$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

MC1R 유전자의 유전자형과 칡소의 모색 발현 및 비경색 분포에 관한 연구
MC1R Genotypes, Coat Color, and Muzzle Phenotype Variation in Korean Native Brindle Cattle 원문보기

한국동물자원과학회지 = Journal of animal science and technology, v.54 no.4, 2012년, pp.255 - 265  

박재희 (전라북도축산위생연구소 축산시험장) ,  이해이 (전라북도축산위생연구소 축산시험장) ,  김용수 (전라북도축산위생연구소 축산시험장) ,  김종국 (전북대학교 동물자원과학과)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

본 연구는 PCR-RFLP 기법으로 칡소의 모색 발현에 관련된 MC1R 유전자형을 분석하고, 칡소 유전자형에 따른 모색 발현 양상을 가계와 교배조합을 통하여 연구함으로써 칡소에서 호반모의 발현 비율을 증가시키는 번식 체계를 확립하고자 수행하였다. 전라북도축산위생연구소에서 사육중인 칡소 중에서 부계 또는 모계를 알고 있는 가계가 형성된 칡소로부터 혈액 또는 정자에서 genomic DNA를 추출한 후 MC1R 유전자를 증폭하였다. 증폭된 PCR product를 Msp I 제한효소로 절단하고 전기영동한 후 칡소 개체별 유전자형을 확인하였고, 이 외에도 칡소의 모색 양상과 비경의 흑색침착 정도에 따른 모색 발현 비율을 조사하여 다음과 같은 결론을 얻었다. 칡소의 모색 발현 양상은 전신호반모가 61.67%로 가장 높았고 흑모는 5.00%로 가장 낮았으며 황모는 16.67%, 부분(약반신)과 부분(일부) 호반모는 각각 8.33%로 같은 분포 양상을 보였다. 칡소의 비경 침착 양상은 3단계와 4단계가 비슷한 비율로 높았고, 다음이 2단계, 5단계, 1단계의 순이었다. 칡소의 비경에 따른 모색 발현 양상은 비경 침착이 3단계와 4단계인 칡소에서는 전신 호반모의 비율이 다른 모색 보다 높았고, 비경 침착이 1단계인 칡소는 그 중에서 황모가 80.00% (4/5)로 나타났으며, 비경 침착이 5단계인 칡소에서는 다른 단계에서 발현되지 않았던 흑모의 비율이 37.50%를 나타냈다. 칡소에는 $E^+E^+$, $E^+e$, ee 유전자형과 한우에는 ee, $E^+e$ 유전자형이 존재하였다. 칡소 MC1R 유전자형은 $E^+e$이 65.00%로 가장 높았고 $E^+E^+$은 33.33%이었고 ee도 1두로 1.67%이었다. 유전자형에 따른 모색 발현 양상을 보면, $E^+E^+$$E^+e$에서는 전신 호반모의 비율이 가장 높게 나타났고 ee는 황모를 나타냈다. 칡소의 가계 분석을 통한 모색 발현 양상을 조사한 결과, 부(Sire)의 유전자형이 $E^+e$ 이고 모(Dam)의 유전자형이 $E^+E^+$ 이면서 부모의 모색이 모두 전신호반모일 경우 자손의 모색은 100.00% 전신호반모였고, 부(Sire)의 유전자형이 $E^+E^+$ 이고 모(Dam)의 유전자형이 $E^+e$이면서 부모의 모색이 모두 전신호반모일 경우도 자손에서 모색의 44.44%가 호반모의 비율을 보여 두 가지의 교배조합의 경우가 자손의 전신호반모 비율을 높이는 최적의 교배 조합으로 보여진다. 이 연구의 결과를 이용하여 칡소로 판정받을 수 있는 가장 중요한 요소인 호반모의 발현비율을 증가시키는 번식 체계를 칡소 사육농가에 제시할 수 있을 것으로 사료된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

