[국내논문]Alloxan에 의한 HIT-T15 세포의 산화적 손상에 대한 매실(Prunus mume Sieb. et Zucc.) 주정추출물의 세포보호효과 Cytoprotective Effect of Ethanol Extract from Maesil (Prunus mume Sieb. et Zucc.) on Alloxan-induced Oxidative Damage in Pancreatic-cell, HIT-T15원문보기
본 연구는 췌장베타세포인 HIT-T15 세포를 이용하여 매실주정추출물(PME)의 alloxan에 의한 산화스트레스로부터의 세포보호, 인슐린 분비능 및 항산화 효소 활성을 평가하였다. PME는 alloxan에 의해 유발된 산화스트레스로부터 세포를 보호하여 세포생존율을 증가시켰다. PME는 세포막 손상지표인 LDH 방출을 억제하였고 $NAD^+$/NADH ratio를 유의적으로 증가시켜 세포사멸이 억제되어짐을 확인하였다. 또한 alloxan 단독처리군에 비해 250 ${\mu}g$/ml PME 처리군에서 인슐린 분비량이 유의성 있게 증가하였다. Alloxan과 PME를 동시에 처리하여 HIT-T15세포의 항산화효소 활성을 측정했을 때 산화스트레스에 의해 감소되었던 항산화효소 활성이 PME에 의해 보호되는 효과를 확인하였다. 이상의 연구결과로부터 PME는 세포괴사 및 DNA fragmentation을 억제하고 세포내 항산화효소 활성을 증가시켜 alloxan에 의해 유발된 산화스트레스로부터 췌장베타세포를 보호하고 이에 따른 인슐린 분비능 조절 효과가 있는 것으로 생각된다.
본 연구는 췌장베타세포인 HIT-T15 세포를 이용하여 매실주정추출물(PME)의 alloxan에 의한 산화스트레스로부터의 세포보호, 인슐린 분비능 및 항산화 효소 활성을 평가하였다. PME는 alloxan에 의해 유발된 산화스트레스로부터 세포를 보호하여 세포생존율을 증가시켰다. PME는 세포막 손상지표인 LDH 방출을 억제하였고 $NAD^+$/NADH ratio를 유의적으로 증가시켜 세포사멸이 억제되어짐을 확인하였다. 또한 alloxan 단독처리군에 비해 250 ${\mu}g$/ml PME 처리군에서 인슐린 분비량이 유의성 있게 증가하였다. Alloxan과 PME를 동시에 처리하여 HIT-T15세포의 항산화효소 활성을 측정했을 때 산화스트레스에 의해 감소되었던 항산화효소 활성이 PME에 의해 보호되는 효과를 확인하였다. 이상의 연구결과로부터 PME는 세포괴사 및 DNA fragmentation을 억제하고 세포내 항산화효소 활성을 증가시켜 alloxan에 의해 유발된 산화스트레스로부터 췌장베타세포를 보호하고 이에 따른 인슐린 분비능 조절 효과가 있는 것으로 생각된다.
The present study was designed to examine the potential antidiabetic and antioxidant effect of ethanol extract from $Prunus$$mume$ fruit (PME) against alloxan-induced oxidative stress in pancreatic ${\beta}$-cells, HIT-T15. To evaluate the antidiabetic effect of PME...
