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강도다리, Platichthys stellatus의 먹이섭식, 성장 및 무안측 체색발현에 있어 수온, 수조색상 및 조도의 영향
Influence of Water Temperature, Background Color, and Light Intensity in Feeding, Growth and Blind-Side Hypermelanosis of Starry Flounder, Platichthys stellatus 원문보기

Korean journal of Ichthyology = 한국어류학회지, v.26 no.3, 2014년, pp.185 - 193  

강덕영 (국립수산과학원 서해수산연구소) ,  김원진 (부경대학교 해양바이오신소재학과) ,  김효찬 (국립수산과학원 서해수산연구소) ,  장영진 (부경대학교 해양바이오신소재학과)

초록
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강도다리, Platichthys stellatus의 먹이섭식, 성장 및 무안측 흑화에 있어 수온, 수조색상 및 조도의 영향을 파악하기 위해, 본 연구에서는 전장(TL) $17.3{\pm}0.5cm$ 및 체중(BW) $82.5{\pm}0.2g$의 양성어 중 정상 개체만을 선별하여, 6월에서 12월까지 180일 동안 환경 조건별 실험을 실시하였다. 실험은 국방색과 흰색수조($H100cm{\times}L100cm{\times}W100cm$; bottom area $1m^2$)를 이용하여 평균 조도 230 lux와 1,000 lux에서 2반복으로 실시하였다. 이 때 실험 밀도는 100마리/수조(430% of initial covering area [PCA])였다. 본 실험에서는 실험 기간동안, 수온 및 염분과 일간먹이섭식량(DFI)의 상관관계를 조사하였고, DFI, 먹이효율(FE), 성장, 생존율, 무안측 흑화률 및 흑화개체 비율을 실험구별로 비교하였다. DFI는 염분과의 상관관계는 보이지 않았지만, 겨울과 여름철 0.5 g/fish/day까지 유의하게 감소하고, 반대로 수온 $10{\sim}20^{\circ}C$인 가을에 1.5 g/fish/day 이상 증가하는 경향을 보였다. 이러한 결과는 강도다리 양식은 수온 $10{\sim}20^{\circ}C$에서 이루어져야 함을 내포하고 있다. 또한 DFI, FE 및 생존율은 배경색상과 조도의 영향을 받지 않았다. 또한 가자미류의 무안측 흑화 발현 인자로 알려진 200% PCA 이상의 높은 밀도, 어두운 배경색상과 과도하게 밝은 조도가 강도다리에게 아무런 영향을 미치지 않았다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

To find the influence of water temperature, tank color and illumination in feeding, growth and blind-side hypermelanosis of starry flounder, Platichthys stellatus, in the present study, we performed a series of temperature, background color and illumination intensity test for 180 days (From June to ...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 따라서 강도다리 인공사육 시 사양관리를 위한 적정 수온에 대한 과학적 데이터를 확보하지 못하고 있는 실정이다. 이에 본 연구에서는 여름철 7월부터 겨울철인 12월까지 먹이섭식량 대사실험을 통해, 사양관리에 필요한 최적 사육 수온을 구명하고자 하였다. 그 결과 본 연구에서는 강도다리의 정상적인 먹이섭식 활성은 수온은 10~20℃ 사이에 일어나며, 성장 최적 수온은 15℃ 전후인 것으로 확인되었다.
  • 이에 본 연구에서는 이와 같은 가설을 검증하기 위해, 현재까지 알려진 흑화발현 조건(고밀도, 어두운 배경색상 및 높은 조도)을 정상 강도다리에 장기간 노출시킨 뒤, 무안측의 색소포 분화양상을 관찰하였다. 이를 위해 무작위로 사육 중인 강도다리 양성어 중에 무안측 비착색 정상 개체들만 별도 선발하여, 흑화발현 조건인 평면 바닥의 어두운 색상 수조에서 고밀도(바닥점유율 430% PCA 이상)로 180일간 사육실험을 실시하였다.