The objectives of this study were to investigate MC1R genotype, coat color, and muzzle phenotype variationsin the Korean native brindle cattle (KNBC) maintaining family lines and to establish the mating system for increased brindle coat color appearance. KNBC with genotype and phenotype records were...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • e 가 존재하는 지는 보고하지 않았다. 더욱이 이 논문에서 MC1R 유전자를 Bfu AI 제한효소로 절단하는 PCR-RFLP 기법으로 칡소를 한우, 흑우, 앵거스로부터 구분하는 방법을 보고하였다. 그러나, 이 논문에서 보고된 칡소 MC1R 염기서열의 Bfu AI 제한 효소 절단부위의 SNP는(GenBank accession no.
  • 본 연구는 PCR-RFLP 기법으로 칡소의 모색 발현에 관련된 MC1R 유전자형을 분석하고, 칡소 유전자형에 따른 모색 발현 양상을 가계와 교배조합을 통하여 연구함으로써 칡소에서 호반모의 발현 비율을 증가시키는 번식 체계를 확립하고자 수행하였다. 전라북도축산위생연구소에서 사육중인 칡소 중에서 부계 또는 모계를 알고 있는 가계가 형성된 칡소로부터 혈액 또는 정자에서 genomic DNA를 추출한 후 MC1R 유전자를 증폭하였다.
  • 따라서 공시동물들의 숫자를 늘려서 MC1R 유전자형에 따른 모색의 발현에 대한 연구의 수행하는 것과 가계가 형성된 공시동물들을 이용하여 MC1R의 유전양상을 조사하는 것이 필요한 상황이다. 본 연구는 PCR-RFLP기법으로 칡소의 모색 발현에 관련된 MC1R 유전자형을 분석하여 호반모의 발현 비율과 그 유전양상을 밝히기 위하여 수행되었다. 또한 가계가 형성된 칡소들을 바탕으로MC1R 유전자의 가계내의 유전 양상을 분석함으로써 호반모의 발현 비율을 높이는 번식 체계를 확립하고자 하였으며, 비경의 흑색 침착 정도에 따른 호반모 발현 빈도와 유전자형도 조사하였다.
  • Extension 좌위에 위치한 MC1R은 모색과 관련된 표현형을 조절하는 몇 가지 중요한 유전자들 중의 하나이다 (Hearing 등, 1991; Robbins 등, 1993; Mountjoy 등, 1992). 본 연구에서는 가계가 형성된 칡소를 공시동물로 이용하여 MC1R의 유전자형에 따른 모색의 발현과 변이를 조사하였다.
  • 본 연구에서는 공시된 칡소 총 60두 중, 칡소 가계의 MC1R 유전자형과 모색 발현 양상에 따라 생산된 24두의 자손들 분석하여 MC1R 유전자형을 고려한 교배조합이 모색에 미치는 영향을 조사하였다(Table 5). 자손에서 전신호반모의 발현이 가장 높게 (100%, 4/4) 나온 교배조합은 부(Sire)의 MC1R 유전자형이 E +e이고 모(Dam)의 MC1R 유전자형이E +E+ 이면서, 부모 모두 전 신호반모를 가지고 있는 교배조합 2로 자손에서의 전신호반모 발현에 적합한 조합이었다.