The present study was designed to examine the potential antidiabetic and antioxidant effect of ethanol extract from $Prunus$$mume$ fruit (PME) against alloxan-induced oxidative stress in pancreatic ${\beta}$-cells, HIT-T15. To evaluate the antidiabetic effect of PME, 3-(4,5-dimethylthiazolyl-2)-2,5-diphenyltetrazoliu bromide (MTT) cell proliferation assay, lactate dehydrogenase (LDH) release assay, $NAD^+$/NADH ratio and insulin secretion were assessed. We also measured its antioxidant effect against alloxan-induced oxidative stress in the cells by assessing the levels of the antioxidant enzymes including superoxide dismutase (SOD), glutathione S-transferase (GST), glutathione reductase (GR) and glutathione peroxidase (GPx). The results of this analysis showed that alloxan significantly decreased cell viability, increased LDH leakage, and lowered $NAD^+$ /NADH ratio and insulin secretion in HIT-T15 cells. However, PME significantly increased the viability of alloxan-treated cells and lowered LDH leakage. The intracellular $NAD^+$ /NADH ratio and insulin secretion were also increased by 1.5~1.9-fold and 1.4-fold, respectively, after treatment with the PME. The HIT-T15 cells treated with alloxan showed significant decreases in the activities of antioxidant enzymes, while PME significantly elevated the levels of antioxidant enzymes. Based on these results, we suggest that PME could have a protective effect against the cytotoxicity and dysfunction of pancreatic ${\beta}$-cells in the presence of alloxan-induced oxidative stress.
The present study was designed to examine the potential antidiabetic and antioxidant effect of ethanol extract from $Prunus$$mume$ fruit (PME) against alloxan-induced oxidative stress in pancreatic ${\beta}$-cells, HIT-T15. To evaluate the antidiabetic effect of PME, 3-(4,5-dimethylthiazolyl-2)-2,5-diphenyltetrazoliu bromide (MTT) cell proliferation assay, lactate dehydrogenase (LDH) release assay, $NAD^+$/NADH ratio and insulin secretion were assessed. We also measured its antioxidant effect against alloxan-induced oxidative stress in the cells by assessing the levels of the antioxidant enzymes including superoxide dismutase (SOD), glutathione S-transferase (GST), glutathione reductase (GR) and glutathione peroxidase (GPx). The results of this analysis showed that alloxan significantly decreased cell viability, increased LDH leakage, and lowered $NAD^+$ /NADH ratio and insulin secretion in HIT-T15 cells. However, PME significantly increased the viability of alloxan-treated cells and lowered LDH leakage. The intracellular $NAD^+$ /NADH ratio and insulin secretion were also increased by 1.5~1.9-fold and 1.4-fold, respectively, after treatment with the PME. The HIT-T15 cells treated with alloxan showed significant decreases in the activities of antioxidant enzymes, while PME significantly elevated the levels of antioxidant enzymes. Based on these results, we suggest that PME could have a protective effect against the cytotoxicity and dysfunction of pancreatic ${\beta}$-cells in the presence of alloxan-induced oxidative stress.
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문제 정의
따라서 본 연구에서는 매실주정추출물(Prunus mume extract, PME)의 항산화 효과를 통해 췌장베타세포의 세포보호, 손상 억제 및 인슐린 분비능을 검증함으로써 산화 스트레스로부터 췌장베타세포를 보호하여 당뇨병 조절에 도움이 되는 기능성 식품 소재 개발을 위한 가능성을 규명하고자 하였다.
5). 본 연구에서는 배지 자체에 들어있는 포도당의 효과를 최소화하고 시료에 의한 효과를 단독으로 보고자 11 mM 포도당 처리군, 포도당이 들어있는 않는 대조군 및 포도당이 들어있는 않는 배지에 시료를 포함한 세포처리군으로 실험하였다. 선행연구에서 포도당 유/무에 따른 HIT-T15 세포생장률을 확인한 결과, 48시간 배양 후 세포생장이 유의적으로 감소함에 따라 다음 실험 조건을 시료 처리 농도 100~500 ㎍/ml 농도에서 24시간 배양으로 설정하였다(data not shown).
본 연구는 췌장베타세포인 HIT-T15 세포를 이용하여 매실주정추출물(PME)의 alloxan에 의한 산화스트레스로부터의 세포보호, 인슐린 분비능 및 항산화 효소 활성을 평가하였다. PME는 alloxan에 의해 유발된 산화스트레스로부터 세포를 보호하여 세포생존율을 증가시켰다.
