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배추에서 염 저항성 관련 유전자, BrSSR의 기능 검정 및 발현 네트워크 분석
Characterization and Gene Co-expression Network Analysis of a Salt Tolerance-related Gene, BrSSR, in Brassica rapa 원문보기

원예과학기술지 = Korean journal of horticultural science & technology, v.32 no.6, 2014년, pp.845 - 852  

유재경 (경희대학교 생명과학대학 원예생명공학과) ,  이기호 (경희대학교 생명과학대학 원예생명공학과) ,  박지현 (경희대학교 생명과학대학 원예생명공학과) ,  박영두 (경희대학교 생명과학대학 원예생명공학과)

초록
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다양한 비생물적 스트레스 중 토양 염 집적은 식물의 광합성 효율, 생장 및 수확량의 감소를 초래한다. 최근 염 저항성 향상을 위한 많은 유전자들이 보고되고 있다. 본 연구의 목적은 형질전환 배추를 이용하여 아직 기능이 밝혀져 있지 않지만 완전장이 보고된 Brassica rapa Salt Stress Resistance(BrSSR) 유전자의 기능을 검정하는 것이다. BrSSR의 생리적 역할을 분석하기 위해, BrSSR의 과발현 vector인 pSL94 vector를 이용하여 내혼계 배추('CT001')를 형질전환하였다. Quantitative real-time RT-PCR 분석에서 형질전환체의 BrSSR 발현량은 대조군 대비 2.59배까지 증가하였다. 한편, 염 처리 후 표현형 분석에서 BrSSR이 과발현된 형질전환체들이 정상적인 생장을 보여줌으로써 염 스트레스에 내성을 가지는 것을 확인할 수 있었다. Microarray 분석을 통해 구축된 염 스트레스 저항성 관련 유전자들의 발현 네트워크 상에서 BrSSR은 기존에 염 저항성 관련 유전자로 보고되어 있는 ERD15(AT2G41430), protein containing PAM2(AT4G14270), GABA-T(AT3G22200)와 매우 밀접하게 연결되어 있는 것으로 분석되었다. 위 결과들을 바탕으로 BrSSR은 염 스트레스 발생 시 식물의 생장 및 저항성에 관련된 중요한 역할을 하는 것으로 판단된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Among various abiotic stress factors, soil salinity decreases the photosynthetic rate, growth, and yield of plants. Recently, many genes have been reported to enhance salt tolerance. The objective of this study was to characterize the Brassica rapa Salt Stress Resistance (BrSSR) gene, of which the f...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • pekinensis ‘Chiifu’를 대상으로 한 “KBGP-24K microarray chip”을 분석하여 DUF581 도메인을 보유하고 있는 BrSSR 유전자를 내혼계 배추 ‘CT001’(시원씨드, 경기도 평택)에서 동정하였으며, 담배(Nicotiana tabacum)에서 과발현을 유도하여 BrSSR의 과발현이 염 저항성 획득에 기여함을 확인하였다(Yu and Park, 2013). 따라서 본 연구는 염 저항성 유전자로 추정되는 BrSSR(Brassica rapa Salt Stress Resistance) 유전자를 과발현(overexpression) 시킨 형질전환 배추(B. rapa ssp. pekinensis)를 이용하여 BrSSR 유전자의 염 저항성 기능 검정을 수행하였다. 또한 microarray 데이터를 이용한 배추의 염 저항성 관련 유전자들의 발현 네트워크를 비교・분석하여 BrSSR과 밀접하게 연관된 유전자들을 밝혀 내었다.
  • 본 연구는 실제 내혼계 배추(B. rapa ssp. pekinensis inbred line ‘CT001’)에서도 BrSSR이 염 저항성 획득에 관여하는지를 확인하고, 아울러 microarray 분석을 수행하여 염 스트레스에 반응하는 저항성 관련 유전자들의 발현 양상을 분석하기 위해, Lee et al.
  • 최근 염 저항성 향상을 위한 많은 유전자들이 보고되고 있다. 본 연구의 목적은 형질전환 배추를 이용하여 아직 기능이 밝혀져 있지 않지만 완전장이 보고된 Brassica rapa Salt Stress Resistance(BrSSR) 유전자의 기능을 검정하는 것이다. BrSSR의 생리적 역할을 분석하기 위해, BrSSR의 과발현 vector인 pSL94 vector를 이용하여 내혼계 배추(‘CT001’)를 형질전환하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
Na+ 이온의 세포 내 증가는, 식물체 생육에 어떤 영향을 끼치는가? 토양에서 상대적으로 높은 농도의 염이 집적되면 식물체가 토양에서 수분을 흡수하는 것을 제한하게 되어 식물 세포의 죽음으로 이어진다(Munns, 2002). 또한 삼투성 스트레스(osmotic stress)와 이온 유독성(ion toxicity)으로 잘 알려진 Na+ 이온의 세포 내 증가는 산화적 스트레스(oxidative stress)로 이어져 식물체 생육에 불리하게 작용하지만, 작물의 염 저항성 획득이 산화적 스트레스에 대한 내성을 향상시켜 주었다는 보고도 있다(Hernandez et al., 2001).
다양한 비생물적 스트레스 중, 토양 염 집적이 식물에 미치는 영향은? 다양한 비생물적 스트레스 중 토양 염 집적은 식물의 광합성 효율, 생장 및 수확량의 감소를 초래한다. 최근 염 저항성 향상을 위한 많은 유전자들이 보고되고 있다.
토양의 염 집적으로 인한 스트레스는, 전세계적으로 어떤 영향을 끼치고 있나? 다양한 비생물적 스트레스 중에서 토양의 염 집적은 거의 대부분의 작물에서 생장 및 생존을 위협하는 큰 요인 중의 하나이다. 이러한 염 스트레스는 100개국 이상의 국가에서 농업작물의 수확량을 감소시키고 있는 것으로 보고되었다(Flowers and Yeo, 1995; Munns, 2002, Rengasamy, 2006). 토양에서 상대적으로 높은 농도의 염이 집적되면 식물체가 토양에서 수분을 흡수하는 것을 제한하게 되어 식물 세포의 죽음으로 이어진다(Munns, 2002).
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참고문헌 (33)