가설 설정

  • d: F = female and M = male.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
멜라닌 색소의 발현은 어떤 작용에 의해 조절되는가? 현재까지 밝혀진 포유 동물 모색에 관련된 유전자들은 소의 8번 염색체의 Brown 좌위에 위치하여 eumelanin의 합성에 관여하는 tyrosinase related protein 1 (TYRP1) (Berryers 등, 2003)과 소의18번 염색체의 Extension 좌위에 위치하여 두 가지 멜라닌 색소인 phaeomelanin (붉은색 또는 황색)과 eumelanin (검정색 또는 갈색)의 발현에 중요한 역할을 하는 호르몬 수용체인 MC1R (Klungland 등, 1995; Cone 등, 1996; Vage 등, 1999; Chung 등, 2000; Berryers 등, 2003; Do 등, 2007; Seo 등, 2007; Lee 등, 2009), 그리고 13번 염색체의 Agouti 좌위에 위치한 Agouti signaling protein (ASIP) (Barsh, 1996) 등이 있다. ASIP 유전자와 MC1R의 길항 작용에 의해 멜라닌 색소의 발현이 조절된다 (Barsh, 1996). 흑모에서는 MC1R이 tyrosinase와 eumelanin의 합성에 관여하여 검정색을 발현하게 하며, 적모에서는 ASIP이 MC1R과 melanocyte stimulating hormone (MSH)의 결합을 방해함으로서 tyrosinase가 감소하여 붉은색을 발현한다.
국내에서 진행된 축종들을 대상으로 모색의 변이에 관한 연구의 현황은 어떠한가? 모색에 관련된 유전자들의 정보가 밝혀짐에 따라 PCR-RFLP 분석 방법을 이용하여 소(Klungland 등, 1995; Chung 등, 2000; Lee 등, 2000; Lee 등, 2002; Kim 등, 2004; Koh 등, 2005; Lee 등, 2009), 말(Marklund 등, 1996), 돼지(Kijas 등, 1998; Cho 등, 2002) 및 면양(Vage 등, 1999) 등의 축종들을 대상으로 모색의 변이에 관한 연구가 진행되어 왔다. 국내의 경우 restriction fragment length polymorphism (RFLP) 기법을 이용한 품종별 모색 변이 연구(Chung 등, 2000; Lee 등 2009)가 많이 이루어졌으며, MC1R 유전자형을 한우육의 판별 등에도 이용하고 있다. MC1R 유전자의 PCR-RFLP 연구 결과를 보면, MC1R 유전자에서 99번째 아미노산의 코돈인 CTG (leucine) [대립유전자 E + , e]가 CCG (proline) [대립유전자 E D]로 치환되는 것은 제한효소 MspA1I으로 구분이 가능하고, 104번째 아미노산 코돈인 GGT (Glycine) [대립유전자 E +]의 G 염기가 deletion [대립유전자 e]되어 frameshift가 일어나는 것은 제한효소 MspI 으로 구분이 가능하다.
현재까지 밝혀진 포유 동물 모색에 관련된 유전자들은 어디에 위치하는가? 현재까지 밝혀진 포유 동물 모색에 관련된 유전자들은 소의 8번 염색체의 Brown 좌위에 위치하여 eumelanin의 합성에 관여하는 tyrosinase related protein 1 (TYRP1) (Berryers 등, 2003)과 소의18번 염색체의 Extension 좌위에 위치하여 두 가지 멜라닌 색소인 phaeomelanin (붉은색 또는 황색)과 eumelanin (검정색 또는 갈색)의 발현에 중요한 역할을 하는 호르몬 수용체인 MC1R (Klungland 등, 1995; Cone 등, 1996; Vage 등, 1999; Chung 등, 2000; Berryers 등, 2003; Do 등, 2007; Seo 등, 2007; Lee 등, 2009), 그리고 13번 염색체의 Agouti 좌위에 위치한 Agouti signaling protein (ASIP) (Barsh, 1996) 등이 있다. ASIP 유전자와 MC1R의 길항 작용에 의해 멜라닌 색소의 발현이 조절된다 (Barsh, 1996).
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (34)

  1. Barsh, G. S. 1996. The genetics of pigmentation: from fancy genes to complex traits. Trends Genet. 12(8):299-305. 

  2. Berryers, T. G., Schmutz, S. M., Schimpf, R. J., Cowan, C. M. and Potter, J. 2003. TYRP1 is associated with dun coat colour in Dexter Cattle or how now brown cow? Anim. Genet. 34:169-175. 

  3. Charlier, C., Denys, B., Belanche, J. I., Coppieters, W., Grobet, L., Mni, M., Womack, J., Hanset, R. and Georges, M. 1996. Microsatellite mapping of the bovine roan locus - a major determinant of White Heifer disease. Mamm. Genome 7(2):138-142. 

  4. Cho, I. C., Lee J. G., Jung, J. K., Yang, B. S., Kang, S. Y. and Kim, B. W. 2002. Studies on the MC1R gene frequencies in Landrace, Large White, Duroc and Jeju native Black pigs. J. Anim. Sci. & Technol. 44(2):207-212 (in Korean). 

  5. Chung, E. R., Kim, W. T., Kim, Y. S. and Han, S. K. 2000. Identification of Hanwoo meat using PCR-RFLP marker of MC1R gene associated with bovine coat color. J. Anim. Sci. & Technol. 42(4):379-390 (in Korean). 

  6. Cone, R. D., Lu, D., Koppula, S., Vage, D. I., Klungland, K., Boston, B., Chen, W., Orth, D. N., Pouton, C. and Kesterson, R. A. 1996. The Melanocortin receptors : agonists, antagonists, and the hormonal control of pigmentation. Recent. Prog. Horm. Res. 51:287-317. 