제안 방법
분말 시료 10 g에 80% 주정 400 ml을 첨가하여 상온에서 24시간 동안 3회 반복 추출하였다. 추출물은 여과지(Whatman No. 2)가 깔려 있는 Buchner funnel을 통과시켜 감압 여과하였다. 80% 주정 추출물은 50℃ 수온의 rotary vacuum evaporator로 감압 농축한 후 동결 건조하였다.
HIT-T15 세포를 96 well plate에 1 × 105/well가 되도록 분주하여 24시간 동안 37℃, 5% CO2 incubator에서 배양한 후, 배지를 제거하고 free-glucose RPMI- 1640 배지로 교환하였다. PME의 세포독성을 알아보기 위하여, PME를 각각 100, 250, 500 및 1,000 ㎍/ml의 농도로 세포에 첨가하여 24시간 동안 배양하였다. 배양 종료 후, 각 well 마다 5 mg/ml MTT를 20 ㎕씩 가한 후 4시간 동안 배양하였다.
incubator에서 배양한 후, 배지를 제거하고 free-glucose RPMI-1640 배지로 교환하였다. 여기에 각 well 당 1 mM alloxan과 100, 250 및 500 ㎍/ml의 PME를 각각 세포에 처리한 후 1시간 동안 배양하였다. 배양 종료 후 alloxan이 들어있는 배지를 제거하고 새로운 free-glucose RPMI-1640 배지에 시료를 농도 별로 처리하여 23시간 동안 배양하였다.
배양 종료 후 alloxan이 들어있는 배지를 제거하고 새로운 free-glucose RPMI-1640 배지에 시료를 농도 별로 처리하여 23시간 동안 배양하였다. 배양 종료 후, 세포로부터 방출된 LDH는 LDH cytotoxicity detection kit(Takara Bio Inc., Otsu, Shiga, Japan)를 사용하여 측정하였다.
배양종료 후 cold -PBS로 세포를 세척한 후 2,000 rpm, 5분간 원심분리하여 세포를 수거하였다. 세포 내 NAD+/NADH ratio는 NAD+/NADH Quantification kit(Biovision, Mountain View, USA)를 사용하여 측정하였다.
배양 종료 후 alloxan이 들어있는 배지를 제거하고 새로운 free-glucose RPMI-1640 배지에 시료를 농도 별로 처리하여 23시간 동안 배양하였다. 배양 종료 후, cell culture supernatant를 수거하여 Mouse Insulin kit(Shibayagi, Shibukawa, Japan)으로 측정하였다.
배양 종료 후 alloxan이 들어있는 배지를 제거하고 새로운 free-glucose RPMI-1640 배지에 시료를 농도 별로 처리하여 23시간 동안 배양하였다. 배양 종료 후, 세포를 수거하여 항산화효소 키트 제조회사(Cayman chemical Co., Ann Arbor, USA)의 설명서에 따라 superoxide dismutase(SOD), glutathione S-transferase(GST), glutathione reductase(GR) 및 glutathione peroxidase(GPx) 활성을 측정하였다. 각 항산화효소 활성은 ㎍당 단백질로 계산하였으며 단백질 정량은 Bradford에 의한 방법으로 Bio-Rad protein assay 시약(Bio-Rad Laboratories, Inc.
PME가 HIT-T15 세포의 증식에 미치는 효과를 알아보기 위해 100~1,000 ㎍/ml의 농도로 처리하여 세포생장률을 조사하였으며 대조군에 대한 비율로 나타내었다(Fig. 1). 24시간 배양 후, 포도당이 들어있는 않는 대조군의 세포생장은 11 mM 포도당 함유 처리군에 비해 약 21.
본 연구에서는 배지 자체에 들어있는 포도당의 효과를 최소화하고 시료에 의한 효과를 단독으로 보고자 11 mM 포도당 처리군, 포도당이 들어있는 않는 대조군 및 포도당이 들어있는 않는 배지에 시료를 포함한 세포처리군으로 실험하였다. 선행연구에서 포도당 유/무에 따른 HIT-T15 세포생장률을 확인한 결과, 48시간 배양 후 세포생장이 유의적으로 감소함에 따라 다음 실험 조건을 시료 처리 농도 100~500 ㎍/ml 농도에서 24시간 배양으로 설정하였다(data not shown).