가설 설정

  • 이는 그동안 다수의 연구자들이 환경인자에만 국한되어 그 원인을 밝히고자 하는 노력과 가설에 한계를 드러내게 한다. 이러한 흑화에 대한 아주 강한 저항성을 보이는 정상 개체의 출현은 무안측 흑화 현상을 환경적 요인에서만 원인을 찾는 것이 바람직하지 않으며, 더불어 이 증상은 유전자의 지배 하에서 이루어질 가능성이 높다는 가정을 하게 한다. 즉 흑화 저항성 정상 개체들은 흑화에 대한 유전적 저항력을 보유하고 있기 때문에, 어떤 환경 조건에서도 무안측에서 비정상적으로 색소포 분화를 방지하는 기전을 보유할 가능성이 있다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
강도다리는 어떤 계절에 자취를 감추는가? 강도다리는 우리나라 동해안에 분포하는 특산 종으로 강과 바다에 서식하며, 가을에서부터 이듬해 봄까지 어획되다가, 여름철 자취를 감춘다. 이 종은 냉수성 해산어류로서 러시아 베링해를 중심으로 한국을 포함한 동북아시아에서 미국과 캐나다의 북미 대륙에 걸쳐 분포한다(Tokranov and Maksimenkov, 1994; Vdovin et al.
강도다리는 어디에 분포하는가? 강도다리는 우리나라 동해안에 분포하는 특산 종으로 강과 바다에 서식하며, 가을에서부터 이듬해 봄까지 어획되다가, 여름철 자취를 감춘다. 이 종은 냉수성 해산어류로서 러시아 베링해를 중심으로 한국을 포함한 동북아시아에서 미국과 캐나다의 북미 대륙에 걸쳐 분포한다(Tokranov and Maksimenkov, 1994; Vdovin et al., 1997; Bergstrom, 2007).
강도다리는 어떤 계절에 어획되는가? 강도다리는 우리나라 동해안에 분포하는 특산 종으로 강과 바다에 서식하며, 가을에서부터 이듬해 봄까지 어획되다가, 여름철 자취를 감춘다. 이 종은 냉수성 해산어류로서 러시아 베링해를 중심으로 한국을 포함한 동북아시아에서 미국과 캐나다의 북미 대륙에 걸쳐 분포한다(Tokranov and Maksimenkov, 1994; Vdovin et al.
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참고문헌 (42)

  1. Amiya, N., M. Amano, T. Yamanome, K. Yamamori and A. Takahashi. 2008. Effects of background color on GnRH and MCH levels in the barfin flounder brain. Gen. Comp. Endocrinol., 155: 88-93. 

  2. Amiya, N., M. Amano, A. Takahashi, T. Yamanome, H. Kawauchi and K. Yamamori. 2005. Effects of tank color on melaninconcentrating hormone levels in the brain, pituitary gland, and plasma of the barfin flounder as revealed by a newly developed time-resolved fluoroimmunoassay. Gen. Comp. Endocrinol., 143: 251-256. 

  3. Bapary, M.A.J., M.N. Amin, Y. Takeuchi and A. Takemura. 2011. The stimulatory effects of long wavelengths of light on the ovarian development in the tropical damselfish, Chrysiptera cyanea. Aquaculture, 314: 188-192. 

  4. Bergstrom, C.A. 2007. Morphological evidence of correlational selection and ecological segregation between dextral and sinistral forms in a polymorphic flatfish, Platichthys stellatus. J. Evol. Biol., 20: 1104-1114. 

  5. Bevelhimer, M. and W. Bennett. 2000. Assessing cumulative thermal stress in fish during chronic intermittent exposure to high temperatures. Environ. Sci. Policy., 3: S211-S216. 

  6. Brown, J.A.G., A. Jones and A.J. Matty. 1984. Oxygen metabolism of farmed turbot (Scophthalmus maximus). I. The influence of fish size and water temperature on metabolic rate. Aquaculture, 36: 273-281. 

  7. Byun, S.-G., B.-I. Lee, J.-H. Lee, H.-D. Ku, S.-U. Park, S.-M. Yun, S.-Y. Hwang, Y.-C. Kim and H.-G. Han. 2007. Egg development and morphological change of larvae and juveniles of the starry flounder, Platichthys stellatus. Korean J. Ichthyol., 19: 350-359. 