  1. Bertorello, A.M. and J.K. Zhu. 2009. SIK1/SOS2 networks: Decoding sodium signals via calcium-responsive protein kinase pathways. Pflugers Arch. 458:613-619. 

  2. Deng, X., W. Hu, S. Wei, S. Zhou, F. Zhang, J. Han, L. Chen, Y. Li, J. Feng, B. Fang, Q. Luo, S. Li, Y. Liu, G. Yang, and G. He. 2013. TaCIPK29, a CBL-interacting protein kinase gene from wheat, confers salt stress tolerance in transgenic tobacco. PLoS One 8:e69881. 

  3. Fait, A., H. Fromm, D. Walter, G. Galili, and A.R. Fernie. 2008. Highway or byway: The metabolic role of the GABA shunt in plants. Trends Plant Sci. 13:14-19. 

  4. Flowers, T.J. and A.R. Yeo. 1995. Breeding for salinity resistance in crop plants: Where next? Aust. J. Plant Physiol. 22:875-884. 

  5. Gong, Z., H. Koiwa, M.A. Cushman, A. Ray, D. Bufford, S. Kore-eda, T.K. Matsumoto, J. Zhu, J.C. Cushman, R.A. Bressan, and P.M. Hasegawa. 2001. Genes that are uniquely stress regulated in salt overly sensitive (sos) mutants. Plant Physiol. 126:363-375. 

  6. Halfter, U., M. Ishitani, and J.K. Zhu. 2000. The Arabidopsis SOS2 protein kinase physically interacts with and is activated by the calcium-binding protein SOS3. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 97:3735-3740. 

  7. Hernandez, J.A., M.A. Ferrer, A. Jimenez, A.R. Barcelo, and F. Sevilla. 2001. Antioxidant systems and $O_2$ .-/ $H_2O_2$ production in the apoplast of pea leaves. Its relation with salt-induced necrotic lesions in minor veins. Plant Physiol. 127:817-831. 

  8. Kim, J.S., J. Kim, T.H. Lee, K.M. Jun, T.H. Kim, Y.H. Kim, H.M. Park, J.S. Jeon, G. An, U.H. Yoon, B.H. Nahm, and Y.K. Kim. 2012. FSTVAL: A new web tool to validate bulk flanking sequence tags. Plant Methods 8:19. 

  9. Krasensky, J. and C. Jonak. 2012. Drought, salt, and temperature stress-induced metabolic rearrangements and regulatory networks. J. Exp. Bot. 63:1593-1608. 

  10. Lee, M.K., H.S. Kim, J.S. Kim, S.H. Kim, and Y.D. Park. 2004. Agrobacterium-mediated transformation system for large-scale production of transgenic Chinese cabbage (Brassica rapa L. ssp. pekinensis) plants for insertional mutagenesis. J. Plant Biol. 47:300-306. 

  11. Lee, S.C., M.H. Lim, J.A. Kim, S.I. Lee, J.S. Kim, M. Jin, S.J. Kwon, J.H. Mun, Y.K. Kim, H.U. Kim, Y. Hur, and B.S. Park. 2008. Transcriptome analysis in Brassica rapa under the abiotic stresses using Brassica 24K oligo microarray. Mol. Cells 26:595-605. 

  12. Liu, J., M. Ishitani, U. Halfter, C.S. Kim, and J.K. Zhu. 2000. The Arabidopsis thaliana SOS2 gene encodes a protein kinase that is required for salt tolerance. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 97:3730-3734. 

  13. Mantyla, E., V. Lang, and E.T. Palva. 1995. Role of abscisic acid in drought-induced freezing tolerance, cold acclimation, and accumulation of LT178 and RAB18 proteins in Arabidopsis thaliana. Plant Physiol. 107:141-148. 