췌장베타세포를 선택적으로 파괴하는 alloxan과 PME를 동시에 처리하여 PME에 의한 HIT-T15 세포보호효과를 MTT assay에 의해 확인하였다(Fig. 2). 포도당이 들어있는 않는 대조군을 100%로 보았을 때, 11 mM 포도당 함유 처리군은 31% 정도 유의적으로 세포생존이 증가된 반면, alloxan 처리 시에는 세포생존이 78.
PME가 alloxan으로 손상된 HIT-T15 세포의 인슐린 분비능에 미치는 영향을 확인하였다(Fig. 5). 11 mM의 포도당이 들어있는 세포(43.
PME의 췌장베타세포에 대한 항산화효소 활성을 측정하기 위하여 SOD, GST, GR 및 GPx 활성을 분석하였다(Table 1). Alloxan을 단독 처리한 HIT-T15 세포의 SOD 활성은 포도당이 들어있지 않는 세포에 비해 62.
또한 alloxan 단독처리군에 비해 250 ㎍/ml PME 처리군에서 인슐린 분비량이 유의성 있게 증가하였다. Alloxan과 PME를 동시에 처리하여 HIT-T15세포의 항산화효소 활성을 측정했을 때 산화스트레스에 의해 감소되었던 항산화효소 활성이 PME에 의해 보호되는 효과를 확인하였다. 이상의 연구결과로부터 PME는 세포괴사 및 DNA fragmentation을 억제하고 세포내 항산화효소 활성을 증가시켜 alloxan에 의해 유발된 산화스트레스로부터 췌장베타세포를 보호하고 이에 따른 인슐린 분비능 조절 효과가 있는 것으로 생각된다.
대상 데이터
본 실험의 세포배양에서 사용된 시약은 GIBCO사(Gaithersburg, MD, USA)의 제품을 사용하였다. 실험방법 중 특별한 언급이 없는 모든 시약은 Sigma-Aldrich사(St.
본 실험의 세포배양에서 사용된 시약은 GIBCO사(Gaithersburg, MD, USA)의 제품을 사용하였다. 실험방법 중 특별한 언급이 없는 모든 시약은 Sigma-Aldrich사(St. Louis, MO, USA)의 제품을 사용하였다.
매실은 2009년에 수확된 국내산으로 경기도 수원 시중에서 구입하였다. 씨를 제거한 매실 과육 약 100 g을 동결건조한 후 분말화하였다.
80% 주정 추출물은 50℃ 수온의 rotary vacuum evaporator로 감압 농축한 후 동결 건조하였다. 추출물은 dimethyl sulphoxide(DMSO)에 용해시킨 후 배지에 필요한 농도로 희석하여 실험에 사용하였다. 세포배양에 처리된 DMSO의 최종농도는 0.
본 연구에서는 햄스터 췌장베타세포주인 HIT-T15 세포를 한국세포주은행으로부터 분양받아 사용하였다. HIT-T15 세포는 10% fetal bovine serum(FBS) 및 100 U/ml penicillin, 100 ng/ml streptomycin을 첨가한 RPMI-1640(11.
데이터처리
모든 실험 결과는 평균(mean) ± 표준오차(standard error, SE)로 표시하였다.
각 군 간의 통계적 유의성 검증은 일원분산분석(one-way analysis of variance, ANOVA)을 실시하였고 p＜0.05 유의수준에서 사후 검정으로 Duncan’s multiple range test(DMRT)로 분석하였다.
Data are representative of three independent experiments as mean ± SE. Statistical evaluation was done by ANOVA followed by DMRT. Values not sharing a common superscript letter differ significantly at p < 0.
