plant Foods Hum Nutr 61: 157-160. 

  13. Wan X, Polyakova Y, Row KH. 2007. Determination of diallyl disulfide in garlic by reversed-phase high performance liquid chromatography. Anal Sci Technol 20: 442-447. 

  14. Iberl B, Winkler G, Knobloch K. 1990. Products of allicin transformation; ajoenes and dithiins, characterization and their determination by HPLC. Planta Med 56: 202-211. 

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