  8. Deane, E.E. and N.Y.S. Woo. 2009. Modulation of fish growth hormone levels by salinity, temperature, pollutants and aquaculture related stress: A review. Reviews in Fish Biology and Fisheries, 19: 97-120. 

  9. Denson, M.R. and T.I.J. Smith. 1997. Diet and light intensity effects on survival, growth and pigmentation of southern flounder Paralichthys lethostigma. J. World Aquacult. Soc., 28: 366-373. 

  10. Didrikas, T. and S. Hansson. 2009. Effects of light intensity on activity and pelagic dispersion of fish: Studies with a seabedmounted echosounder. ICES Journal of Marine Science, 66: 388-395. 

  11. Doolan, B.J., G.L. Allan, M.A. Booth and P.L. Jones. 2008. Effects of cage netting colour and density on the skin pigmentation and stress response of Australian snapper Pagrus auratus (Bloch&Schneider, 1801). Aquacult. Res., 39: 1360-1368. 

  12. Doolan, B.J., M.A. Booth, P.L. Jones and G.L. Allan. 2007. Effect of cage colour and light environment on the skin colour of Australian snapper Pagrus auratus (Bloch & Schneider, 1801). Aquacult. Res., 38: 1395-1403. 

  13. Doolan, B.J., M.A. Booth, G.L. Allan and P.L. Jones. 2009. Changes in skin colour and cortisol response of Australian snapper Pagrus auratus (bloch & schneider, 1801) to different background colours. Aquacult. Res., 40: 542-550. 

  14. Han, D., S. Xie, W. Lei, X. Zhu and Y. Yang. 2005. Effect of light intensity on growth, survival and skin color of juvenile Chinese longsnout catfish (Leiocassis longirostris Gunther). Aquaculture, 248: 299-306. 

  15. Hazel, J.R. 1984. Effects of temperature on the structure and metabolism of cell membranes in fish. The American Journal of Physiology, 246: R460-470. 

  16. Henning, F., J.C. Jones, P. Franchini and A. Meyer. 2013. Transcriptomics of morphological color change in polychromatic Midas cichlids. BMC Genomics, 14. 

  17. Hoang, T., S.Y. Lee, C.P. Keenan and G.E. Marsden. 2002. Effects of age, size, and light intensity on spawning performance of pond-reared Penaeus merguiensis. Aquaculture, 212: 373-382. 

  18. Iwata, N. and K. Kikuchi. 1998. Effects of sandy substrate and light on hypermelanosis of the blind side in cultured Japanese flounder Paralichthys olivaceus. Environ. Biol. Fishes, 52: 291-297. 

  19. Kalinowski, C.T., L.E. Robaina, H. Fernandez-Palacios, D. Schuchardt and M.S. Izquierdo. 2005. Effect of different carotenoid sources and their dietary levels on red porgy (Pagrus pagrus) growth and skin colour. Aquaculture, 244: 223-231. 

  20. Kang, D.Y., H.C. Kim and Y.J. Chang. 2011. Effects of stocking density on the blind-side hypermelanosis of cultured olive flounder Paralichthys olivaceus. Fisheries and Aquatic Science, 14: 123-129. 

  21. Kang, D.Y., J.H. Lee, W.J. Kim and H.C. Kim. 2012. Morphological specificity in cultured starry flounder Platichthys stellatus reared in artificial facility. Fisheries and Aquatic Science, 15: 117-123. 

  22. Koeypudsa, W. and M. Jongjareanjai. 2010. Effect of water temperature on hematology and virulence of Aeromonas hydrophila in hybrid catfish (Clarias gariepinus Burchell x C. macrocephalus Gunther). Thai J. Vet. Med., 40: 179-186. 

  23. Li, W., T. Zhang, C. Zhang, Z. Li, J. Liu and B.J. Hicks. 2013. Effects of turbidity and light intensity on foraging success of juvenile mandarin fish Siniperca chuatsi (Basilewsky). Environ. Biol. Fishes, 1-8. 

  24. Lim, H.K., H.S. Han and Y.J. Chang. 2002. Effects of gonadotropinreleasing hormone analog on milt production enhancement in starry flounder Platichthys stellatus. Fish. Sci., 68: 1197-1204. 