이론/모형
세포생존율은 MTT(3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)- 2,5-diphenyltetrazolium bromide) colorimetric assay로 측정하였다. HIT-T15 세포를 96 well plate에 1 × 105/well가 되도록 분주하여 24시간 동안 37℃, 5% CO2 incubator에서 배양한 후, 배지를 제거하고 free-glucose RPMI- 1640 배지로 교환하였다.
배양 종료 후 alloxan이 들어있는 배지를 제거하고 새로운 free-glucose RPMI-1640 배지에 시료를 농도 별로 처리하여 23시간 동안 배양하였다. 배양종료 후, 세포생존율은 MTT colorimetric assay에 의해 측정하였다.
, Ann Arbor, USA)의 설명서에 따라 superoxide dismutase(SOD), glutathione S-transferase(GST), glutathione reductase(GR) 및 glutathione peroxidase(GPx) 활성을 측정하였다. 각 항산화효소 활성은 ㎍당 단백질로 계산하였으며 단백질 정량은 Bradford에 의한 방법으로 Bio-Rad protein assay 시약(Bio-Rad Laboratories, Inc., USA)을 이용하여 측정하였다.
성능/효과
반면, 250 ㎍/ml 이상의 농도로 PME를 처리했을 때, 포도당이 들어있는 않는 대조군에 비해 세포생장이 17.5~21.2% 가량 유의적으로 증가하였다(PME100, 112.8 ± 6.1; PME250, 117.5 ± 5.4; PME500, 121.2 ± 4.5).
24시간 배양 후, 포도당이 들어있는 않는 대조군의 세포생장은 11 mM 포도당 함유 처리군에 비해 약 21.9% 감소하였다(11 mM glucose, 121.9 ± 1.1; glucose-free, 100.0 ± 3.7).
4%). 즉, 본 실험에서 사용한 시료는 씨를 제거한 신선한 매실 100 g으로부터 6.54 g의 PME가 얻어졌으며 최종적인 수율은 6.54%로 나타났다.
포도당이 들어있는 않는 대조군을 100%로 보았을 때, 11 mM 포도당 함유 처리군은 31% 정도 유의적으로 세포생존이 증가된 반면, alloxan 처리 시에는 세포생존이 78.6% 가량 유의적으로 감소하였다(11 mM glucose, 131.0 ± 1.2; glucose-free, 100.0 ± 6.3; AXN, 21.4 ± 1.9).
그러나 PME를 alloxan 과 동시 처리했을 때, alloxan 단독 처리군에 비해 세포생장률이 약 4.2~6.0배 정도 유의적으로 증가하였다(PME100, 89.1 ± 4.2; PME250, 99.7 ± 5.3; PME500, 128.9 ± 8.2).
흡수된 alloxan은 베타세포의 혈당센서(glucose sensor)인 glucokinase를 억제하여 인슐린 분비를 억제시키고 활성산소종을 발생시켜 베타세포 사멸을 유도한다(Lenzen, 2008). 따라서, 본 연구에서는 PME가 HIT-T15 세포에서 alloxan에 의해 발생하는 활성산소종을 조절함으로써 강력한 산화스트레스로부터 HIT-T15 세포를 보호한 것으로 사료된다.
3과 같다. 포도당이 들어있는 않는 대조군에 비해 alloxan을 단독 처리한 HIT-T15 세포는 42.8% 정도 유의적으로 LDH 방출량이 증가함을 확인하였다. 그러나 alloxan과 함께 PME 100, 250 및 500 ㎍/ml을 처리한 결과, LDH 방출량이 alloxan 단독 처리군에 비해 각각 30.
8% 정도 유의적으로 LDH 방출량이 증가함을 확인하였다. 그러나 alloxan과 함께 PME 100, 250 및 500 ㎍/ml을 처리한 결과, LDH 방출량이 alloxan 단독 처리군에 비해 각각 30.5, 29.2 및 22.4% 가량 유의적으로 감소함을 보였다. 세포가 손상을 받으면 세포막 파열로 인해 LDH 방출이 증가하며 이 때 발생하는 세포사멸은 주로 세포괴사(necrosis)에 따른 것으로 보고되고 있다(De La Pea et al.