  14. Martinez-Atienza, J., X.Y. Jiang, B. Garciadeblas, I. Mendoza, J.K. Zhu, J.M. Pardo, and F.J. Quintero. 2007. Conservation of the salt overly sensitive pathway in rice. Plant Physiol. 143:1001-1012. 

  15. Munns, R. 2002. Comparative physiology of salt and water stress. Plant Cell Environ. 25:239-250. 

  16. Nordin, K., T. Vahala, and E.T. Palva. 1993. Differential expression of two related, low-temperature-induced genes in Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. Plant Mol. Biol. 21:641-653. 

  17. Perruc, E., M. Charpenteau, B.C. Ramirez, A. Jauneau, J.P. Galaud, R. Ranjeva, and B. Ranty. 2004. A novel calmodulin-binding protein functions as a negative regulator of osmotic stress tolerance in Arabidopsis thaliana seedlings. Plant J. 38:410-420. 

  18. Qiu, Q.S., Y. Guo, M.A. Dietrich, K.S. Schumaker, and J.K. Zhu. 2002. Regulation of SOS1, a plasma membrane $Na^+$ / $H^+$ exchanger in Arabidopsis thaliana, by SOS2 and SOS3. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 99:8436-8441. 

  19. Rengasamy, P. 2006. World salinization with emphasis on Australia. J. Exp. Bot. 57:1017-1023. 

  20. Saijo, Y., S. Hata, J. Kyozuka, K. Shimamoto, and K. Izui. 2000. Over-expression of a single $Ca^{2+}$ -dependent protein kinase confers both cold and salt/drought tolerance on rice plants. Plant J. 23:319-327. 

  21. Shi, H., B.H. Lee, S.J. Wu, and J.K. Zhu. 2003. Overexpression of a plasma membrane $Na^+$ / $H^+$ antiporter gene improves salt tolerance in Arabidopsis thaliana. Nature Biotech. 21:81-85. 

  22. Tang, R.J., H. Liu, Y. Bao, Q.D. Lv, L. Yang, and H.X. Zhang. 2010. The woody plant poplar has a functionally conserved salt overly sensitive pathway in response to salinity stress. Plant Mol. Biol. 74:367-380. 

  23. Wu, S.J., L. Ding, and J.K. Zhu. 1996. SOS1, a genetic locus essential for salt tolerance and potassium acquisition. Plant Cell 8:617-627. 

  24. Xiang, Y., Y.M. Huang, and L.Z. Xiong. 2007. Characterization of stress-responsive CIPK genes in rice for stress tolerance improvement. Plant Physiol. 144:1416-1428. 

  25. Xu, D., X. Duan, B. Wang, B. Hong, T.H.D. Ho, and R. Wu. 1996. Expression of a late embryogenesis abundant protein gene, HVA1, from barley confers tolerance to water deficit and salt stress in transgenic rice. Plant Physiol. 110:249-257. 

  26. Yang, Q., Z.Z. Chen, X.F. Zhou, H.B. Yin, X. Li, X.F. Xin, X.H. Hong, J.K. Zhu, and Z. Gong. 2009. Overexpression of SOS (salt overly sensitive) genes increases salt tolerance in transgenic Arabidopsis. Mol. Plant 2:22-31. 

  27. Yu, J.G. and Y.D. Park. 2013. Isolation and identification of a new gene related to salt tolerance in Chinese cabbage. Kor. J. Hort. Sci. Technol. 31:748-755. 

  28. Yu, J.G., G.H. Lee, and Y.D. Park. 2012. Comparison of RNA interference-mediated gene silencing and T-DNA integration techniques for gene function analysis in Chinese cabbage. Kor. J. Hort. Sci. Technol. 30:734-742. 

  29. Yu, J.G., G.H. Lee, J.S. Kim, E.J. Shim, and Y.D. Park. 2010. An insertional mutagenesis system for analyzing the Chinese cabbage genome using Agrobacterium T-DNA. Mol. Cells 29:267-275. 

  30. Zhao, J., Z. Sun, J. Zheng, X. Guo, Z. Dong, J. Huai, M. Gou, J. He, Y. Jin, J. Wang, and G. Wang. 2009. Cloning and characterization of a novel CBL-interacting protein kinase from maize. Plant Mol. Biol. 69:661-674. 

  31. Zhu, J.K. 1998. Genetic analysis of plant salt tolerance using Arabidopsis. Plant Physiol. 124:941-948. 

  32. Zhu, J.K. 2003. Regulation of ion homeostasis under salt stress. Curr. Opin. Plant Biol. 6:441-445. 

  33. Ziaf, K., R. Loukehaich, P. Gong, H. Liu, Q. Han, T. Wang, H. Li, and Z. Ye. 2011. A multiple stress-responsive gene ERD15 from Solanum pennellii confers stress tolerance in tobacco. Plant Cell Physiol. 52:1055-1067. 

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