  7. Do, K. T., Shin, H. Y., Lee, J. H., Kim, N. S., Park, E. W., Yoon, D. H. and Kim, K. S. 2007. Investigation of coat color candidate genes in Korean cattle (Hanwoo). J. Anim. Sci. & Technol. 49(6):711-718 (in Korean). 

  8. Han, S. H., Cho, I. C., Kim, J. H., Ko, M. S., Kim, Y. H., Kim, E. Y., Park, S. P. and Lee, S. S. 2011. Coat color patterns and genotypes of extension and agouti in Hanwoo and Jeju black cattle. J. Life Sci. 21(4):494-501. 

  9. Hearing, V. J. and Tsukanmoto, K. 1991. Enzymatic control of pigmentation in mammals. FASEB J. 5(14):2902-2909. 

  10. Jin, S., Shim, J. M., Seo, D. W., Jung, W. Y., Ryoo, S. H., Kim, J. H. and Lee, J. H. 2011. Analysis of MC1R genotypes in three different colored Korean cattle (Hanwoo). CNU J. Agri. Sci. 38(3):453-458 (in Korean). 

  11. Kerns JA, Cargill EJ, Clark LA, Candille SI, Berryere TG, Olivier M, Lust G, Todhunter RJ, Schmutz SM, Murphy KE, and Barsh GS. 2007, Linkage and segregation analysis of black and brindle coat color in domestic dogs. Genetics. 176(3):1679-89. 

  12. Kijas, J. M. H., Wales, R., Tomsten, A., Chardon, P., Moller, M. and Andersson, L. 1998. Melanocortin receptor 1 (MC1R) mutations and coat color in pigs. Genetics 150:1177-1185. 

  13. Kim, T. H., Yoon, D. H., Park, E. W., Lee, H. Y., Oh, S. J., Cheong, I. C., Thak, T. Y., Kim, K. N. and Han, J. Y. 2000. A study on genotype frequencies of the bovine melanocortin receptor 1 (MC1R) in cattle breeds. J. Anim. Sci. & Technol. 42(6):735-744 (in Korean). 

  14. Klungland, H., Vage, D. I., Gomez-Raya, L., Adalsteinsson, S. and Lien, S. 1995. The role of melanocyte-stimulating hormone (MSH) receptor in bovine coat color determination. Mamm. Genome 6:636-639. 

  15. Koh, B. R. D., Kim, Y. H., Park, S. D., Na, H. M., Kim, J. N., Sung, C. M. and Lee, S. S. 2005. Identification of MC1R gene variants of Hanwoo and Holstein meat using PCR-RFLP. Korean J. Vet. Serv. 28(3):259-265 (in Korean). 

  16. Korea animal improvement association. 2008. Hanwoo standard notice (notice number 2008-2) 

  17. Lee, H. J., Kim S. H., Lee, K. T. and Yoon, J. T. 2011. Coat color expression of Korean native brindle cattle after embryo transfer. Proceedings of the 11th international symposium on developmental biotechnology-Korean Soc. Anim. Reprod. p52 (abstr.). 

  18. Lee, S. M., Lee, W. W., Lee, G. R. and Lee, D. S. 2008. Differentiation of Hanwoo and other breeds of cattle using PCR-RFLP and allele-specific PCR. The annual report of Busan Metropolitan City Institute of Health & Environment 19(1):88-93 (in Korean). 

  19. Lee, S. S., Yang, Y. H., Kang, S. Y., Oh, W. Y., Yang, B. S., Ko, S. B., Oh, S. J. and Kim, K. I. 2000. Comparison of the genotypes and frequencies of MSH receptor (MC1R) gene in Korean cattle, Cheju native Black cattle, Japanese Black and Japanese Brown cattle. J. Anim. Sci. & Technol. 42(3):253-260 (in Korean). 

  20. Lee, S. S., Yang, B. S., Yang, Y. H., Kang, S. Y., Ko, S. B., Jung, J. K., Oh, W. Y., Oh, S. J. and Kim, K. I. 2002. Analysis of melanocortin receptor 1 (MC1R) genotype in Korean brindle cattle and Korean cattle with dark muzzle. J. Anim. Sci. & Technol. 44(1):23-30 (in Korean). 