, 2007). 따라서 본 실험의 결과에서 alloxan 처리 시 발생하는 LDH 함량의 증가는 HIT-T15 세포괴사가 증가하여 세포사멸을 유도하는 것을 확인하였다. 그러나 PME 처리에 의해 LDH 방출량이 감소하고 있음을 확인함에 따라 PME가 alloxan으로 유발된 췌장베타세포 손상을 보호함으로써 세포사멸을 억제하는 것으로 사료된다.
Alloxan을 단독 처리한 HIT-T15 세포의 NAD+/NADH ratio는 3.17 ± 0.17로 포도당이 들어있는 않는 대조군(5.69 ± 0.21)의 44.3% 정도 수준으로 유의적으로 감소한 반면, PME를 첨가한 세포는 NAD+/NADH ratio가 유의적으로 증가함을 확인하였다(PME100, 5.53 ± 0.69; PME250, 5.93 ± 0.38; PME500, 4.89 ± 0.63).
11 mM의 포도당이 들어있는 세포(43.6 ± 1.5 ng/ml)에 비해 포도당이 들어있지 않는 세포의 인슐린 분비능은 31.1 ± 1.0 ng/ml 및 alloxan 단독 처리 세포는 15.8 ± 1.3 ng/ml로 각각 유의적으로 감소함을 확인하였다.
, 1999). 본 실험에서도 alloxan 처리에 따른 NAD+/NADH ratio가 유의적으로 감소함을 확인하였다. 그러나 PME를 처리한 세포의 NAD+/NADH ratio가 유의적으로 증가한 것으로 보아 PME가 alloxan에 의한 활성산소종 생성을 효과적으로 억제함으로써 췌장베타세포의 손상을 억제하여 NAD+/NADH ratio가 증가한 것으로 보인다.
본 실험에서도 alloxan 처리에 따른 NAD+/NADH ratio가 유의적으로 감소함을 확인하였다. 그러나 PME를 처리한 세포의 NAD+/NADH ratio가 유의적으로 증가한 것으로 보아 PME가 alloxan에 의한 활성산소종 생성을 효과적으로 억제함으로써 췌장베타세포의 손상을 억제하여 NAD+/NADH ratio가 증가한 것으로 보인다.
, 2000). Alloxan에 의해 손상이 유도된 HIT-T15 세포의 인슐린 분비능은 예상대로 유의적으로 감소함을 확인할 수 있었다. 반면, 250 ㎍/ml의 PME를 처리한 세포에서 인슐린 분비능이 유의적으로 증가함에 따라, 적절한 농도의 PME가 산화스트레스로부터 세포를 보호하고 이에 따라 베타세포질량이 증가함에 따라 인슐린 분비가 증가되었다고 생각된다.
반면, 250 ㎍/ml의 PME를 처리한 세포에서 인슐린 분비능이 유의적으로 증가함에 따라, 적절한 농도의 PME가 산화스트레스로부터 세포를 보호하고 이에 따라 베타세포질량이 증가함에 따라 인슐린 분비가 증가되었다고 생각된다. 본 연구에서는 고농도의 PME를 처리한 세포에서 세포보호효과는 확인했음에도 불구하고 예상과는 다르게 인슐린 분비가 감소하는 결과가 나타났다. Jung et al(2010)은 이러한 연구결과에 대하여 베타세포의 산화적 손상을 방어하기 위해 유효농도 이상으로 항산화제를 처리하는 경우, 높은 삼투압과 활성산소종이 발생하여 인슐린 분비를 오히려 감소시킨다고 보고하였다.
