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[국내논문] 겨울우산버섯의 원형질체 분리와 유전자 형질전환
Protoplast Isolation and Genetic Transformation of Polyporus brumalis 원문보기

Korean journal of microbiology = 미생물학회지, v.50 no.4, 2014년, pp.372 - 375  

유선화 (국립산림과학원 임산공학부 화학미생물과) ,  김명길 (국립산림과학원 임산공학부 화학미생물과)

초록
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본 연구에서는 백색부후균인 겨울우산버섯의 원형질체 분리 조건과 유전자 형질전환 방법을 확립하였다. 겨울우산버섯 균사에 세포벽 분해효소로 0.5% Usukizyme을 처리하여 ml당 $1{\times}10^7/ml$개의 원형질체를 확보할 수 있었다. 형질전환체의 선별을 위해 hygromycin에 대한 저항성을 갖는 유전자(hph)를 선택표지로 이용하여 형질전환용 벡터(pHYgpt)를 제작하였다. 40% polyethylene glycol 용액과 aurintricarboxylic acid와 heparin, supermidine을 첨가하여 형질전환을 수행 한 결과 벡터 $1{\mu}g$ 당 100-160개의 수율로 형질전환체를 얻었다. 도입된 벡터는 hph 유전자의 PCR 증폭을 통해 형질전환체의 염색체내에 삽입되었음을 확인하였다. 이러한 결과는 polyporus 속의 유전자를 활용한 새로운 균주 개발에 유용한 기술이 될 것이다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

This experiment was undertaken to investigate proper conditions for protoplast isolation and genetic transformation of the white rot fungi, Polyporus brumalis. The protoplasts were formed from mycelia at a frequency of $1{\times}10^7/ml$ with 0.5% Usukizyme. The transformation vector (pHY...

Keyword

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문제 정의

  • 그러나 Polyporus 속의 형질전환에 대한 연구는 보고 된 바가 없으며 먹물버섯과 같은 다른 균류에서 확립된 형질전환법은 겨울우산버섯에 시도하였으나 낮은 원형질체 생성율과 항생제에 대한 민감성 차이로 겨울우산버섯에는 적합하지 않았다. 본 연구에서는 겨울우산버섯의 균사에서 원형질체를 분리하는 조건과 특정 유전자를 도입할 수 있는 형질전환 방법을 확립하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
겨울우산버섯은 무엇입니까? 겨울우산버섯(Polyporus brumalis)은 국내에 자생하는 백색부후균으로서 대표적인 내분비계 장애물질로 분류되어 있는 다이부틸프탈레이트(DBP)와 같은 난분해성 물질을 분해 할 수 있는 능력이 있으며 다양한 독성물질이 존재하는 환경에서 균사생장이 가능하여 복합적인 환경에 적합한 균주로 보고 되었다(Lee et al., 2007).
백색부후균이 분비하는, 리그닌 분해효소의 특징은? , 1993; Hatakka, 1994). 리그닌 분해효소는 기질특이성이 낮기 때문에 리그닌 외에 염료나 내분비계 장애물질 등 난분해성 유해화합물을 분해할 수 있으며, 분해과정이 세포외에서 이루어지기 때문에 고농도의 독성화합물과 불용성화합물의 분해도 가능하다(Pasti-Grigsby et al., 1992; Barr and Aust, 1994; Pointing, 2001; Shin et al.
백색부후균이 나무를 부후시키는 방법은? 백색부후균(White Rot Fungi, WRF)은 laccase와 lignin peroxidase (LiP) 그리고 manganese peroxidase (MnP)와 같은 효소를 세포 외로 분비하여 견고한 구조의 리그닌을 분해하면서 나무를 부후시킨다(Becker et al., 1993; Hatakka, 1994).
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참고문헌 (17)

  1. Barr, D.P. and Aust, S.D. 1994. Mechanisms white rot fungi use to degrade pollutants. Environ. Sci. Technol. 28, 78-87. 

  2. Becker, H.G. and Sinitsyn, A.P. 1993. Mn-peroxidase from Pleurotus ostreatus: the action on the lignin. Biotechnol. Lett. 15, 289-294. 

  3. Dickman, M.B. 1988. Whole cell transformation of the alfalfa fungal pathogen Colletorichum trifolii. Curr. Genet. 14, 241-246. 

  4. Hallick, R.B., Chelm, B.K., Gray, P.W., and Orozco, E.M. Jr. 1977. Use of aurintricarboxylic acid as an inhibitor of nucleases during nucleic acid isolation. Nucleic Acids Res. 4, 3055-3064. 

  5. Hatakka, A. 1994. Lignin-modifying enzymes from selected white-rot fungi: production and role in lignin degradation. FEMS Microbiol. Rev. 13, 125-135. 

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  7. Kim, Y.J., Kim, M., Song, H.G., and Choi, H.T. 2007. Genetic transformation of Irpex lacterus and Phlebia tremellosa to an antibiotic resistance. Kor. J. Microbiol. 43, 147-149. 

  8. Kum, H., Lee, S., Ryu, S., and Choi, H.T. 2011. Degradation of endocrine disrupting chemicals by genetic transformants with two lignin degrading enzymes in Phlebia tremellosa. J. Microbiol. 49, 824-827. 

  9. Lee, S.M., Lee, J.W., Koo, B.W., Kim, M.K., Choi, D.H., and Choi, I.G. 2007. Dibutyl phthalate biodegradation by the white rot fungus, Polyporus brumalis. Biotechnol. Bioeng. 97, 1516-1522. 

  10. Leem, Y., Kim, S.J., Ross, I.K., and Choi, H.T. 1999. Transformation and laccase mutant isolation in Coprinus congregatus by restriction enzyme-mediated integration. FEMS Microbiol. Lett. 172, 35-40. 

  11. Li, G., Li, R., Liu, Q., Wang, Q., Chen, M., and Li, B. 2006. A highly efficient polyethylene glycol-mediated transformation method for mushrooms. FEMS Microbiol. Lett. 256, 203-208. 

  12. Pasti-Grigsby, M.B., Paszczynski, A., Goszczynski, S., Crawford, D.L., and Crawford, R.L. 1992. Influence of aromatic substitution patterns on azo dye degradability by Streptomyces spp. and Phanerochaete chrysosporium. Appl. Environ. Microbiol. 58, 3605-3613. 

  13. Peng, M., Singh, N.K., and Lemke, P.A. 1992. Recovery of recombinant plasmids from Pleurotus ostreatus transformants. Curr. Genet. 22, 53-59. 

  14. Pointing, S.B. 2001. Feasibility of bioremediation by white-rot fungi. Appl. Microbiol. Biotechnol. 57, 20-33. 

  15. Ryu, S.H., Lee, A.Y., and Kim, M. 2008. Molecular characteristics of two laccase from the basidiomycete fungus Polyporus brumalis. J. Microbiol. 46, 62-69. 

  16. Shin, E.H., Choi, H.T., and Song, H.G. 2007. Biodegradation of endocrine-disrupting bisphenol A by white rot fungus Irpex lacteus. J. Microbiol. Biotechnol. 17, 1147-1151. 

  17. Yeo, S., Park, N., Song, H.G., and Choi, H.T. 2007. Generation of a transformant showing higher manganese peroxidase (MnP) activity by overexpression of MnP gene in Trametes versicolor. J. Microbiol. 45, 213-218. 

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