  25. Monk, J., V. Puvanendran and J.A. Brown. 2008. Does different tank bottom colour affect the growth, survival and foraging behaviour of Atlantic cod (Gadus morhua) larvae? Aquaculture, 277: 197-202. 

  26. Ottesen, O.H. and H.K. Strand. 1996. Growth, development, and skin abnormalities of halibut (Hippoglossus hippoglossus L.) juveniles kept on different bottom substrates. Aquaculture, 146: 17-25. 

  27. Pavlidis, M., M. Karkana, E. Fanouraki and N. Papandroulakis. 2008. Environmental control of skin colour in the red porgy, Pagrus pagrus. Aquacult. Res., 39: 837-849. 

  28. Reichard, M., P. Jurajda and M. Ondrackova. 2002. The effect of light intensity on the drift of young-of-the-year cyprinid fishes. J. Fish Biol., 61: 1063-1066. 

  29. Seikai, T. 1991. Influences of fluorescent light irradiation, ocular side pigmentation, and source of fishes on the blind side pigmentation in the young Japanese flounder, Paralichthys olivaceus. Suisan Zoshoku, 39: 173-180. 

  30. Shikano, T. 2005. Marker-based estimation of heritability for body color variation in Japanese flounder Paralichthys olivaceus. Aquaculture, 249: 95-105. 

  31. Smith, S., L. Bernatchez and L.B. Beheregaray. 2013. RNA-seq analysis reveals extensive transcriptional plasticity to temperature stress in a freshwater fish species. BMC Genomics, 14. 

  32. Strand, A., A. Alanara, F. Staffan and C. Magnhagen. 2007. Effects of tank colour and light intensity on feed intake, growth rate and energy expenditure of juvenile Eurasian perch, Perca fluviatilis L. Aquaculture, 272: 312-318. 

  33. Sugimoto, M. 2002. Morphological color changes in fish: Regulation of pigment cell density and morphology. Microsc. Res. Tech., 58: 496-503. 

  34. Suja, B., H. Phillips, R. Lochmann and R. Chen. 2009. Effect of temperature on growth, feed utilization, and immune status of channel catfish in a recirculating system. N. Am. J. Aquac., 71: 64-72. 

  35. Takahashi, A., K. Tsuchiya, T. Yamanome, M. Amano, A. Yasuda, K. Yamamori and H. Kawauchi. 2004. Possible involvement of melanin-concentrating hormone in food intake in a teleost fish, barfin flounder. Peptides, 25: 1613-1622. 

  36. Takahashi, Y. 1994. Influence of stocking density and food at late phase of larval period on hypermelanosis on the blind body side in juvenile Japanese flounder. Nippon Suisan Gakkaishi, 60: 593-598. 

  37. Tokranov, A.M. and V.V. Maksimenkov. 1994. Feeding of the starry flounder, Platichthys stellatus, in the Bol'haya River estuary (western Kamchatka). J. Ichthyol., 34: 76-83. 

  38. Vdovin, A.N., D.V. Antonenko and T.G. Sokolovskaya. 1997. Distribution of the starry flounder Platichthys stellatus in Peter the Great Bay. Russ. J. Mar. Biol., 23: 201-206. 

  39. Venizelos, A. and D.D. Benetti. 1999. Pigment abnormalities in flatfish. Aquaculture, 176: 181-188. 

  40. Yamanome, T., M. Amano and A. Takahashi. 2005. White background reduces the occurrence of staining, activates melaninconcentrating hormone and promotes somatic growth in barfin flounder. Aquaculture, 244: 323-329. 

  41. Yamanome, T., M. Amano, N. Amiya and A. Takahashi. 2007. Hypermelanosis on the blind side of Japanese flounder Paralichthys olivaceus is diminished by rearing in a white tank: Short paper. Fish. Sci., 73: 466-468. 

  42. Yoseda, K., K. Yamamoto, K. Asami, M. Chimura, K. Hashimoto and S. Kosaka. 2008a. Influence of light intensity on feeding, growth, and early survival of leopard coral grouper (Plectropomus leopardus) larvae under mass-scale rearing conditions. Aquaculture, 279: 55-62. 

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