PME의 췌장베타세포에 대한 항산화효소 활성을 측정하기 위하여 SOD, GST, GR 및 GPx 활성을 분석하였다(Table 1). Alloxan을 단독 처리한 HIT-T15 세포의 SOD 활성은 포도당이 들어있지 않는 세포에 비해 62.5% 유의적으로 감소한 반면, PME를 처리한 모든 세포의 SOD 활성이 alloxan 단독 처리군에 비해 2.3~3.3배 정도 유의적으로 증가하였다. 또한 HIT-T15 세포의 GPx 활성은 alloxan 단독 처리 시 포도당이 들어있지 않는 조건에 비해 67.
3배 정도 유의적으로 증가하였다. 또한 HIT-T15 세포의 GPx 활성은 alloxan 단독 처리 시 포도당이 들어있지 않는 조건에 비해 67.8% 유의적으로 감소하였으나 PME 처리에 따라 3.6~5.7배 정도 유의적으로 증가하였다. Alloxan을 단독 처리한 세포의 GST와 GR 활성은 포도당이 들어있지 않는 세포에 비해 다소 감소하는 경향을 보였으나 PME의 처리농도가 증가할수록 유의적으로 GST와 GR 활성이 증가함을 확인하였다.
7배 정도 유의적으로 증가하였다. Alloxan을 단독 처리한 세포의 GST와 GR 활성은 포도당이 들어있지 않는 세포에 비해 다소 감소하는 경향을 보였으나 PME의 처리농도가 증가할수록 유의적으로 GST와 GR 활성이 증가함을 확인하였다. SOD는 활성산소종 중 특히 superoxide anion radical(O2･-)을 과산화수소(H2O2)로 전환시키는 대표적인 항산화 효소 중 하나이며(Yun et al.
PME는 alloxan에 의해 유발된 산화스트레스로부터 세포를 보호하여 세포생존율을 증가시켰다. PME는 세포막 손상지표인 LDH 방출을 억제하였고 NAD+/NADH ratio를 유의적으로 증가시켜 세포사멸이 억제되어짐을 확인하였다. 또한 alloxan 단독처리군에 비해 250 ㎍/ml PME 처리군에서 인슐린 분비량이 유의성 있게 증가하였다.
Alloxan과 PME를 동시에 처리하여 HIT-T15세포의 항산화효소 활성을 측정했을 때 산화스트레스에 의해 감소되었던 항산화효소 활성이 PME에 의해 보호되는 효과를 확인하였다. 이상의 연구결과로부터 PME는 세포괴사 및 DNA fragmentation을 억제하고 세포내 항산화효소 활성을 증가시켜 alloxan에 의해 유발된 산화스트레스로부터 췌장베타세포를 보호하고 이에 따른 인슐린 분비능 조절 효과가 있는 것으로 생각된다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
우리나라의 급격한 경제성장은 무엇을 초래했는가?
우리나라의 급격한 경제성장은 생활양식의 변화와 식습관의 서구화를 초래하였으며 이로 인해 암 및 비만 등의 대사증후군 등의 발병률이 급증하고 있다. 특히 현대인들의 식습관과 관련된 만성질환 중 하나인 당뇨병 유병률은 우리나라의 경우, 1970년대 2%에 불과하였으나 1990년대 초부터 10%에 육박하고 있다(Park and Baik, 2009).
매실의 원산지는 어디로 알려져 있는가?
매실은 장미과(Rosaceae)에 속하는 매화나무(Prunus mume Sieb. Et Zucc)의 열매로 원산지는 중국 사천성과 호북성의 산간지로 알려져 있다. 한국, 일본 및 중국 등지에서 널리 분포하고 있으며 예로부터 장아찌, 주류 및 차 등의 식품이나 약재로 이용되었다.
매실은 한방에서 어떤 효과가 있어 널리 사용되었는가?
한국, 일본 및 중국 등지에서 널리 분포하고 있으며 예로부터 장아찌, 주류 및 차 등의 식품이나 약재로 이용되었다. 한방에서는 식욕증진, 피로회복, 간기능 향상, 소화불량 및 구충 등의 효과가 있어 널리 사용되었다(Seo et al., 2008).
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