  21. Marklund, L., Johansson, M., Sandberg, K. and Andersson, L. 1996. A missense mutation in the gene for melanocyte-stimulating hormone receptor (MCIR) is associated with the chesnut coat color in horses. Mamm. Genome 7:895-899. 

  22. Mohanty, T. R., Seo, K. S., Park, K. M., Choi, T. J., Choe, H. S., Baik, D. H. and Hwang I. H. 2008. Molecular variation in pigmentation Genes contributing to coat colour in native Korean Hanwoo cattle. Anim. Genet. 39:550-553. 

  23. Mountjoy, K. G., Robbins, L. S., Mortrud, M. T. and Cone, R. D. 1992. The cloning of a family of genes that encoded the melanocortin receptors. Science 257:1248-1251. 

  24. Na, G. J. 2008. Characteristics of Korean native cattle. Korea Animal Improvement Association bulletin. 2008(1):42-52. 

  25. Park, Y. S., Hwang, H. S., Yoo, J. W. and Kim, N. W. 2007. Characteristics of semen and coat color distribution of offsprings produced by AI in Korean native striped cattle (Bos namadicus Falconer, Chikso). Reprod. Dev. Biol. 31(1):43-48 (in Korean). 

  26. Park, Y. S. and Choi, S. H. 2011. Analysis of genetic relatedness and coat color appearance of Korean native brindle cattle in Kyungbuk area. Proceedings of the 11th international symposium on developmental biotechnology-Korean Soc. Anim. Reprod. p85 (abstr.). 

  27. Reinsch, N., Thomsen, H., Xu, N., Brink, M., Looft, C., Kalm, E., Brockmann, G. A., Grupe, S., Kuhn, C., Schwerin, M., Leyhe, B., Hiendleder, S., Erhardt, G., Medjuqorac, I., Russ, I., Forster, M., Reents, R. and Averdunk, G. 1999. A QTL for the degree of spotting in cattle shows synteny with the KIT locus on chromosome 6. J. Hered. 90(6):629-634. 

  28. Robbins, L. S., Nadeau, J. H., Johnson, K. R., Kelly, M. A., Roselli- Rehfuss, L., Baack, E., Mountjoy, K. G. and Cone, R. D. 1993. Pigmentation phenotypes of variant extension locus alleles results from point mutations that alter MSH receptor function. Cell 72(6):827-834. 

  29. Rouzaud, F., Martin, J., Gallet, P. F., Delourme, D., Goulemot-Leger, V., Amigues, Y., Menissier, F., Leveziel, H., Julien, R. and Oulmouden, A. 2000. A first genotyping assay of French cattle breeds based on a new allele of the extension gene encoding the melanocortin-1 receptor (MC1R). Genet. Sel. Evol. 32(5):511-520. 

  30. Sasazaki, S., Usui, M., Mannen, H., Hiura, C. and Tsuji, S. 2005. Allele frequencies of the extension locus encoding the melanocortin 1 receptor in Japanese and Korean cattle. Anim. Sci. J. 76(2):129-132. 

  31. Schmutz, S. M., Berryere, T. G., Ciobanu, D. C., Mileham, A. J., Schmidtz, B. H. and Fredholm, M. 2004. A form of albinism in cattle is caused by a tyrosinase frameshift mutation. Mamm. Genome 15(1):62-67. 

  32. Seitz, J. J., Schmutz, S. M., Thue, T. D. and Buchanan, F. C. 1999. A missense mutation in the bovine MGF Gene is associated with the roan phenotype in Belgian Blue and Shorthorn cattle. Mamm. Genome 10(7):710-712. 

  33. Seo, K. S., Mohanty, T. R., Choi, T. and Hwang, I. H. 2007. Biology of epidermal and hair pigmentation in cattle: a minireview. Vet. Dermatol. 18:392-400. 

  34. Vage, D. I., Klungland, H., Lu, D. and Cone, R. D. 1999. Molecular and pharmacological characterization of dominant black coat color in sheep. Mamm. Genome 10:39-43. 

저자의 다른 논문 :

LOADING...

관련 콘텐츠

오픈액세스(OA) 유형

BRONZE

출판사/학술단체 등이 한시적으로 특별한 프로모션 또는 일정기간 경과 후 접근을 허용하여, 출판사/학술단체 등의 사이트에서 이용 가능한 논문

저작권 관리 안내
섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로